细菌培养标本采集

细菌培养标本采集

1、标本采集时间

（1）一般原则应在寒战或高温高峰到来之前采集，因为细菌进入血流与寒战发作通常间隔1小时。无论何时采集，原则上应选择在抗生素应用前，对已用抗生素而

无法停药的病人，应在下次用药前采集。

（2）不明原因发热可于发热周期内多次采血作培养，如果24小时培养结果为阳性，应继续采血2～3份或更多血标本进行培养。

（3）心内膜炎急性心内膜炎：治疗前1～2小时内分别在3个不同部位抽血样，分别进行培养。炎急性内膜炎：除在发热期采血外，应多次采血，第1天做3次培养，如果24小时培养阴性，应继续抽血3份或更多次进行培养。

（4）肺炎链球菌感染最佳时机是在寒冷、高热休克时，此时采集的标本阳性率较高。

2、标本送检时间采集好的血液培养瓶要及时送检。如应某种原因不能及时送检，应将

已采集好的血液培养瓶放在室温，切勿放在冰箱内，否则使阳性率降低送检要保温，并在化验单上标明采集血液标本的准确时间。

3、血液标本采集的量成人采血量一般为10mL，婴幼儿1～2Ml,儿童4～5Ml,在无法确

定病人感染何种微生物时，应同时做多种生物培养，如需氧培养、厌氧培养和真菌培。

如病人应用抗生素时间较长，则应和检验科联系调整血液标本和培养基比例，一般血液标本和培养比例为1：10，如使用抗生素达10～15日以上，比例则为1：20或>1:20，儿童血液培养必须使用相应的儿童血液培养瓶。

4、标本采集部位和次数细菌培养阳性率与标本的采集部位和次数关系很大，而且一般

成人菌血症感染率是非常低的，因此要多部位、多次采集血液标本进行培养，以提高阳性率。通常从肘正中或股静脉抽取，不可从静脉注导管处抽血。

5、采集好的血液标本应更换针头，用酒精消毒培养瓶瓶盖后再将血液注入培养瓶。

细菌室标本采集及保存要求

细菌室标本采集及保存要求 1、总则：用于细菌培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。 2、临床标本的采集 2.1、下呼吸道分泌物（痰液） 令患者早上起床后用清水澈口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中， 及时送检。 2.2、尿液（中段尿） 护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌塑料盒中，及时送检。 2.3、粪便 取有粘液、脓血部分的粪便置无菌塑料盒中及时送检。 2.4、眼、耳、鼻、喉拭子 将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌塑料盒中，及时送检。 2.5、脓液 用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取

一些，然后将棉拭置于无菌塑料盒中，及时送检。 2.6、血液 261、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素, 应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人 第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。当然在病人 发热或寒颤时采集也可。 262、成人每次采血5?10ml,小儿采血3?5ml。 2.6.3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀。 264、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。 2.7、穿刺液 胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液，严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的, 或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。 2.8、胆汁 由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌塑料盒内。 2.9、脑脊液

检验标本采集

大庆市第二医院检验标本采集手册 （第一版） 主编：刘然李惠 编订日期：

使用说明 接着《临床实验室管理办法》的相关标准及要求，大庆第二医院检验科对检验标本的采集运送及处理等相关内容整理编辑，出版2015年（第一版）《大庆市第二医院检验标本采集手册》，用于指导临床护士、医生、病人正确采集、留取、运送及处理检验标本，实现检验标本分析前的质量控制以确保检验结果的准确。该手册内容包括各种检验标本容器说明、追加检验项目原则、“危急值”报告原则及常见问题指导说明。同时提供了检验科目前开展的检验项目于等相关信息，供临床医生、护士、护理员及病人参考。

目录 第一章：分析前质量控制-------------------------------------------------4 第二章：各类才学容器使用说明---------------------------------------5 第三章：检验标本采集作业程序---------------------------------------7 1、静脉采血程序 2、一般尿液标本 3、一般粪便标本 4、脑脊液标本的采集 5、胸腔液、心包膜液及腹腔液等检验标本的采集 6、关节液采集 7、精液标本的采集 8、痰液标本采集 9、各类细菌检验标本采集 10、骨髓标本采集 第四章：检验标本的包装、运送及核对----------------------------17 1、检验标本的正确包装 2、检验标本运送实效和保存条件 3、各单位检验标本运送作业流程 4、检验标本拒收退检原则 5、假阳性结果 6、追加检验项目原则 第五章：主动通知项目---------------------------------------------------21 1、“危急值”主动报告流程 2、特殊检验项目主动报告 3、急诊报告时限及项目 第六章：检验项目参考值及临床意义-------------------------------24 生化检测项目 免疫检测项目 临检检测项目 微生物检测项目

