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生理学实验的一般操作方法

生理学实验的一般操作方法
生理学实验的一般操作方法

生理学实验的一般操作方法

一.生理学实验方法概述

生理学实验一般可分为急性实验法和慢性实验法两大类。

1.急性实验法

是在无痛条件下剖开动物身体,对某一两个器官进行实验观察。实验过程不能太长,试验后将动物处死。它又可分为两种:

(1)离体实验法

将要研究的器官或组织从活的或刚处死的动物上取出,置于接近正常生理条

件的人工环境中,以观察、研究其生理机能。如离体蛙心灌流等。

(2)在体实验法

动物在麻醉或毁坏脑或脊髓的状态下,用手术的方法暴露某一器官,观察、

研究其机能及变化规律。如心搏过程的观察、小肠运动的观察等。

2.慢性实验法

在无菌条件下对健康动物进行手术,暴露要研究的器官或摘除、破坏某一器官,然

后在接近正常生活条件下,观察所暴露器官的某些功能、以及摘除或破坏某器官后

所产生的功能紊乱等。

二.实验动物的固定

在手术过程中,必须将麻醉动物进行固定,以限制动物的活动,保证实验或手术的利

进行。常用的固定方法有两种:

1.背位固定法将动物的背部直接接触手术台的固定方法。在呼吸、循环、消化、泌尿等试验中均采用此法。

2.腹部固定法将动物的腹部直接接触手术台的固定方法。这种固定法适用进行脑脊髓的实验。

三.实验动物的麻醉

为了使动物在实验过程中保持安静,不挣扎,必须对动物进行麻醉。麻醉的深浅可以从呼吸、某些反射的消失、肌肉的紧张程度和瞳孔的大小等加以判断。一般用夹捏后肢股部肌肉以观察其反应的简易方法了解动物的麻醉深度。

(一)常用麻醉药麻醉药可分为局部麻醉剂和全身麻醉剂两种。在生理实验中,常采用全身麻醉法,如挥发性的乙醚和非挥发性的巴比妥类、水合氯醛等。

(二)麻醉药的给药途径和方法非挥发性麻醉药的给药途径为注射给药法,主要有静脉、腹腔、肌肉、皮下和淋巴囊注射。

1. 静脉注射:兔的部位为耳缘静脉,兔耳的外缘血管为静脉,中央的血管为动脉。注射前,先剪去注射部位的被毛,用左手食指和中指夹住耳缘静脉近心端,使其充血,并用左拇指和无名指固定兔耳。用左手持注射器将针头顺血管方向刺入静脉,刺入

后再将左手食指和中指移至针头处,协同拇指将针头固定静脉内,便可缓缓注射。

如注射阻力过大或局部肿胀,说明针头未刺入血管,应拔出重新刺入。首次注射应

从静脉的远心端开始,以便进行反复注射。

2. 腹腔注射:先剪去腹部的被毛,右手将注射器刺入下腹部腹白线稍外侧处,注射器与皮肤呈45°夹角,若针尖通过腹肌后抵抗消失,应保持针头不动,轻轻注入麻

醉剂。腹腔注射应防止把针头刺入肠、肝、膀胱等内脏器官,因此针头刺入后须轻

轻回抽,如无肠内容物、尿液或血液被抽出,说明针头未刺入内脏。

3. 肌肉注射:常用来麻醉禽类,注射部位多为胸肌或腓肠肌等肌肉较发达的部位。固定动物后,右手持注射器,使之与肌肉呈60°夹角,一次刺入肌肉。注射完毕后

用手轻轻按摩注射部位,帮助药液吸收。

4. 皮下注射:在注射麻醉中并不常用,注射时可将皮肤拉起,注射针刺入皮下,然后注入药物。

表1:动物常用麻醉剂的剂量和用法

四.实验动物的局部解剖

(一)颈部手术

1.气管分离术将动物背部固定,剪去颈部腹面的毛,用手术刀在紧靠喉头下部

沿颈部正中线切开皮肤5~7厘米,在气管正腹面用手或用止血钳分层分离皮下

结缔组织,即露出胸骨舌骨肌。用止血钳把正中线的胸骨舌骨肌分开,即可暴露

气管。

2.颈总动脉分离术颈总动脉位于气管外侧,腹部被胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌所

覆盖。分离时,可用左手拇指和食指捏住已分离的气管一側的胸骨肌,再稍想外

翻,即可将颈总动脉以及神经束翻于食指上。用玻璃分针轻轻分离动脉外侧的结

缔组织,便可将颈总动脉分离出来,最后穿线备用。

3.神经分离术在分离颈总动脉的基础上,提起动脉,即可看到粗细不同的神经,兔颈部血管神经束内有3条粗细不同的神经,其中迷走神经最粗,呈白色,一般

位于外側;交感神经稍细,略呈灰色,一般位于内側;减压神经最细,位于迷走

和交感神经之间。

(二)腹部手术

在动物实验中,腹白线是腹部切口的常用部位。腹白线是位于腹中线下面的白色腱膜线,从胸骨的剑突隆起直至耻骨联合。腹白线为较宽的结缔组织间层,神经血

管分布极少。因此,通过腹白线所作的腹正中切口,不伤及肌肉、神经和血管,

对动物损伤较小,较少出血。

血液的组成及红细胞比容的测定

目的:通过本实验学习测定红细胞比容的方法,了解血液的组成。

原理:全血中红细胞所占的容积百分比,称为红细胞比容。血液由血浆和血细胞组成,将抗凝血放在有刻度的比容管中,用离心沉淀的方法使血细胞与血浆分离。红细胞下沉,彼此压紧而又不改变每个血细胞的正常形态,这样就可以计算出红细胞在全血中所占的容积百分比。

实验器材:温氏比容管、长注射器、离心机、抗凝血等。

方法及步骤:

1. 用长注射器吸取抗经血,然后将注射器插入温氏比容管内,缓缓地将血液注入比容管中,使血液准确地装到刻度10厘米处。

2. 离心:将温氏比容管放入离心机中,以每分钟3000转的速度离心30分钟,取出比容管观察,其上层为血浆,下层红色部分为红细胞,血浆与红细胞之间有一白色薄层为白细胞和血小板。记录红细胞所占容积的数值,然后再以3000转速度离心5分钟。如红细胞的容积与上次相同,表明红细胞已被压紧。读数即为红细胞比容(如两次离心读数不同,则以同法继续离心5分钟,直至相同为止)。

注意事项:

1. 离心后,如红细胞表面是斜面,则读数取倾斜部分的平均值。

2. 装抗凝血的试管应用塞塞紧,防止血浆内水分蒸发,影响红细胞比容。

血红蛋白测定

目的:把学习用比色法测定血红蛋白的方法。

原理:测定血红蛋白的方法较多,实验常用比色法。其原理是在一定量的血液中加入一定量的血液的稀盐酸,血红蛋白与盐酸作用后,能是亚铁血红素变成高铁血红素,呈现较稳定的棕色。用水稀释后与标准比色板比较,可求出每100ml血液中所含的血红蛋白克数。

实验器材:血红蛋白计(标准比色架、血红蛋白稀释管)、玻棒、血红蛋白吸管、滴管、采血针、1/10盐酸、酒精棉球、95%酒精、乙醚、蒸馏水等。

方法与步骤:

1. 用滴管加1/10N盐酸于血红蛋白稀释管内,到刻度“2”处。

2. 用酒精棉球消毒动物的采血部位,待其干燥后,用消毒过的采血针刺破血管,使血液流出,第一滴血弃去不要,待第二滴血流出时,用血红蛋白吸管的尖端接触血滴,吸血至刻度20mm3处。

3. 用滤纸片擦干吸管周围的血液,将吸管插入血红蛋白稀释管的盐酸内,轻轻吹出血液至管底部,反复吸入并吹出稀释管内上层的盐酸,洗涤吸管多次,使吸管内的血液完全流入稀释管内,注意避免起泡,用玻棒搅匀后,放置10分钟。

4. 把稀释管插入比色架中,使无刻度的两侧面位于空格的前后方,便于比色。

5. 用滴管向稀释管内逐滴加入蒸馏水(每加一滴要搅拌),边滴边观察颜色,直至颜色与标准比色柱相同为止。稀释管上液面的刻度读数即为每100ml血液中血红蛋白的克数。