细胞学标本采集规范

细胞学标本采集规范 一、宫颈刮片 1.检查前48小时禁止性生活，避免阴道冲洗及上药。 2.避开月经期。 3.充分暴露宫颈，以宫颈外口为圆心，在宫颈外口鳞柱上皮交界处和宫颈管内，用特制刮板或宫颈刷轻轻刮取或刷取1-2周 4.阴道不规则流血者，用无菌棉棒轻轻拭净出血，再取材。 5.白带过多者，用无菌棉棒轻轻拭净粘液，再取材。 6.将刮下细胞立即一次涂在干净玻片上，顺同一方向，轻轻均匀推平于玻片的右侧2/3，切忌来回涂抹。 7.在玻片磨砂端清楚写上病人姓名/编号。 8.立即将涂片置95%酒精固定至少15分钟。 9.从95%的酒精中取出玻片，晾干，根据切片的多少或与病理实验室的约定，将细胞片按顺序排放于自封袋或切片盒内。 二、液基细胞 1.检查前48小时禁止性生活，避免阴道冲洗及上药。 2.避开月经期。 3.充分暴露宫颈，将扫帚状采样器的毛刷中央部分轻轻

插入宫颈口，按同一方向旋转5-10周（切忌来回转动）。 4.阴道不规则流血者，用无菌棉棒轻轻拭净出血，再取材。 5.白带过多者，用无菌棉棒轻轻拭净粘液，再取材。 6.将毛刷置于装有保存夜的专用瓶内，漂洗扫帚状采样器。上下反复地将扫帚状采样器推入瓶底，迫使刷毛全部分散开来，共10次；最后，在溶液中快速地转动扫帚状采样器以进一步的将细胞样本保存下来，拧紧瓶盖。 7.在标本瓶的标签上清楚填写受检者的姓名、年龄，并和申请单核对无误 三、胸、腹水 1.血性胸、腹水应用肝素抗凝。 2.液体应尽量多送，并及时制片。 四、痰 1.可以送清晨第一口痰，但不局限于第一口痰，血痰为好。 2.一定是深咳出的痰，而不是唾液。 3.最好放在密封的容器内送检，以防标本干涸。 4.支气管镜检查后第一口痰阳性率较高，应送检。 5.最少应连续送三次。 6.应及时送检、及时制片，避免细胞退变。 五、尿液检查

检验标本采集规范

检验标本采集规范 一、常规标本采集规范 （一）静脉血标本采集规范 1．真空采血标本对应真空管 真空管项目备注 血培养瓶血培养 儿童1-2ml 成人8-10ml 枸橼酸抗凝管（1：9抗凝）（蓝帽） 凝血全项 （PT、APTT、FIB、TT、D-D、FDP、 AT3） 标本采集2ml （不能多不能少） 枸橼酸抗凝管 （1：4）抗凝（黑色）血沉 至刻度线 （不能多不能少） 促凝剂管（黄帽）生化全项、肝功能、肾功能、血糖、血 脂、心肌酶、电解质、RF、ASO、血 清铁、血清同型半胱氨酸、淀粉酶 标本采集量4-5ml 促凝剂管 （黄帽） 肌钙蛋白I、人绒毛膜促性腺激素标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） 乙肝三系、病毒四项标本采集量4-5ml 无添加剂管甲状腺激素五项，雌激素五项，甲胎蛋标本采集量4-5ml

（红帽）白、癌胚抗原、CA125、CA19-9、CA15-3 总前列腺特异性抗原 无添加剂管 （红帽） 结核抗体、肺炎支原体标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） PCR 标本采集量4-5ml EDTA-2K 抗凝管（红帽）血常规、血型、CRP 标本采集量2ml 可以使用同一管 血 网织红细胞计数 外周血涂片 糖化血红蛋白标本采集量2ml 交叉配血标本采集量2ml 2．理想的采集血标本的时间是早晨7∶00～8∶00。 3．采血部位和数量成人首选肘部血管：正中静脉、贵要静脉、头静脉等，婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。 4．采血顺序 为血培养管→凝血项目管（蓝帽）→血沉管（黑帽）→促凝剂管（黄帽）→无添加剂管（红帽）→EDTA管（紫帽） 5．在实际工作中，如患者静脉条件较差，有可能采血不足，血培养优先考虑需氧瓶，其他管应首先考虑凝血（蓝帽）和血沉（黑帽）检测管，因为这2种标本对血量要求最严格，且二者抗凝剂均为枸橼酸钠。 6．检验申请条码贴在采血管上时，请注意不要将采血管完全包裹，应留出空白，以便观察液面高和血液状态，若未打印条码，请将采血管上的

检验标本采集核对 制度

检验标本采集核对、运送、交接制度 临床检验的任务就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室结果，并为临床提供咨询服务。因此，检验标本的正确采集、运输、交接处理是确保临床检验顺利进行的重要条件。为此，制订检验标本采集核对、运送和签收制度。 标本采集核对制度 1、护士应掌握各种标本的正确留取方法。 2、护士为患者采集标本时要实施正确的双人核对。双人核对医嘱、标本容器及标识、患者身份等，必要时病人参与确认。 3、正确选择标本采集时机。晨起患者处于安静状态，为大部分标本采集的最佳时间。静脉采血前至少要禁食8h；血脂测定需禁食12-14h；做微生物培养检查，最好在使用抗生素之前采集标本；大便隐血检查前要素食3天；尿液检查应按不同项目分别留置取晨尿、随机尿、计时尿等。 4、正确选择标本采集体位。如住院患者建议采用卧位采血，非住院患者可采用坐位；醛固酮检测要在起床前卧位取血，起床后活动4h 立位取血。 5、正确选择标本容器。护士根据采集血液、尿液及粪便等不同标本种类及容量，准备合适的采集容器。在容器外整齐规范地贴上条形码。 6、正确使用止血带。采集血液标本时应尽量缩短使用止血带的压迫时间，一般不超过1min。见到血液进入采血容器后立即松开止血带。当需要重新采集标本时，应换另一手臂。

7、尽可能避免在输液过程中采集血液标本。因为血液被稀释、输入药物可能干扰检验结果。静脉输入葡萄糖、氨基酸、蛋白质或电解质的患者，应在输液结束1h后采集标本；输入脂肪乳剂的患者，应在输液8h后采集标本。如必须在输液时采集标本，要避免在输液同侧的静脉采集标本。 8、采集血液标本时，要避免导致标本溶血的因素。包括：标本管壁粗糙、容器不干燥和不清洁、穿刺处消毒液未干即开始采血、从血肿处采血、抽血速度过快、血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫、震荡过于激烈、止血带捆扎时间过长或让患者反复拽拳、运送标本震荡及放置时间过长等因素。 9、对于有特殊要求的如：患者体位、采集时间、患者体温等需要特别说明的标本，请在条形码空白处用文字备注，字迹清晰。 10、不得随意涂改标本条码上的信息，包括：患者信息、检验项目等。 标本运送和签收制度 1、各病区、科室标本采集后，由责任护士与运送工人双方做好交接清点、并做好交接记录（项目、数目、时间、签名），再由运送工人送检验科。 2、安全、及时地运送标本。标本应统一安排后勤服务公司专职人员送检。标本运送应遵循唯一标识、生物安全和及时运送三大原则：（1）唯一标识原则：应用可扫描自动识别的条形码是解决唯一标识最好的方式。 （2）生物安全原则：要求使用可以反复消毒的专用容器运送标本。

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。 （4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 （1）采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次，以除去口腔内大量杂菌，用力咳出肺深部的脓痰，置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。

(推荐)粪便常规检查标本采集指南

粪便常规检查标本采集指南 1.采集粪便标本的方法因检查目的的不同而有差别，一般检验留取新鲜的自然排出的粪便3～5g，必要时可肛拭子采取，放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内，贴好标识送检。细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其他化学药品。 2.盛粪便标本的容器必须有盖，有明显标记。要选取粪便的脓、血、粘液等异常成分进行检查。表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；采取标本后及时送检，否则可因PH 及消化酶影响，而使粪便中细胞成分破坏分解。 3.不应留取尿壶或便盆中的粪便标本。若标本中混入尿液，可导致某些项目检测结果出现错误。粪便标本中也不可混入植物、泥土、污水等异物，易混淆实验结果。不应该从卫生纸或衣裤、纸尿裤等物品上留取标本，不能用棉签有棉絮端挑取标本。 4.做大便隐血试验时，应嘱咐患者于检查前3d内禁食肉食、含动物血的食物、某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对试验有干扰作用的药物。选取外表及内层粪便收集于合格容器内及时送检，长时间放置可使检验的敏感度降低。 5.检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围褶皱处拭取标本，并立即送检。 6.检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g的粪便，并尽快送检。必要时留取整份粪便送

检。

7.检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。 8.细菌检验用标本应全部用无菌操作收集于灭菌封口的容器内。特殊检验项目留取标本时请预先联系。 （注：专业文档是经验性极强的领域，无法思考和涵盖全面，素材和资料部分来自网络，供参考。可复制、编制，期待你的好评与关注）

微生物标本采集 送检及处理原则

微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则： 1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理： 1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本： 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤

寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）； 2）发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本： 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查： (1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查

检验标本的正确采集及注意事项

检验标本的正确采集及注意事项 血液标本采集的注意事项 注意要将患者姓名、床号、住院号标记清楚 实行一人、一针、一管、一带、一垫，防止交叉感染。 压脉带捆扎时间不能过长、不能超过2分钟、见到回血应立即松开止血带。 需要重新采血时，在止血带束缚时间太长的情况下，应当在对侧手臂重新采血。 抽完后，应将真空管轻轻颠倒混匀。 临床化学检查为什么需要早晨采空腹血？ 正常人血液中的部分生物化学成分的含量，除因年龄、性别等的影响外，还可受饮食、运动、精神、用药等因素的影响而使血液成分发生变化。而晚饭后，进餐的食物经十几个小时消化，基础状态平稳，所以测**果较为真实可靠如果在进食后采血，因受所进食物成分的影响，血液中会出现血糖、钾、钠、氯、钙磷等浓度升高，对各种酶类、脂类的实验结果均有影响，所以，有些临床化验检查常常需要早晨采取空腹血为宜。 怎样才算空腹 具体要求是：抽血的前一天晚上，病人保持平时的生活习惯，正常饮食；饭菜宜清淡，不要喝酒；饭后不喝咖啡、浓茶；休息好。第二天早晨起来后，不吃早餐，少喝或不喝水，不做早锻炼运动，平静地到医院等候采血，这样的血标本才是反映真实情况的好标本。 有些病人的甘油三酯特别高，以至于血清像牛奶一样，影响了其他血酯项目化验结果的准确性。这时，医生会要求他们吃几天素食，不吃肥肉，让血清清一点，再做空腹抽血化验。 输液病人应怎样采血？ 这是临床常见的采血问题。输液病人在不能停输的情况下静脉采血一定要注意远端原则。也就是说要在对侧手静脉采血。如果两只手都在输液，可以采脚端。实在不行也可以在滴注上流采血。由于指尖血是末梢血，没什么影响。由于临床常用手部输液，而静脉是从远端向心脏回流，所以同侧的肘静脉总是滴注的下流，因此同侧采血都有问题。至于影响的大小与输注液体输注方式以及待测项目有关。 尿液标本的采集 尿液标本的种类