注意事项:

1. 血液与盐酸作用时间不可少于10分钟,否则血红蛋白不能充分转变成高铁血红蛋白,使结果偏低。

2. 比色时应将玻棒取出,而且最好在自然光下,而不应在黄色光下进行,以免影响结果。

3. 整个实验过程中均应注意避免起泡。

红细胞沉降率的测定

目的:了解红细胞沉降的原因并掌握沉降率的测定方法。

原理:从血管中抽取一定量的血液,经抗凝处理后,放入有刻度的血沉管中,直立静止一段时间,可见红细胞因比重较大而逐渐下沉。在单位时间内红细胞下沉的速率,称为红细胞沉降率,简称血沉。它是以血浆层的高度来决定,血浆层越高,表示沉降率越快。在临床上某些疾病可引起红细胞沉降率的显著改变,故测定红细胞沉降率具有临床诊断价值。

实验器材:抗凝血、血沉管、血沉台、3.8%柠檬酸钠、小试管、注射器、针头等。

方法及步骤:

1. 将抗凝血吸至血沉管内,恰好吸至刻度“0”处。然后擦去血沉管外面的血液,垂直地固定于血沉台上。

2. 固定后,立即开始计算时间,分别在15分钟,30分钟,45分钟,1小时,2小时检查血沉管上部血浆柱的高度,以毫米表示之。

注意事项:

1. 本实验用的血液与抗凝剂的容积比列规定为4:1。

2. 自采血时起,本实验应在2小时内完毕,否则会影响结果的准确性。

3. 小试管、血沉管、注射器、针头等均应清洁干燥。

4. 沉降率随温度的升高而加快,故应在室温22-270C时测定为宜。

呼吸运动的调节

目的:了解呼吸运动的记录方法,观察各种因素对呼吸运动的影响,并分析其作用机制。原理:正常的呼吸运动由于受到体内神经和体液因素的调节,能够有节律地进行,并能适应机体代谢的需要。体内外各种不同因素可通过神经与体液途径,对呼吸运动产生影响。

实验动物:家兔

实验器材:MS-302型生物信号记录分析系统、电子刺激器、保护电极、手术台、手术器械、玻璃分针、线、气管套管、胶管、水合氯醛、3%乳酸、CO2气球、注射器、注射针头、铁支架、双凹夹等。

方法与步骤:

1,将兔麻醉后背位固定在手术台上。

2,在颈部分离出气管两侧的迷走神经约2CM长,各穿一条线备用。

3,用玻璃分针分离出气管(在第三气管环以后,约1CM长),在气管下穿一条线备用。

用虹膜剪于2-3气管环之间剪一“T”形切口,用小棉球深入切口内除去气管内分泌物及血迹,以防窒息。

4,从“T”形管切口处插入气管套管,用备用线结扎,并将线套侧管上固定,以防套管滑脱.将套管的一端侧管套上压力换能器.

5,仪器连接及应用

开机,进入MS-302系统.

(1)通道选择:分别将1、3通道选为“无输入”,2通道选择为“呼吸”,将压力换能器

的输出连至第2通道。

(2)打开“打印选择”菜单,选择打印通道后,按Esc键退回。

(3)进入“记录状态”,依次进行每个实验项目,按空格键暂停,按F9打印结果。

6,描记一段正常的呼吸曲线。

7,将CO2气球出口与气管套管的另一端侧管靠近,使兔吸入CO2,观察呼吸曲线的变化。

8,使兔缺氧,观察呼吸曲线的变化。

9,将气管套管的另一端侧管连接一段大约50CM长的胶管,使无效腔增大,观察呼吸曲线的变化。

10,从耳缘静脉注入3%的乳酸0.5mL,观察呼吸曲线的变化。

11,提起一侧迷走神经的备用线,剪断迷走神经,观察呼吸曲线的变化。

12.再将另一侧迷走神经的备用线结扎并剪断,观察呼吸曲线的变化。

13.剪去腹部之毛,自腹中线剪开,推开腹腔脏器,露出膈肌,注意膈肌收缩及其位置变化与呼吸运动的关系。

注意事项:

1,实验时须注意比较每作一项实验前后呼吸曲线的变化。

2,注射乳酸时注意不让乳酸从静脉中漏出,以免兔子因疼痛而挣扎,影响实验结果。反射弧的分析

目的:通过本实验分析反射弧的组成部分,了解反射弧的完整性与反射活动的关系。原理:反射弧由感受器、传入神经、神经中枢、传出神经、效应器五部分组成。反射弧的结构与功能的完整是实现反射活动的必要条件,反射弧的任何一部分受到破坏,均不能出现放射活动。

实验动物:蛙或蟾蜍

实验器材:手术器械、玻璃分针、线、蛙板、电子刺激器、铁支架、双凹夹、棉花、培养皿、滤纸、保护电极、普通电极、0.5%和1%硫酸、1%可卡因或乙醚等。

方法及步骤:

1. 制备脊蛙或脊蟾蜍:用探针捣毁蛙或蟾蜍的脑髓,用一小棉球塞入创口止血。

2. 用小镊子将蛙或蟾蜍的下颌穿一小孔,然后穿一条线,将其悬挂在铁支架上。

3. 用培养皿盛0.5%硫酸,将蛙一侧后肢的中趾趾端浸入,该侧后肢立即出现屈腿反射。

迅速以清水洗净脚趾硫酸,并用布轻轻擦干。

4. 用剪刀在同侧(指硫酸刺激的那一侧)跟腱部位将皮肤做一环形切口,并将其下部皮肤剥掉,在以上述方法刺激,观察有无反射出现。

5. 将浸过硫酸的滤纸片贴在剥皮肤的股部皮肤上,观察有无屈腿反射?

6. 在另一侧后肢股部的背侧,沿坐骨神经的行走方向将皮肤作一纵形切口,将坐骨神经分出,并在神经下面穿一条线备用,将该侧中趾的趾端进入盛有0.5%硫酸的培养皿中,观察到屈腿反射后,提起放在坐骨神经下面的备用线,用蘸有1%可卡因或乙醚的小棉球置于神经干下,约半分钟后,再以同样方法刺激该侧中趾趾端,观察有无反射出现?如果仍有反射出现,则每隔半分钟刺激一次,观察反射是否消失?7. 当反射刚刚消失时,迅速以浸有1%硫酸的小块滤纸贴于该侧躯干部的皮肤上,观察有无反射出现?如有反射,则每隔1分钟刺激一次,观察反射是否消失?

8. 当反射消失后,拿掉蘸有可卡因或乙醚的小棉球,并迅速用任氏液反复冲洗坐骨神经,再以同样方法刺激该侧中趾趾端(或采用电刺激),观察是否恢复?如未恢复,继续用任氏液冲洗坐骨神经,并放置一段时间,再观察反射的恢复。

9. 待反射恢复后,增大电刺激强度,在刺激该侧中趾趾端,观察对侧有无屈腿反射你?10. 用探针插入脊椎管,上下搅动以破坏脊髓,再刺激身体任何部位,观察有无反射出现?

注意事项:

1. 捣毁脑组织时不能损伤脊髓。

2. 每次用硫酸刺激的时间不宜过长,以免烧伤皮肤。

3. 用硫酸刺激后,必须立即用清水洗去硫酸,并用布擦干。

脊髓反射

目的:观察脊髓反射的基本特征、兴奋在中枢神经系统内传导的基本特征,以及脊髓在维持肌紧张中的作用。

原理:中枢神经系统活动的基本方式是反射。每一反射均有其固定的反射弧,并与其他反射相互协调。兴奋在中枢内传导时有总和、扩散、后作用及抑制等特征;脊髓是维持肌紧张的基本中枢,而且,脊髓是中枢神经系统的最低级部位,它的机能最简单,便于观察。

实验动物:蛙或蟾蜍

实验器材:手术器械、玻璃分针、线、蛙板、电子刺激器、铁支架、双凹夹、棉花、培养皿、纸、保护电极、普通电极、0.5%和1%硫酸等。

方法及步骤:

1. 观察脊髓反射活动的特征:

制备脊蛙或脊蟾蜍,将其悬挂在铁支架上,进行下列实验:

(1).屈肌反射与对侧伸肌反射:用0.5%硫酸进入一侧后肢中趾趾端,可见该侧后肢屈曲,而对侧后肢伸直。

(2).搔扒反射:以浸有0.5%或1%硫酸的小滤纸片贴于蛙或蟾蜍的一侧腹部,可见其同侧后肢抬起,向受刺激的部位搔扒。

2.兴奋在中枢神经系统内传导的特征:

(1).反射作用的抑制:用0.5%或1%硫酸测定反射时,然后用镊子夹住蛙或蟾蜍一侧大腿根部的一部分皮肤(夹的力度要适当,不要太大),待动物安静后,再用0.5%或1%硫酸测定反射时,比较二者有何区别?

(2).刺激的总和:将普通电极的两极置于一侧后肢某处,选用单个刺激,并调节至阀下刺激强度,反复刺激,观察有无反射发生?

(3).兴奋的扩散:选用连续刺激,刺激蛙或蟾蜍的一侧后肢某处,调节刺激强度逐渐由弱到强,观察在强电流刺激下,其反应部位有无增加?

(4).兴奋的后作用:用电刺激蛙或蟾蜍的一侧后肢某处,观察在刺激停止后,反射活动是否立即停止?

3.脊髓在维持肌紧张中的作用:实验蛙的四肢一直处于某种程度的委曲状态,这说明肌肉处于某种程度的紧张状态,若用探针插入脊椎管内,上下搅动,将脊髓破坏后,则肌肉松弛,四肢完全下垂。

注意事项:在每次刺激之间应间隔3-4分钟,其余同实验二十五。

胰岛素惊厥

目的:通过本实验观察注射胰岛素对动物血糖水的调节作用。

原理:胰岛素是调节机体血糖水平的激素之一。给动物注射大量胰岛素后,引起血糖降低,动物出现惊厥现象。

实验动物:小白鼠或家兔。

实验器材:注射器、胰岛素溶液、50%葡萄糖、酸性生理盐水、0.01%肾上腺素、20%葡萄糖等。

方法与步骤一:

1. 取4只体重相近的小鼠,分为实验组与对照组,每组2只。

2. 给实验组小鼠腹腔注射胰岛素溶液(0.1毫克/10克体重),胰岛素溶液浓度为2国际单位/毫升。

3. 给对照组小鼠腹腔注射等量生理盐水。

4. 将两组动物做好标记后,放在室温下观察,比较两组动物的神态、姿势及活动情况。

5. 当动物出现抽搐,翻滚等惊厥反应是,记录时间,并将其中一只立即皮下注射50%葡萄糖(0.1毫升/10克体重)。

6. 比较对照组动物、注射葡萄糖的动物、以及出现惊厥而未经注射葡萄糖的动物的活动情况,分析所得结果。

注意事项:

1. 动物在实验前必须饥饿18-24小时。

2. 用pH2.5-3.5的酸性生理盐水配置胰岛素。酸性生理盐水配置:将10毫升0.1N HCL加入300毫升生理盐水中,调pH值为2.5-3.5.

3. 若实验在冬天进行,注射胰岛素后,最好将动物放在30-370C环境下保温,以加快反应的出现。

方法与步骤二:

1. 取事先经过饥饿24-36小时的家兔二只,称重后从耳缘静脉注射胰岛素10-20国际单位/公斤体重。

2. 约1小时后,观察动物有无不安、呼吸急促、惊挛,甚至休克现象。

3. 待上述低血糖症状出现后,给甲兔即使静脉注射20%葡萄糖20毫升,给乙兔及时皮下注射0.01%肾上腺素(0.3-0.4毫升/公斤体重),仔细观察实验动物,并记录试验结果。

摘除动物肾上腺的观察

目的:学习用器官摘除法造成功能缺损,从而研究内分泌腺生理功能的方法:观察动物被摘除肾上腺后,对其生理机能的影响。

原理:肾上腺分皮质和髓质两部分。肾上腺皮质分泌糖皮质激素、盐皮质激素和少量性激素。糖皮质激素参与调节体内糖、蛋白质、脂肪的代谢,并能增强机体对有害刺激的耐受能力;盐皮质摘除肾上腺后,动物表现出肾上腺皮质功能失调的现象,例如食欲降低、低血压、肌无力、肾衰竭等,同时也表现出抗炎症、抗过敏能力下降及对有害刺激的耐受力下降等。实验动物:小白鼠或大白鼠

实验器材:手术器械、手术台、注射器、鼠笼、乙醚、1%氯化钠、可的松、碘酊、酒精、棉球等。

方法与步骤:

1 动物与分组与手术:

(1)动物的分组:选择健康、性别相同、体重相近的小白鼠12-20只,称重随机分为四组,

每组3-5只,编号。第1、2、3组为摘除肾上腺的实验组,第4组为对照组。

(2)肾上腺摘除:将小白鼠用乙醚麻醉后腹位固定与手术台上,于最后肋骨至骨盆区之间剪毛,用碘酊消毒后,从最后胸椎处向后,沿背部中线切开皮肤约1-1.5厘米。先一侧。于最后肋骨后缘和背最长肌的外缘分离肌肉,用镊子扩大创口,露出脂肪囊,找到肾脏,在肾脏的前上方可看到由脂肪组织包囊的粉黄色粟粒大小的肾上腺。

(3)用外科镊子钳住肾上腺及与其相连的脂肪和结缔组织,不必结扎血管就可轻轻摘除肾上腺。将肌肉创口缝合,用同样方法再摘除另一侧肾上腺,最好缝合皮肤,并涂以碘酊。(4)对照组手术操作与实验组相同,但不摘除肾上腺。

2 观察项目:

(1)肾上腺摘除对动物水盐代谢和存活率的影响:手术后,第1组和第4组动物只饮清水,第2组动物饮1%氯化钠,第3组动物除饮清水外,每天灌服可的松两次,每次50微克。

连续观察一周,每天记录动物的进食情况、体重、活动情况、肌肉紧张度和死亡率等,将实验结果列表进行比较。

(2)肾上腺摘除对动物应激功能的影响:提前两天对存活的实验组和对照组动物禁食,全部只饮清水。比较各组动物在禁食2天后,在姿势、活动情况和肌肉紧张度等方面与禁食前有何变化?各组间有何差异?

将动物移入4℃冷室,保证饮水和食物,每日观察一次,记录其死亡情况。

注意事项:

1 动物应编号,以免混淆。编号的方法可用黄色的苦味酸溶液在背部写上号码。亦可在耳廓悬挂小铝牌。

2 摘除肾上腺的动物对有害刺激的抵抗力降低,应尽可能单笼饲养,以免互相攻击;同时要喂以高蛋白和高能量的饲料,室温宜保持在20-25℃之间。

生理学实验报告

生理学实验报告 实验题目: 蛙的体循环血压、心肌收缩和心电图(ECG)的同步记录与分析 课程名称:生理学实验 专业:10级生物技术及应用(基地班) 教室:A414 学生姓名:徐棒夏凡女 学号:10350083 10350081 指导老师:龙天澄张碧鱼陈笑霞 日期:2012年5月15日 一.实验目的 1.学习并掌握蛙的体循环血压、心肌收缩和心电图(ECG)的同步记录 2.记录和分析植物神经系统和重要神经递质对血压、心电(心肌的电生理特性)和心搏(心肌的收缩特性)的影响。 二.动物与器械 青蛙;蛙心插管、常用手术器械、计算机采集系统、蛙心夹、YP100压力换能器、三通管、注射器、保护电极、露丝电极、一维位移微调器、固定针、蜡盘、培养皿、污物缸、棉线、纱布、滴管、小烧杯;任氏液、石蜡油、肾上腺素溶液、乙酰胆碱溶液、肝素溶液;