各种临床检验标本的正确采集方法

各种临床检验标本的正确采集方法 发布日期：2007-09-10 发布人:alexendran 最后更新时间:2009-05-15 浏览次数:2711 各种临床检验标本的正确采集方法 标本送检须知 检验标本包括血液标本和其他各种体液标本。检验标本的采集是保证检验结果准确的前堤。因此，要求各临床科室医护人员、 送检单位及相关人员认真阅读本文件并严格按以下方法操作。 1 尿液标本的留取 尿常规检查标本 1.1使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留取新鲜尿液 约20ml送检。 1.2尿标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。 1.3标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖，菌体蛋白与病理性 蛋白尿相互干扰；以免尿素酵解、葡萄糖降解、尿pH升高；以免有形成份破坏(细胞管型 分解、红细胞溶解)，化学成分变性、分解，尿中盐类析出结晶）。 尿培养标本 1.4需留取清洁中断尿，注意无菌操作，避免污染。 1.5病人先清洗外阴部，自行排尿，排尿过程中尿液不要中断，前段尿不要，用无菌管接中断尿，塞好瓶塞后立即送检。 1.6患者应停用抗生素三天后作尿培养检查。 1.7尿中应加防腐剂。 24小时尿标本 1.8准备清洁干燥带盖的广口容器，容量为3000—5000mL。 1.9病人于晨7时将尿全部排尽弃去，然后开始留尿，将24小时内历次所排尿液均留于容器中，包括次日晨7时所排最后一次 尿。 2.0测量尿液总量(ml数)并记录在化验单上，将全部尿液充分混均后，取出20—50m1，置于清洁干燥有盖容器总立即总检。

2.1若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。 甲苯：适用量20ml／1000ml尿，用于尿液生化检验(G、Pr、Ca、P、Cr等) 40％甲醛：适用量1～2ml／24h尿，用于细胞、管型等有形成分检查。 应在第一次尿液倒入后再加防腐剂。 2.2 24h尿中不能混入异物。 12h尿标本 留取12h尿标本，可以从晚上7时开始至次晨7时止(具体方法同24h尿标本采集)。 2 粪便标本的留取 粪便常规检查标本 2.1粪便检验应取新鲜标本，容器要清洁，及时送检，于1h内检查完毕。 2.2采集标本时应用干净竹签选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便，外观无异常的粪便须 从表面、深处及粪端多处取材，其量至少为指头大小。 2.3粪便标本中不可混有尿液、消毒剂、污水、植物、泥土等。 2.4无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便，灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴等而 不适于作检查标本。 2.5应根据检查项目的要求进行准备和留取标本。 粪便寄生虫检查标本 2.6查痢疾阿米巴滋养体时应于排便后立即检查。寒冷季节标本传送及检查时均需保温，从脓血和稀软部分取材。 2.7检查日本血吸虫卵时应取粘液、脓血部分，孵化毛蚴时应至少留取30g粪便，且需较快处理。 2.8检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚12时或清晨排便前自肛门周围皱裂处拭取并立即镜检。 粪便培养标本 2.9粪便培养标本应无菌操作收集。 2.10患者在清洁便盆内排便，用无菌棉签取大便的脓血或粘液部分少许，或在肛门插入约6-7cm，轻轻旋动取出大便少许，放

标本采集规章制度

标本采集制度 1. 标本采集核对规章制度 2. 标本采集及送检规章制度 3. 检验标本采集、运送规章制度 4. 标本采集与管理规章制度 5. 标本采集与管理规章制度 1、标本采集核对规章制度 一、护士应掌握各种标本的正确留取方法。 二、采集标本严格遵医嘱执行。 三、标本采集前认真执行查对制度，医嘱和检验单逐项核对无误后，方可执行。 四、标本采集时要携带检验单再次核对确认病人（必要时病人参与确认）。 五、输血、配血抽取标本时，必须两人核对后抽取并签名。 2、标本采集及送检规章制度 一、目的：确保实验室标本的安全、有效，保证检验质量。 二、适用围：适用于检验科全体工作人员。 三、容：

1、标本的采集 1）、血液标本的采集：静脉采血时，除卧床病人，采血时一般取坐位，成人多用肘前静脉，肥胖者可用腕背静脉，婴幼儿常用颈静脉，偶用前囟静脉。静脉采血用止血带应一人一用一消毒。使用止血带的时间不应超过一分钟，穿刺成功后应立即松开止血带。正在静脉输液者应停止输液三分钟，从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。血清(浆)标本的收集各室应根据所检验项目的要求采用相应的标本收集管，并确定采血量。动脉采血一般由临床科室护士采集。 2）、尿液标本的采集一般由患者或护理人员按医嘱留取。取样时应注意明确标记，避免污染，使用合格的一次性洁净专用尿杯收集尿样。中段尿、导管尿等特殊尿样的采集一般由医护人员行相关操作留取标本。 3）、粪便标本的采集由患者留取后收集于合格的一次性洁净专用粪杯送检。应取新鲜标本，选取异常成分的粪便，如含有黏液、脓、血等病变成分的标本，外观无异常的从表面、深处及粪端多处取材，取3～5g及时送检。