三.实验原理 神经与体液因素对心血管功能的调节可通过心肌收缩力、心电图和血压的变化反映出来。尤其是血压的指标直接反映了心输出量和外周阻力的变化,可以较好的评价整体的心血管功能。 本实验用青蛙主动脉插管法,直接测量血压,并同步记录心搏和心电图。记录和分析植物神经系统和重要神经递质对血压、心电(心肌的电生理特性)和心搏(心肌的收缩特性)的影响。 四.实验步骤 1. 分离迷走交感混合神经干 按常规方法用探针刺毁蟾蜍的脑和脊髓,将动物背位放在蛙板上。把左侧下颌角与前肢间的皮肤纵向剪开,用镊子紧贴下颌角分离皮下组织。找到体轴走向的提肩胛肌,小心地将提肩胛肌横向剪断,即可见到其下方的血管神经束(皮动脉,颈静脉和迷走-交感混合干)。在迷走—交感混合干下方穿一线,用玻璃分针分离开神经,用湿生理棉球暂将神经覆盖,以避免神经干燥。 2. 暴露心脏 在胸骨柄后方的皮肤上先剪开一小的切口,再自切口处向左右两侧锁骨外侧方向剪开皮肤,切口成V形,把切开的皮肤掀向头端。在胸骨柄后方的腹肌上也剪一小切口,沿身体正中方向剪开剑突和胸骨(剪子尖向上翘以免损伤血管和心脏),剪断左右乌喙骨和锁骨及提臂肌,使胸部创口也呈V形。可见到心包和心脏。用眼科剪剪开心包膜,在心脏舒张时夹上蛙心夹。蛙心夹拴线的另一端与张力换能器相连(换能器的输出端与生理信号采集处理系统的一个输入通道相连)。 3. 主动脉插管 YP100压力换能器的直端和侧端管上加装三通管。从侧管注入液体石蜡,将系统内气泡赶净。用装有50%柠檬酸钠溶液(肝素-任氏液)的注射器连接于侧端管上,直端管上连接心脏插管。 用线结扎动脉的远心端,在左主动脉分叉处穿线备用。用手术剪在结扎处与穿线处剪一V形口,将插管经V形口插入动脉圆锥适当深度。穿线结扎并固定于插管上。

生理学教学方法的应用体会

生理学教学方法的应用体会 1讲授法 讲授法是通过语言向学生系统地传授知识的方法,是课堂教学最常用的方法之一,其优点是能在有限的教学时间内系统地传授知识,把教师本人的学习心得和治学经验传授给学生,并能在教学内容上抓住要领,突出重点,使讲课内容少而精,做到深入浅出、系统连贯、层次分明、条理清楚。在相同的时间内,学生从教师讲授中获得的信息量远远大于自己看书获得的信息量。教科书中“绪论”及“细胞的基本功能”章节可以说是生理学课程的总论部分,许多内容贯穿全书,是生理学课程讲述最基础的部分,因其内容枯燥,名词概念繁多,再加上学生初次接触生理学,需要教师精心讲授,学生才能理解接受。如靠学生自学,不但会影响教学进度,还会影响学生对最基本概念的理解和把握,因此宜以“讲授法”为主,同时辅以其它方法。 正确运用讲授法,要求教师必须认真组织教学,使教学环节紧密相连,同时要保证内容的科学性、正确性。首先教师要深刻理解教学大纲的精神,认真钻研教材,然后对教材内容进行“剖析”,明确哪些是重点,哪些是难点,哪些地方可以设疑,哪些内容枯燥乏味,在此基础上对教学内容进行独特的自我设计,使教学内容从平面转向立体,重点突出,难点易解。在讲授过程中,必须与板书、教具紧密结合,使讲授内容清晰、系统、形象、生动。尤其是多媒体课件的涌现,使教学中用语言难以描述清楚的生理过程通过课件而形象、生动、具体地呈

现在学生面前,加深学生对这些知识点的理解。 2启发式、问题式教学法生理学的内容是经过实验验证和在此基础上形成的理论组成的,根据生理学的特点,采用启发式、问题式教学方法可取得事半功倍的效果。在这一教学过程中,要求教师潜心钻研教材,在把握学生知识水平和对知识的理解能力的基础上,对本堂课要提出哪些问题,如何和何时提出问题进行精心设计。例如,讲述脊髓对躯体运动调节时,可以设问,脊髓正常情况下总是与更高位中枢保持联系,如何才能了解其单独作用能对躯体运动功能做出何种调节?脊休克产生的原因有创伤和失去高位中枢的调节作用,如何验证其产生的原因?脊休克后,部分反射还能恢复,说明了什么问题?这样既调动了学生学习的积极性,又启发了实验设计的思路。又如讲授完骨骼肌的结构、肌丝的滑行学说、兴奋- 收缩耦联及神经- 肌肉接头后,可以布置这样的问题:坐骨神经兴奋后,如何引起腓肠肌收缩?甚至可以在讲述完神经系统之后,提出人是如何将收缩某一部位肌肉这一意识转化为肌肉收缩这一过程的?总之,在生理教学中灵活运用启发式教学方法,对于提高生理教学质量具有不可忽视的积极作用。 3对比和总结 对同一章节的并列内容采用对比的方式讲授,比单独分别讲 授效果好。如:动作电位与局部电位的讲解,可以把两者不同的特性进行对比;心肌细胞生物电的讲解,把窦房结、P 细胞、浦肯野细胞和心室肌细胞的动作电位波形画在黑板上,学生很快就能区分哪是自律细胞,哪是工作细胞,哪是快反应细胞,哪是慢反应细胞。每一章的内容讲完后,可进行概括性的总结,使学生对所学内容有一个总的轮廓,形成一个整体概念。在总结中要重视图表、表格的作用,图表和表格能使人一目了然,把知识系统化、条理化,加强知识间纵横联系。分类比较

生理学实验报告教案

生医2012秋生理学实验报告 指导教师: 实验员: 学号: 联系方式:

实验一骨骼肌的观察及骨骼肌的单收缩与强直收缩 【目标要求】 1.掌握蛙类动物单毁髓的实验方法。 2.掌握坐骨神经-腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备方法。 3.学习肌肉收缩的记录方法。 4.观察与分析肌肉单收缩的三个时相,分析骨骼肌收缩形式与刺激频率之间的关系。 【基本原理】 蛙类动物的某些基本生命活动,如神经的生物电活动、肌肉收缩等与哺乳动物相似。其离体组织所需的生活条件比较简单,易于控制和掌握,而且动物来源丰富,因此在生理学实验中常用蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本永和坐骨神经标本来观察组织的兴奋性、刺激与反应的规律以及骨骼肌收缩的特点等。 肌肉受到一次阈上刺激而产生的一次收缩为单收缩,其过程可分为三个时相,即潜伏期、缩短期与舒张期。肌肉收到连续的阈上刺激时,如果刺激间隔小于单收缩的时程,相邻两单收缩的时相会出现融合,表现为强直收缩现象。如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的舒张期,称不完全强直收缩,如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的缩短期,称完全强直收缩。躯体运动是以骨为杠杆,以关节为枢纽,由肌肉收缩产生动力完成的。 【材料与器械】 蟾蜍或蛙,蛙类手术器械(手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金冠剪、毁髓针、玻璃针、固定针),蛙板,玻璃板,锌铜弓,小烧杯,滴管,纱布,细棉线,任氏液。 BL-420生物机能实验系统(或其他生理记录仪),张力换能器。 【实验步骤】 1.双毁髓的方法 一手握蟾蜍,食指按压头部前端,拇指压住躯干背部,令其背部向上,头向前俯;另一手持毁髓针在左右耳后腺之间,背部的凹陷处将毁髓针垂直刺入,然后将针尖向前刺入颅腔,搅动以捣毁脑组织,此时的动物为单毁髓动物。彻底捣毁脊髓时,可见蟾蜍后肢突然蹬直,然后瘫软。如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如,表明未毁坏脊髓,必须重新毁髓。 2.剥制后肢标本 将双毁髓的蟾蜍背面向上放在蛙板上,一手持手术镊轻轻提起两前肢之间背部的皮肤,另一手持手术剪横向剪开皮肤,暴露脊柱。用金冠剪横向剪断脊柱。一首持手术镊提起断开的脊柱后端,另一手用金冠剪沿脊柱两侧剪开体壁,再剪断下腹壁肌肉,使头部、前肢及内脏自然下垂,将其自腹后壁剪除。然后用蘸有任氏液的左手捏住断开的脊柱后端,右手向后方撕剥皮肤,将剥干净的后肢放入盛有任氏液的培养皿中。弃其头部、内脏及剥下的皮肤,清洗手及手术器械上的污物。 3.分离两后肢 左手托起去皮的标本,右手持金冠剪直接剪开耻骨联合,随后剪开两后肢相连的肌肉组