院感细菌培养操作

1.目的: 医院是病原微生物较集中,抵抗力低的人群密集的地方,加之化疗、放疗等手段的采用，影响病人免疫机能下降，大量使用抗生素，引起耐药菌株增多，菌群失调，以及先进医疗仪器广泛应用等原因，增加消毒灭菌的难度，致使院内感染已成为当前医疗实践的严重障碍，直接影响医疗效果。进一步规范院内感染监测标本的程序，更好、更快检测病原微生物的生长情况，预防医院感染的发生。 2.设备、试剂与材料 VITEK 2 compact鉴定药敏分析系统 VITEK 32鉴定药敏分析系统 美国FORMAⅡ级生物安全柜 显微镜 酒精灯 接种环 恒温培养箱 各种培养基 革兰氏染色液 触酶试剂 氧化酶试剂 移液器 无菌吸嘴 3.院感标本采集 3．1空气的采样 3．1．1采样时间选择消毒处理后与进行医疗活动之前期间采样。 3．1．2采样高度与地面垂直高度80-150CM。 3．1．3布点方法室内面积＜30m2，设一条对角线上取三点，即中心一点，两端各距墙1m 处各取一点；室内面积＞30m2，设东、西、南、北、中5点，其中东、西、南、北点均距墙1m。 3．1．4采样方法用9cm直径普通营养琼脂平板在采样点暴露5min后送检。

3．2．1采样时间选择消毒处理后4小时内进行采样。 3．2．2采样面积被采表面＜100cm2，取全部表面；被采表面＞100cm2，则取100cm2。3．2．3采样方法用5×5 cm2的标准来灭菌规格板，放在被检物体表面，用无菌规格板，放在被检物体表面，用浸有无菌生理盐水采样液的棉拭子1支，在规格板内横竖往返各涂抹5次，并随之转动棉拭子，连续采样1-4个规格板面积，剪支手接触部位，将棉拭子放入装10ml采样液的试管中送检。门把手等小型物体则采用棉拭子直接涂抹物体的方法采样。3．3医护人员手采样 3．3．1采样时间在接触病人、从事医疗活动前进行采样。 3．3．2采样面积及方法被检人五指并拢，将浸有无菌生理盐水采样液的棉拭子一枝在双手指曲面从指跟到指端来回涂擦各两次（一只手涂擦面积30 cm2），并随之转动采样棉拭子，剪去手接触部位，将棉拭子放入装有10ml采样液的试管内送检。采样面积按平方厘米（cm2）计算。 3．4医疗用品采样 3．4．1采样时间在消毒或灭菌处理后，存放有效期内采样。 3．4．2采样方法右用破坏性方法取样的医疗用品，如输液（血）器、注射器和注射针等，取其中的一部分放培养液中培养。对不能用破坏性方法取样的特殊医疗用品，可用浸有无菌生理盐水采样液的棉拭子在被检物体表面涂抹采样，被采表面＜100cm2，取全部表面；被采表面≥100cm2，取100cm2。 3．5使用中消毒剂的采集 3．5．1采样时间采取使用中的消毒剂。 3．5．2采样方法在无菌条件下，用无菌注射器抽取1ml被检样品，加入10ml稀释液混匀。（对于醇类与酚类消毒剂稀释液用灭菌生长盐水；对于含氯消毒剂、含碘消毒剂、过氧化物消毒剂，需在灭菌生理盐水中加入%硫代硫酸钠；对于洗必泰、季铵盐类消毒剂，需在灭菌生理盐水中加入3%（w/v）吐温80和%卵磷脂；对于醛类消毒剂，需在灭菌生理盐水中加入%甘氨酸；对于含有表面活性剂的各种消毒剂，需在灭菌生理盐水中加入3%（w/v）吐温80，以中和被检样液的残效作用。）

检验标本采集方法

检验标本手册 一．标本采集注意事项 1．所有标本均须标有标本和化验单识别标志，可以用笔标记或者贴上条码标签。 2．危、急、重要化验须标明“急诊”字样。 3．贴标签时用适量糨糊或胶水，以防标签脱落或糨糊太多粘粘。 4．标签最好不要遮挡住血液水平面，便于检验人员操作。5．真空采血管均有编号，小编号标签贴在化验单上，空白标签直接写上患者姓名、科室即可。 1

6．明确急诊检验范围：K+、Na+、Cl-、Ca++、CO CP、血糖、 2 尿素氮、肌肝、心肌酶谱、血气分析、胆碱酯酶、血、尿淀粉酶、血凝四项、血常规、血型、大便常规及潜血、尿常规、脑脊液（胸腹水）常规和生化、D-二聚体和术前传染病。７. 任何标本都应避免剧烈振荡，以免造成溶血，影响检验结果。 ８. 输入脂肪乳或高营养液体的病人，应在输完液体4小时后采集血液，以免造成脂血影响检验结果。 ９. 严禁在输液同侧或者是输液部位采集血液，否则会影响检验结果。 2

10. 需要做电解质的标本严禁抽在含有EDTA-K 、枸橼酸钠、 2 肝素钠抗凝剂的试管中，否则会造成K+、Na+升高，严重影响检验结果。 11. 任何需要抗凝的血标本，绝对不能有凝集现象，否则将严重影响结果和损害检验仪器。 12. 生化项目：肝功、血脂、血糖、肾功、心肌酶谱、微量元素、急性心肌梗死全定量检测、钠尿肽、C-反应蛋白、电解质、二氧化碳、胆碱脂酶、血淀粉酶、血凝四项、D-二聚体、尿β-2微球蛋白、尿微量白蛋白、糖化血红蛋白、血气分析。 3

13. 免疫项目：乙肝六项、术前三项（HBsAg、抗-HCV、抗-HIV）、甲肝抗体、梅毒抗体、优生八项、ENA谱、抗双链DNA抗体（抗ds-DNA）、ANA、抗心磷脂抗体、麻疹抗体、抗精子抗体、抗子宫内膜抗体ASO、RF和肥达氏反应。 14．发光免疫项目：甲状腺功能、内分泌六项、人绒毛膜促性腺激素测定（β-HCG）、胰岛素测定、C-肽测定、胰岛素抗体测定、甲胎蛋白、癌胚抗原、铁蛋白、糖类抗原 (CA-125、CA-153、CA-199、CA-724、CY-211)、前列腺特异性抗原（PSA）、乙肝DNA、丙肝RNA、皮质醇测定、醛固酮测定、心钠素测定。 4

临床细菌检验标本的采集、运送、保存和处理

临床细菌检验标本的采集、运送、保存和处理 正确的标本采集、运送、保存和处理对于保证临床细菌室的工作质量非常重要，应予高度重视。实验室有责任将标本选择（包括时间和解剖部位）、收集、保管、运送、接受和安全等 关键性信息，用户里手册的形式提供给各临床部门参考。 一、标本管理的安全警示 1．所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作，防止污染的原则下认真进行。 2．已采集原始标本都应置于防漏、密封的无菌容器中运送。 3．带针头的注射器运送标本时用无菌试管或防护装置套住注射针，再置于防漏塑料袋中运送至检验科。 4．采集足够量标本，材料不足可能导致假阴性。 5．每份标本都应标记患者姓名、送检号码、标本来源、具体部位、日期、时间及相关临床信息。 6．常规性细菌学检验的标本，采集后不能超过１小时送至检验科，4℃保存也不能超过24小时，怀疑厌氧菌感染的标本应在半小时内送至检验科（不能及时运送组织标本必须在 厌氧环境中25℃不超过24小时）。 7．脑脊髓液、生殖道、眼睛、内耳标本应立即送检，绝不可冷藏。 二、标本的处理和要求 1．血液和骨髓： 1）急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎、细菌性肺炎、肾盂肾炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养，分别接种于各种培养瓶中 立即送检置于孵箱内培养 2）疑似心内膜炎患者：急性病例在抗生素治疗或更换前1—2小时，从不同部位采集血液标本，做3次血液培养 3）亚急性病例：第一天24小时内，相隔1小时连续采集3次血液做培养，若24—48小时全部阴性，再采集2—3次血液做培养 4）若已经抗生素治疗患者，连续3天，每天取2次血液做培养 5）严格无菌技术采集血液血培养瓶后立即送检，切不可放冰箱暂存。 2．脑脊液： 脑脊液采集后，置于无菌试管中，15分钟内送检，绝不可冷藏。每种检验最小需 要量：细菌培养≥1ml,真菌≥2ml,抗酸杆菌≥2ml. 3．尿液： 1）中段尿采集：清洁外阴及尿道口周围，自然排尿，让尿流不间断，截留中段尿，，置于无菌尿杯中立即送检。尿量不少于1ml. 2）直接插导管采尿：一般插入导管后先让尿流弃15ml再留取培养标本。尽量不采用此法，极易将尿道细菌丛进入膀胱增加医源性感染危险。 3）滞留导管采集尿：用75%酒精消毒导管口，用针筒抽取5—10ml尿置于无菌容器中立即送检，滞留导管会使膀胱带有细菌，尽可能不采用。 4）尿液采集后2小时内必须送检，立即处理。规定每日一次。 5）若同一份标本检到3种以上不同细菌则认为标本污染。一般认为革兰氏阴性杆菌菌落计数大于105cfu/ml,革兰氏阳性球菌菌落计数大于104cfu/ml,方有诊断意义。 4．痰液： 1）先用冷开水漱口清洗咽喉，用力咳出痰液置于无菌容器中立即送检，2小时内接种。 2）符合要求的痰液应在低倍镜视野中鳞状上皮≤10个，白细胞≥25个。

临床微生物检验标本的正确采集及注意事项.