生理学实验报告一

生理学实验报告 一、实验题目: 1.实验员:马冰(0941054) 2.时间:2011年10月10日 3.组号:第二组 4.班级:09生科 二、实验目的 1.熟悉并掌握生物信号采集处理系统 2.掌握蛙类坐骨神经腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备技术 3.观察不同刺激强度、刺激频率对骨骼肌收缩形式的影响 4.观察电刺激对神经兴奋性、兴奋传导的影响 5.熟悉阈强度、最适刺激强度及单收缩、完全强直收缩之间的关系 三、实验原理 兴奋性:可兴奋组织对外界刺激发生反应的能力(或细胞受刺激时产生动作电位的能力)。 兴奋:也就是动作电位,指可兴奋细胞受阈刺激或阈上刺激时,细胞在静息电位的基础上发生一次迅速的、短暂的并可扩布的电位变化。 阈强度:在刺激持续时间和刺激强度-时间变化率固定时,引起可兴奋细胞产生动作电位的最小刺激强度,也叫阈值或阈刺激。 阈刺激或阈上刺激产生动作电位,其特点:①“全或无”现象;②进行长距离无衰减传递(神经纤维、骨骼肌细胞等)。 阈下刺激引起局部电兴奋,其特点:①幅度在阈下刺激的范围内,随刺激强度的增大而升高;②在细胞膜上可进行电紧张性扩布,即衰减性传播;③可以相互融合(时间总和、空间总和)。 最适刺激强度:引起肌肉产生最大收缩时的最小刺激强度。 单收缩:肌肉受到一次短促的刺激时,会产生一次机械性收缩和舒张的过程。 兴奋性作为三大基本生命现象(新陈代谢、兴奋性、生殖)具有重要的生理意义。那么,什么叫兴奋性呢?它是指可兴奋组织对外界刺激发生反应的能力。所有可兴奋组织产生兴奋

(也就是动作电位)都必须有一个条件:刺激。 刺激包括三方面的内容:刺激强度、刺激时间、刺激强度-时间变化率。其中,刺激强度就是电刺激的脉冲电压,刺激时间就是某个单刺激所持续的时间。 刺激强度对骨骼肌收缩形式的影响(固定刺激的时间和刺激强度-时间变化率):单根神经纤维或肌纤维对刺激的反应是“全或无”式的。但在神经纤维肌肉标本中,则表现为当刺激强度很小时(阈下刺激),不能引起神经纤维动作电位的产生和肌肉的收缩;当刺激强度在一定范围内变动时,肌肉收缩的幅度与之成正比。因为坐骨神经干中含有数千万条粗细不等的神经纤维,其兴奋性各不相同。弱刺激只能使其中少量兴奋性高的神经纤维先兴奋,并引起它所支配的少量肌纤维收缩。随着刺激强度逐渐增大,发生兴奋的神经纤维数目逐渐增多,其所引起收缩的肌纤维数目亦增多,结果肌肉收缩幅度随刺激强度的增加而增强。当刺激达到某一强度时,神经干中全部神经纤维兴奋,它们所支配的全部肌纤维也都发生兴奋和收缩,从而引起肌肉的最大收缩。此后,若再增加刺激强度,肌肉收缩幅度将不再增加。我们把引起肌肉产生最大收缩时的最小刺激强度叫最适刺激强度。 刺激频率对骨骼肌收缩形式的影响(把刺激强度固定在最适刺激强度,把单刺激改为连续单刺激):刺激频率就是单位时间内连续刺激的次数。随着刺激频率的增高,肌肉的反应依次表现为单收缩、不完全强直收缩和完全强直收缩: ⑴如果刺激频率很小时,每相邻两个刺激的间隔时间很大,当其大于肌肉收缩的收缩期和舒张期之和时,肌肉表现为一个个的单收缩。单收缩包括收缩期及舒张期。前者占时较后者为短。 ⑵当逐渐增加刺激频率,使新的刺激引起的肌肉收缩落在前一个刺激引起肌肉收缩的舒张期,这样,肌肉在连续未完全舒张的基础上就开始新的收缩,形成锯齿样的不完全强直收缩张力曲线。 ⑶当刺激频率继续增大时,新的刺激引起肌肉收缩落在前一次刺激引起肌肉收缩的收缩期,这样,肌肉在连续收缩不全的基础上出现新的收缩,形成一个类似方波的完全强直收缩张力曲线。 四、实验方法和步骤 (见生理学实验指导P36,P40,P44) 五、实验对象 蟾蜍

生理学教学方法的探讨与研究

生理学教学方法的探讨与研究 生理学是医学科学的一门关于人体正常机能的学科,实验性较强,内容抽象、较难理解,记得慢、忘得快,与医学其它各学科联系密切。作为一名医学生,扎实掌握生理学知识并能灵活应用于临床实践是必需的。经过十余年的探索与研究,笔者积累了一些经验,在教学实践中不断地验证并提高,取得良好的效果,受到学生的欢迎。 1、抽象的问题具体化、形象化,庞杂的问题系统化 要想解决这一问题,教师必须备课充分。例如:“细胞的生物电”现象一章,有一个概念——阈电位:当细胞受到刺激,使细胞膜去极化达到阈电位,就引发钠离子快速大量内流,从而爆发动作电位。笔者把阈电位比喻象扣动扳机,这样讲解,学生容易领会、记忆深刻,课堂反馈的效果良好。 2、充分应用教学手段,多方位、多角度拓宽学生接受知识的渠道 生理学知识来源于科学实践,在教学中应紧抓住实践这一环节,多角度开展生理学实验来加深对知识的理解。首先,在课堂上传授理论知识的同时,笔者善于应用示意图、模拟图展示讲解各种生理现象,使学生加深对课堂知识的领会;再者,通过电视教学片观察各种生理现象的发生、发展过程,使学生加深对课堂知识的领会;第三,通过学生亲自动手操作相关的生理学实验,更直观地观察生理学现象,加深对理论的理解。通过这样“耳闻”、“亲自操作”、“目视”等多方位验证理论,达到了掌握相关知识的目的,既便于记忆,又便于运用,同时对培养学生的求知欲、操作技能的提高都大有益处。 3、驾驭课堂,开展课堂讨论 重视学生课堂讲座是有多方面益处的,无论是理论课,还是实践课,针对知识点进行的讨论,既能反映出学生对知识的理解程度,又能找出漏洞和不足,从而使教师在对知识的传授中更有重点、把握程度更为准确,亦相应地提高了教学水平。另外,问题点的提出能使学生产生兴趣,具有启发性,促使学生进行积极的思考,在讨论的过程中加深对理论知识的理解,达到举一反三的效果,既锻炼了学生的思维,又增强了解决实际问题的能力。 以上是笔者在教学过程中积累的一点经验。积极探索适合现今学生实际水平和能力的教学方法,是每个有责任感的教师孜孜探求的问题。通过多年的探索与实践,运用这些方法增强了学生的信心,激发了学习的兴趣,培养了实践操作技能,拓宽了学生的思维,为掌握生理学知识和医学其他各学科知识打下坚实牢固的基础,从而达到了提高教学质量、培养学生素质的目的。