标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误, 不当标本可导致假阴性。假阳性结果的出现。因此正确采集临床微生物标本, 直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物, 延缓细菌耐药, 减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步, 也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、皮肤消毒程序:a.75%酒精清洁局部皮肤 30s 以上。 b. 待皮肤干后, 再用1%-2.%碘酊作用 30s 或 10%碘伏作用 90s 以上,从穿刺点中心部位向外画圈消毒,范围不应小于 3cm (直径 , 且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 c. 皮肤碘酒干后 (约 1min , 穿刺采集血液, 采血量成人 10-20ml ,婴幼儿 1-2ml 。儿童 3-5ml 。 d. 培养瓶消毒程序:70%酒精擦拭血培养橡皮塞,作用 60s ;用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精。用注射器无菌采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。立即送检,切勿冷藏。一般情况下可把血培养瓶放 20-22℃。不放冰箱。 2、注意事项:a. 怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃采血可提高阳性率, 但也要防止因等待而延误时机。 b. 对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本, 也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 c. 培养基与血液之比以 10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人, 培养基与采血量之比可为 20:1或大于这个比例。 d. 近年研究表明, 将血液注入血培养基前, 更换针头反而易导致污染。 e. 每例至少采血两次,间隔 0.5-1h , 以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 f. 疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h3-4次和增加采血量(可增加 10ml 。 g 采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。 h 如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道痰标本

细菌标本采集规范

临床微生物学标本采取和处理的规范化要求 正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键。标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果，给临床以误导，延误对患者的正确治疗。为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。 一、血液细菌培养标本的采集和处理 临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者，需做血液细菌培养以明确病原。 1．采集方法：静脉采血，以无菌操作方法抽取血液后，直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固。如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中，再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。 2.采血时间以及血培养份数：在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，用药前24小时内采集2～3次血液标本，可使细菌检出率高达99%。对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1小时采血，亦可在寒战或发热后1小时采集血液标本。特殊感染患者采血培养时应遵循以下原则： （1）可疑急性发热性菌血症、败血症患者：应在使用抗菌药物之前，在24小时内从不同部位采集2～3份血液标本培养。 （2）可疑细菌性心内膜炎患者、感染性心内膜炎患者：在1～2小时内采集3份血标本培养，如果24小时后阴性，再采集两份血标本培养。 （3）不明原因发热患者：先采集2～3份血标本，抽血间隔60 min，24～36小时后体温升高之前，再采集2份血标本进行培养。因为1次血培养不足以说明问题，可能会遗漏阳性结果。

（4）可疑菌血症但血培养持续阴性时；应改变血培养方法，以获得罕见或苛养的微生物。 （5）在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎，需马上做抗菌治疗；或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者，应立即从两臂分别取2份标本。 3.采血部位：采血部位通常为肘静脉。疑为亚急性心内膜炎的患者，以肘动脉或股动脉采血为宜。疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓。多次采血应在不同部位的血管穿刺以排除皮肤菌丛污染的可能。要避免从血管插管内取血，因插管常被污染，其培养结果不能反映真实情况。在不同部位取血，2次分离出同样菌种才是确定病原菌的有力证据。采血时要求严格无菌操作，防止皮肤正常菌群污染。 4.采血量：采血量与血培养的检出率相关，所以采血量一定要足够。成人一般为8～10ml/瓶，新生儿与婴幼儿为1～5 ml/瓶，骨髓采血量为1～2ml/瓶。 5.标本运送与保存：含血样的培养瓶应立即送往实验室；不能及时送检的标本，应将其放在室温，切忌冰箱存放，因为某些苛养菌可在低温环境中死亡，而使培养阳性率下降。 二、下呼吸道分泌物(痰培养)的标本采取和处理 下呼吸道分泌物(痰)的细菌学检查对病原学诊断起着重要作用，但痰标本的质量往往难以保证，造成病原学诊断和实际引起感染的病原菌脱节，直接影响抗菌药物的应用、甚至耐药菌的出现或流行。痰标本的细菌学检验地带网检查应注意如下几个问题。 1.标本的采集：痰液标本最好在应用抗菌药物之前采集，以深咳晨痰最好，主 要有自然咳痰法、支气管镜采集法、胃内采痰法、小儿采痰法和气管穿刺法等。

细菌培养技术

第二节细菌培养检测技术 节概述 细菌的培养技术是微生物实验中基本技术之一。大多数细菌均可用人工方法培养，只有将细菌培养出来才能对它进行研究和鉴定 知识点导航 一.培养基的种类 培养基（culture medium）是细菌生长繁殖所需要的各种营养物质的人工制品。适宜的培养基 能使细菌在体外迅速生长繁殖，便于对细菌进行分离和鉴别。可分为基础培养基、营养培养基、选 择培养基、鉴别培养基、厌氧菌用培养基和特殊培养基。 （一）基础培养基 只含有细菌生长所需的最基本营养成分，应用最广泛，为制备多种培养基的基础，常见的有肉 汤培养基、琼脂培养基。 （二）营养培养基 在基础培养基中加入葡萄糖、血液、血清、腹水或酵母浸膏等有机物，可供营养要求较高的细 菌生长需要或增菌用。如结核分枝杆菌培养基中添加鸡蛋、马铃薯、甘油等。 （三）选择培养基 利用不同种类细菌对化学物质的敏感性不同而制成，使分离菌大量繁殖而抑制其它细菌生长的 培养基。培养基中含有的抑制剂能抑制非目的菌生长或使其生长不佳，有利于目的菌的检出和识别 。选择培养基多为固体平板，用于从标本中分离某些特定的细菌。 （四）鉴别培养基 培养基中加有某些特定成分，如糖、醇类和指示剂等，用于检查细菌的各种生化反应，以资鉴 别和鉴定细菌。 （五）厌氧菌用培养基 专性厌氧菌须在无氧条件下才能生长，故需在培养基中加入半胱氨酸、硫乙醇酸钠等还原剂，降低培养基中氧化还原电势，并应与外界空气隔绝，使培养基本身为无氧的环境。 （六）特殊培养基 为某些需要在特殊条件下才能生长的细菌培养之用。如高渗盐增菌培养基、高渗糖增菌培养基、改良Kagan氏培养基等。 二.培养基的制备 制备一般培养基的主要过程基本相似，包括调配、溶化、调整pH、过滤、分装、灭菌及检定和 保存。 三.细菌检验室的注意事项及无菌技术