神经生理学模拟实验报告材料

实用文档专业:应用心理学 : 学号:日期:地点:汪加诚3110102422 2016.1024 医学楼 C512 实验报告 课程名称:实验名称: 神经生理学指导老师:成绩: 同组学生:神经干不应期的测定实验类型:模拟实验 一、实验目的 了解蛙类坐骨神经干产生动作电位后其兴奋性的规律性变化。学习绝对不应期和相对不 应期的测定方法。 二、实验原理 神经组织和其他可兴奋组织一样,在接受一次刺激产生兴奋以后,其兴奋性将会发生规 律性的变化,依次经过绝对不应期、相对不应期,超常期和低常期,然后再回到正常的兴奋 水平。 采用双脉冲刺激的方法。将两刺激脉冲间隔由最小逐渐增大时,开始只有第一个刺激脉 冲刺激产生动作电位(action potential, AP),第二个刺激脉冲刺激不产生 AP,当两刺激脉 冲间隔达到一定值时,此时第二个刺激脉冲刚好能引起一极小的 AP,这时两刺激脉冲间隔即 为绝对不应期。继续增大刺激脉冲间隔,这时由第二个刺激脉冲刺激产生的 A P逐渐增大,当 两刺激间隔达到某一值时,此时由第二个刺激脉冲刺激产生的 AP,其振幅刚好和由第一个刺 激产生的 A P相同,这时两刺激脉冲间隔即为相对不应期。 三、材料和方法 【材料】:蟾蜍或蛙;标本屏蔽盒、任氏液、微机生物信号采集处理系统。 【实验方法】: 1.系统连接和仪器参数设置 (1)RM6240 系统:点击“实验”菜单,选择“肌肉神经”或“生理科学实验项目”菜 单中的“神经干兴奋不应期的测定”或“神经干兴奋不应期的自动测定”项目。系统进入该 实验信号记录状态。仪器参数:1通道时间常数 0.02s、滤波频率 1KHz、灵敏度 4mV,采样频率 80KHz,扫描速度 1ms/p。双刺激激模式,最大刺激强度,刺激波宽 0.1ms,起始波间隔 30 ms,延迟 2ms,同步触发。

高师院校生理学教学方法初探

高师院校生理学教学方法初探 3肖玲远 (毕节学院生物系,贵州毕节 551700)摘 要:按照素质教育的要求,针对生理学教学的特点和高师院校学生具体情况,对生理学教学改革的措施和方法进行了初步探讨。 关键词:高师院校;素质教育;生理学;教学方法 中图分类号:Q4-42 文献标识码:B 文章编号:1005-6769(2005)03-0084-02 The Ele m en t ary D iscuss About Physi ology Teach i n g M ethod of Teacher ’s College Xiao L ing -yuan (Depart m ent of B i ol ogy,B ijie Teachers College,B ijie 551700,China ) Abstract:The paper according t o de mand of quality educati on,characteristic of physi ol ogy teaching and student ’s trait of teacher ’s college,discusses the measure and method about physi ol ogy teaching ref or mati on . Key words:teacher ’s college;quality educati on;physi ol ogy;teaching method 生理学是综合性大学、师范院校生物专业及医学各专业的一门理论及实验性很强的基础、重点的主干课程之一,伴随知识剧增及课堂授课课时减少的矛盾的出现,生理教学中如何将素质教育贯穿于教学活动中始终是摆在每个教师面前的必须解决的问题。 1 高师院校生理学教学的特点和要求 1.1素质教育观下的生理学教学特点和要求 生理学是研究生命现象特别是从机能整合角度来探讨生命活动规律及调节的基础理论学科,其知识是生命科学领域高素质人才必备的基本理论,而生理学与其他学科相比,理论性强,内容比较抽象,概念较多,再加上其具有的基础性、发展性及较强的实践性,这就为当今素质教育观下的生理学教学提出了极大的艰巨性与挑战性。传授知识主要是总结过去,而传授知识的方法才真正是为了未来。素质教育注重培养学生的态度、能力,其核心是培养学生的创新精神和创造能力,最终目的是使学生得到全面发展。近几年入学的大学生,自理及独立能力普遍较差,学习上大多缺乏积极主动性,动手及实际操作能力更弱。为此,必须改变传统的教学方法,根据每个学生具体情况(影响学生学习的智力与非智力因素、学习能力、创新及创造能力),制定出一套完整有效切实可行的教学方法。 1.2高师学生学习生理学的特点和要求 高等师范院校的培养目标是为中学培养合格的中学教师。与医学院校不同,师范院校学生在生理学的学习中不仅要了解人体及动物基本生理机能、机制等基础理论,还应学会将来如何指导学生学习生理学的相关知识。根据这一明确目标,生理学教师在教学实施过程中,在以不同方式方法加强和提高自身素质能力的同时,要结合本专业课的特征及所具有的现实条件,有针对性地组织、安排教学,有意识的 ? 48? 黔南民族师范学院学报2005年第3期  3收稿日期:2005-01-20  作者简介:肖玲远(1964-),女,贵州毕节人,毕节学院生物系讲师,研究方向:生理学教学。

常用运动生理学实验操作流程

常用运动生理学实验操作流程体育系运动人体科学实验中心

人体安静、运动时脉搏、血压的测定 [实验目的] 了解人体动脉血压测定的原理,学会人体在安静时和运动前后脉搏及血压的测定。 [实验原理] 血压的测定,最常用的是间接法。通过使用血压计在动脉外加压,根据血管音的变化测定血压。通常血液在血管内流动时并没有声音,如果对血管施加压力,使血管腔变窄而形成血液涡流时可发生血管音。当外加压力超过动脉血压的收缩压时,受压部位的血流完全被阻挡,此时在受压部位的远侧听不到声音。当外加压力低于收缩压而高于舒张压时,血液则可断续地通过受压部位使血流形成涡流而发出声音。当继续降低压力时,且外加压力等于舒张压时,受压部位的血流由断续流动恢复到持续流动,受压部位远侧的声音则由强变弱或突然消失。因此,动脉血流刚能发出声音时的最大外加压力相当于收缩压,而动脉内血流声音突变后消失时的外加压力则相当于舒张压。正常成人安静时心率约在60—-100次/分。心率常受年龄、性别、生理状况、训练水平、体力劳动及体育运动的影响。在实践中通过测定血压、心率可了解受检查者循环系统的功能,了解运动量、运动强度、运动训练对人的影响、运动后的恢复情况、运动的密度。 [实验对象] 人体 [实验器材]

血压计、听诊器、秒表、电子节拍器 [实验步骤] 一、安静时脉搏血压的测定 (一)脉搏的测定 1.扪诊法桡动脉扪诊法:在测试安静脉搏时较为方便。 颞浅动脉扪诊法:位于耳前部略偏上,颞浅动脉经过此处,适合于运动后。 心前区扪诊法:位于左心前区心尖部,适合于运动后。 颈动脉扪诊法:位于胸锁乳头肌前、下颌角下部。 2.器械法 听诊法:用听诊器在心前区直接听诊,计算心率。 心率遥测仪:可准确记录运动中和运动后心率。 (二)安静时动脉血压的测定。 1.将脉压带绑在被试者的上臂,其下缘应距肘关节上约2--3厘米,松紧以能放入一指为宜。 2.在肘窝内侧找到搏动点,将听诊器头紧贴肘窝肱动脉处。 3.把气球的气门旋紧打气,随脉压带内的压力升高,逐渐可以听到有节奏的“咚咚”声,继续打气等声音消失时再使压力升高20--30毫米汞柱或2--4千帕,然后旋开气门徐徐放气。 4.在放气时注意听有节奏的“咚咚”声响的第一声出现时,水银面所指示的压力即为收缩压。 5.继续放气,随压力逐渐下降,听到突然变声或声音消失时,水银面

生理学教案、讲稿

教案

讲稿 第一章绪论 课堂导入:大家好,今天我们开始学习一门新的课程:生理学。当我们接触一个新事物,首当其冲要明白3个W,what,why, how ,这3个W就是我们今天的主题。 第一节生理学的任务和研究方法 1、what,什么是生理学,他是干什么的? 引入概念生理学(physiology)——研究生物体正常功能活动规律的科学,重点是正常功能,根据研究对象不同可分为细菌生理学、植物生理学、动物生理学和人体生理学。 我们要学习的人体生理学,又称医学生理学,通常简称为生理学,是研究正常人体功能活动规律的科学。具体的说,它研究我们的新陈代谢、生长发育、神经活动、躯体活动、腺体分泌、血液循环、呼吸和消化等功能活动,研究它们是怎样发生发展,需要什么条件,相互间有无影响,与内外环境变化的关系等等。 2. why 我们总是对这个世界充满好奇,而自我是世界中无可替代的唯一,我们对自己的好奇心也往往更明显,为何危急时能爆发惊人潜力,为何心跳过快反而危险,,为何呼气比吸气更轻松,为何寒战过后会更温暖?这些都是生理学的内容。 从职业的角度看,一种药物如何起效,为何出现副作用,疾病是如何发生发展,都需要足够的生理学知识,所以在生理学成为了重要的医学基础课,他是我们认识和干预纠正疾病异常的定心丸。 3. how 生理学研究方法 生理学是一门实验性科学,实验是它的重要基础,生理学的学习研究的最基本过程是:实验-推理判断-再实验-验证修正推理判断-再实验-再验证修正,这是一个长期反复循环的严谨的过程。由于实验的损伤性及伦理等原因,目前,大多数生理实验是以动物为对象。为什么能用动物做实验来研究人体的功能活动呢?我们都知道,根据进化论的观点,人类和生物界其他动物具有同源性,在结构和功能上具有相似之处,这就为我们提供了这种可能性,而且,动物实验还有些特别的优势。举例:枪乌贼的巨大神经纤维(其直径最大可达1毫米左右,人的各种神经纤维直径为1—20微米,长度人几分之一毫米到1米左右,比如已知人体最粗的神经是坐骨神经,它的直径可以达到1厘米,但是坐骨神经是神经纤维束,内含大概20W根神经纤维,可想而知每根纤维的直径有多微小。),猫的防御反射,等等等等。当然,凡事都有利有弊。首先,动物和人类只是相似,所以并不能将动物实验的结果简单直接对应到人体,尤其人类的情感情绪思考等高级意识活动基本无法以动物实验来进行研究。其次,一些人对动物实验的滥用,既丧失了对生命的关爱和基本的尊重。随着无损伤检测技术的不断发展,越来越多的实验直接以人体作为研究对象。 生理学研究包括三个层面。 * 第一.细胞、分子水平研究细胞生命现象的基本物理化学过程,如研究神经细胞的动作电位及其产生的离子机制。 * 第二器官、系统水平研究各器官及系统的功能,如研究心脏的泵血功能、呼吸节律的形成机制。 * 第三整体水平研究器官系统之间的功能联系以及机体与环境之间的相互关系, 如研究环境温度对人体的影响,应激状态下人体功能的改变。。。。

运用多种教学方法,提高学生学习生理学兴趣

运用多种教学方法,提高学生学习生理学兴趣 生理学是一门重要的医学基础学科,教学过程中运用多种教学方法,提高学生学习生理学兴趣,调动学生学习的主动性和探究欲。 标签:生理学;教学方法;学习兴趣 生理学是研究机体功能活动及其活动规律的科学。它是一门十分重要的医学基础课程,在整个医学课程中起到了承上启下的作用,它以人体解剖学和组织胚胎学为基础,并为后续课程如病理学、药理学和临床课程等奠定基础。对于初学者来说,生理学的理论性较强,内容抽象,枯燥无味致使其产生抵触心理。兴趣是最好的教师。因此在生理学的教学过程中,如何提高学习兴趣成为广大师生共同努力的目标。 对于教师来说,在授课过程中要善于运用多种教学方法,提高学生对生理学的学习兴趣,使学生掌握生理学的基本知识、基本理论和基本技能,能理解正常人体的功能活动规律。教学方法如下 1 医学史 在整个医学课程中,学生潜意识认为生理学是一门很难的学习课程,引起学生的学习兴趣和激发学生的学习动机就起到了至关重要的作用[1]。这样可以减少生理学的神秘感。在后续的教学过程中,激发学习动机,同时凝结科学家智慧的结晶无形中对于学生探索及创新能力的培养也具有极其重要的作用。 2 动画演示教学 传统的生理学教学以讲授法为主,学生对深奥的理论感到难以想像、枯燥难懂。生理学是一门功能学科,讲述的是一个动态过程,大部分内容比较抽象,因此对于抽象的内容采用动画演示教学,通过此法的运用使抽象的内容变得具体、直观和清晰,有助于学生对知识的理解并激发学生的学习兴趣。采用动画演示法是我们生理学经常采用的教学方法,它不仅可以缓解学生的听课疲劳,活跃课堂气氛,更重要的是使静态知识变为动态的过程、抽象概念更加直观、复杂问题变得容易理解、枯燥的理论变的有趣,从而提高学生的学习兴趣和主动性,提高教学效果。 3 联系式教学 在整个医学课程的学习中,生理学是一门基础必修课程,为后续课程奠定基础。因此在整个生理学教学过程中要联系临床案例和生活,使学生充分认识到生理学和临床课程、生活息息相关、密不可分。通过临床典型病例的穿插,突出生理学的临床实用性,加深学生对理论知识的理解[2],使课堂更加具有趣味性和生动性。理论知识与临床实践结合让学生充分意识到只有掌握正常人体功能的基

生理学实验的注意事项

实验的注意事项 1、动物麻醉注意事项? (1)正确选用药品、用药剂量及给药途径。 (2)静脉麻醉时,先将总量的1/3快速注入,使动物迅速渡过 兴奋期,余下2/3 缓慢注射,并观察动物状态及反应, 以准确判断麻醉深度。 (3)需补充麻醉药时,一次补量不超过总量的1/5 。 (4)麻醉中应随时保持呼吸道通畅,注意保温。 (5)在手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不 理想等情况下,可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。 (6)实验中注意体液平衡,防止酸中毒及肺水肿的发生。 2、影响血液凝固因素注意事项? 1 采血过程要尽量快,以减少计时误差,对比实验的采血时间要紧接着进行。 2 每支试管口径大小及采血量要相对一致,不可相差太大。 3 判断凝血的标准要一致,一般以倾斜试管达45°时试管内血液不见流动为准。 4液体石蜡不能加得过多,影响凝血时间观察 3、红细胞脆性实验注意事项? 1试管要干净; 2 NaCL溶液配液要准确; 3 加入大小基本相同的一滴血液; 4 轻轻混匀,减少机械溶血机会; 5 静置时间不少于30min。中途不得人为振荡。观察结果时动作尽量要轻,且在光线明亮处进行4、血红蛋白测定注意事项? (1)血红蛋白吸管和比色管要清洁; (2)吸取血液要准确,避免起泡; (3)滴加蒸馏水时逐滴进行,防止一次加入过多; (4)酸化时间不能少于10min; (5)在自然光下比色。 5、心肌特性实验注意事项? 1.破坏蛙的大脑和脊髓要彻底。 2.经常给心脏滴加任氏液,以保持心脏适宜的环境。 3.张力传感器与蛙心夹之间的丝线应保持适宜的紧张度,间距一般小于20cm 4.铜丝与心室接触良好的同时,还应尽量不让其阻碍心脏的自发收缩。