检验标本留取和采集要求

检验标本留取和采集要求 一尿液标本的留取 1. 尿常规（RT）、尿沉渣、尿妊娠（hCG）试验 取清洁干燥一次性尿杯一个（如在家中留取，容器应清洁干燥，不含任何药物），留取新鲜中段尿（连续排尿不中断，此时截取中段排的尿）作为送检样品约10~12ml，倒入一次性尿管内。标本以清晨第一次为宜，清晨第一次尿液为浓缩尿，各种有形成分及激素（如hCG）含量较高，易于检出，但尿常规和尿hCG也可随时留取。标本留取前最好清洁尿道口及外阴，同时避免经血、白带、精液、粪便等混入污染；容器中应尽量避免药物和各种消毒剂的存在，防止破坏标本中各种有形成分的形态及激素活性。 粘贴条形码的标本，应注意将条形码竖向、严密粘贴于尿管壁上，避免横向或斜贴引起患者信息丢失。标本送达最佳时间为半小时以内，最长不要超过2小时，否则造成： （1）尿中细菌生长繁殖，导致： ①尿素酵解，使尿pH升高，有形成分被破坏（管型分解、红细胞溶解）； ②葡萄糖被降解，使病理性糖尿消失； ③细菌菌体蛋白与病理性蛋白尿相互干扰。 （2）尿中的化学成分（尿胆原）可因尿久置而变性、分解。 尿中盐类因久置而析出结晶干扰显微镜检查，从而影响尿液的结果判断。 2. 乳糜尿标本 用于丝虫病和某些肿瘤病人的诊断。尿标本可随时留取，注意事项同尿常规标本，切忌混有油迹。

3. 24小时尿标本 24小时尿标本可用于检测24小时尿生化电解质（U-K、U-Na、U-Cl、U-Urea、U-Cr和24小时尿蛋白（U-Pro）定量，需添加防腐剂；24小时U-Ca、U-P，24小时尿轻链检查不可添加防腐剂。 准备清洁干燥大容器（最好有盖）。在第一次留尿时将防腐剂倒入容器中，并与尿液混匀。病人于清晨7时排尿弃去，以后每次尿均收集于容器中，至次日晨7时最后一次所排尿液也收入容器中。测量尿液总量，以毫升（ml）或升（L）表示，并记录在化验单正面明显位置。将全部尿液充分混匀后，取4ml左右倒入5ml带盖小试管/防腐剂小管内，并用透明胶带粘贴化验单立即送检。 标本留取过程中应避免混有血、脓或阴道分泌物等可引起“假性蛋白尿”的成分。24小时尿标本收集过程中最好放置2~8℃冰箱中冷藏保存，以减少微生物生长，维持尿液pH的恒定，如无条件也可放置于阴凉通风处。4. 尿普通培养及厌氧培养 准备无菌小瓶。患者自己留取标本时，先以肥皂水清洁外阴；也可由护士完成清洁消毒工作，程序如下：用0.1％新洁尔灭消毒尿道口及外阴（女性用棉球蘸消毒液，以尿道口为中心，自上而下、自内而外擦洗尿道口、小阴唇及大阴唇2次。男性应将包皮翻上，用棉球蘸消毒液，以尿道口为中心，向外旋转擦洗2次，注意洗净包皮及冠状沟；棉球不可往返使用），然后用无菌棉球擦干，并由病房或治疗室护士完成尿道口及外阴消毒。消毒后，病人自行排尿，尿流不要中断，排尿过程中，将前段尿弃去，用无菌小瓶接中段尿，盖好瓶盖立即送检。注意尿中勿加防腐剂。

临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范 一血常规检验标本 1 用EDTA-2K（EDTA-K2.2H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。 2 注意事项： A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 二红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 1 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。 2 注意事项： A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 三凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 1 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸 橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。 注意事项： A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。 C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。 四血型与交叉配合标本 1 用EDTA-2K（EDTA-K2.2H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。 2 注意事项： A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 五血流变检查标本 1 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽） 2 注意事项： A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。 B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。 六尿液常规检查标本 1 住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。 2 门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。 3 尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。 标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。 七尿液特殊检查标本 1 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。 A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间 分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。 B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。 C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。 2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚 上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。 八粪便常规检查标本 1 一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。 2 样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。 3 粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。 4 做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。 九浆膜腔积液检查标本