中职生理学教学方法的探索

中职生理学教学方法的探索 摘要】在医学专业中,生理学是一门重要的医学基础课程,是学生学习其他专 业课的启蒙课程,然而其教材内容理论性较强,内容抽象,难以理解和记忆,因此,做好生理学教学显得尤为重要。本文针对中职院校学生的特点,就提高并恰 当应用生理学的教学方法进行了探索,以期激发学生的学习兴趣,提高学生理解 思维能力,实现运用生理学知识有效解决实际问题,为以后的学习、工作打下坚 实的基础。 【关键词】生理学;教学方法;探索;提高 中图分类号:G623.5 文献标识码:A 文章编号:ISSN1672-2051 (2019)08-096-02 在医学专业的课程学习中,生理学是一门重要的医学基础课程,它是研究正常人体生命 活动及其规律的科学,是学习其他专业课程的启蒙,也是连接基础医学和临床医学的纽带。 虽然生理学教材对人体各部分机体功能进行了详尽清晰的阐述,然而,教材的内容繁杂,理 论性较强,内容抽象,因此,教师要改进教学方法,激发学生的学习兴趣,培养学生学习积 极性,提高学生理解思维能力,真正实现运用生理学知识解决学习、工作中的实际问题。中 职生理学教学面向中职学生,教学层次相对较低,笔者结合多年的生理学教学实践经验,探 索了一些有益教学的方法,提出几点对生理学教学方法的思考,以期对教师和学生有所帮助。 1、经典讲授,抓住教学重点 生理学这门课程是医学专业最重要的基础课程之一,它是研究机体正常生命活动规律的 科学,它的内容包括基本理论、基础知识、基本技能等。经典讲授是课堂教学最常用的方法 之一,它是在教学内容上抓住教学重点,使课程深入浅出、条理清楚、层次分明[1]。首先, 教师应该对教学内容建立一个整体的概念,确定出教学的重点和难点;其次,运用对比法、 推理法,根据人体各部分机能的特点,找出各章节、各系统之间的内在联系;再者,教师将 各章节知识融会贯通,从而帮助学生对课程有一个全面的了解,进而进行理解性记忆,最终 提高教学效率和质量。例如,教材中《绪论》章节是课程最基础的部分,概念繁多,而且内 容枯燥,教师宜采用经典讲授法,对内容进行剖析,确立重点和难点,掌握课程的规律特点后,通过身边的例子,生动形象地进行教学,使学生的学习也轻松自在,也加深学生对知识 点的理解。 2、启发、问题式教学,调动积极性 生理学的理论知识是通过常年科学家的科学实验验证形成的知识理论体系,根据其本质 特点,可采用启发、问题式教学,充分调动学生的主动性和积极性,激发学生独立思考、分 析和解决问题的能力,使课堂充满活力。所谓启发、问题式教学,就是根据教学大纲要求, 结合学生的知识水平,潜心专研教材,运用各种教学手段,在学生的理解能力范围之内,精 心设计,启发诱导,在恰当的时机提出问题,传授知识[2]。例如,讲授完骨骼肌的结构、肌 丝的滑行学说、兴奋-收缩偶联及神经-肌肉接头后,可以设问:坐骨神经兴奋后,如何引起 腓肠肌收缩?又如,讲授动脉血压调节时,可以设问:通过稳压反射,可以使生理状态下的 动脉血压维持相对恒定,又为何有成千上万的老年人患有高血压疾病呢?这些问题的提出, 使学生感到生理学知识和生活、自身密切相关,启发学生思维积极性。教师在讲课中也要多 加总结,学生的总结能力有限,所以,课时结束时要将知识汇总,便于学生理解性记忆。总之,在生理学教学中,合理灵活应用启发、问题式教学,对于提高生理学教学质量,调动学 生学习积极性有着不可忽视的作用。 3、兴趣教学,引发学习动机 所谓兴趣教学,就是利用学生的好奇心、求知欲,创造出一个温和的教学氛围,使学生 在学习中愉快,在愉快中学习的一种教学方法。针对中职医学学生年龄较小、文化基础薄弱、理解能力不强的特点,教师在教学过程中应该由浅入深,由简入繁,通过通俗的语言、简单 易懂的例子,把抽象的理论具体化,引导学生结合自身生理特征,提出问题,让学生带着好 奇去学习,激发对自身的关切去猜想、讨论,去寻找答案,从而增强理解,便于记忆,真正

植物生理学实验课程

《植物生理学实验》课程大纲 一、课程概述 课程名称(中文):植物生理学实验 (英文):Plant Physiology Experiments 课程编号:18241054 课程学分:0.8 课程总学时:24 课程性质:专业基础课 前修课程:植物学、生物化学、植物生理学 二、课程内容简介 植物生理学是农林院校各相关专业的重要学科基础课,是学习相关后续课程的必要前提,也是进行农业科学研究和指导农业生产的重要手段和依据。本实验课程紧密结合理论课学习内容,加深学生对理论知识的理解。掌握植物生理学的实验技术、基本原理以及研究过程对了解植物生理学的基本理论是非常重要的。本大纲体现了植物生理学最实用的技术方法。实验内容上和农业生产实践相结合,加强学生服务三农的能力。实验手段和方法上,注重传统、经典技术理论与现代新兴技术的结合,提高学生对新技术、新知识的理解和应用能力。 三、实验目标与要求 植物生理学实验的基本目标旨在培养各专业、各层次学生有关植物生理学方面的基本研究方法和技能,包括基本操作技能的训练、独立工作能力的培养、实事求是的科学工作态度和严谨的工作作风的建立。开设植物生理学实验课程,不仅可以使学生加深对植物生理学基本原理、基础知识的理解,而且对培养学生分析问题、解决问题的能力和严谨的科学态度以及提高科研能力等都具有十分重要的作用。 要求学生实验前必须预习实验指导和有关理论,明确实验目的、原理、预期结果,操作关键步骤及注意事项;实验时要严肃认真专心操作,注意观察实验过程中出现的现象和结果;及时将实验结果如实记录下来;实验结束后,根据实验结果进行科学分析,完成实验报告。 四、学时分配 植物生理学实验课学时分配 实验项目名称学时实验类别备注 植物组织水势的测定3学时验证性 叶绿体色素的提取及定量测定3学时验证性 植物的溶液培养及缺素症状观察3学时验证性 植物呼吸强度的测定3学时设计性 红外CO2分析仪法测定植物呼吸速率3学时设计性选修 植物生长物质生理效应的测定3学时验证性 植物种子生活力的快速测定3学时验证性 1

生理学实验报告

生理学实验报告 坐骨神经-腓肠肌标本的制备 一、实验目的及要求 学习蛙类动物双毁髓的方法 掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术,为此后有关的神经肌肉实验打下基础。 二、实验原理 蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似,而且其离体组织需要的生活条件非常简单,易于控制和掌握。因

此在生理学实验中,坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象,经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。 三、实验对象 蟾蜍或蛙。 四、实验器材及药品 蛙类手术器械一套(金属探针1根,粗剪刀、眼科剪刀各1把,圆头镊子、眼科镊子各1把,玻璃分针2根),蛙板和玻璃板各1块,培养皿,滴管,废物缸、锌铜弓,丝线,棉花;任氏液。 五、实验方法及步骤 1、双毁髓:左手握蟾蜍,背部向上。用食指按压其头部前端,拇指压住躯干的背部,使头向前俯;右手持毁髓针,由两眼之间中线向后方划触,触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔,然后针尖向前刺入颅腔,在颅腔内搅动,以毁脑组织。再将毁髓针退至枕骨大孔,针尖转向后方,与脊柱平行刺入椎管,以捣毁脊髓。脊髓彻底捣毁时,可看到蟾蜍后肢突然蹬直,然后瘫软,此时的动物为双毁髓动物。 2、剥制后肢标本:左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤,右手持手术剪横向剪断皮肤,然后往后肢方向撕剥皮肤。剪开腹壁肌肉,用手术镊提起内脏,翻向头部,在看清支配后肢的脊神经发出部位后,于其前方剪断脊柱。 3、分离两后肢:将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上,右手持

金冠剪纵向剪开脊柱,再剪开耻骨联合,使两后肢完全分离。 4、分离坐骨神经:将一侧后肢的脊柱端腹面向上,用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经,股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝,找出坐骨神经,剪断盖在上方的梨状肌,完全暴露坐骨神经,剪去支配腓肠肌之外的分支,再剪去脊柱及肌肉,只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。 5、分离股骨头:沿膝关节剪去股骨周围的肌肉,保留股骨的后2/3,剪断股骨。 6、游离腓肠肌:在腓肠肌跟腱下穿线并结扎,提起结扎线,剪断肌腱与胫腓骨的联系,游离腓肠肌,剪去膝关节下部的后肢,保留腓肠肌与股骨的联系,制备出完整的坐骨神经-腓肠肌标本。标本应包括:坐骨神经、腓肠肌、股骨头和一段脊柱骨四部分。 7、检验标本:用任氏液沾湿的锌铜弓的两极接触神经,如腓肠肌发生收缩,则标本机能正常,把标本固定在肌槽上。 8、连接好装置,调节适宜的灵敏度及刺激强度,开动记录仪,走纸速度为10mm/s,用手控触发开关,以单脉冲刺激神经,记录肌肉的单收缩曲线。 9、分别用1 Hz、2 Hz、3 Hz、4 Hz、6 Hz、12 Hz、24 Hz、30Hz 等频率去刺激坐骨神经,记录肌肉的收缩曲线。 六、分析及讨论 七、思考题 ?1.剥去皮肤的后肢,能用自来水冲洗吗?为什么?

生理学教学方法探讨

生理学教学方法探讨 摘要教给学生什么,让学生学会什么,是每个教师应该思考的问题。生理学教学应结合生活和临床实际,运用启发式教学,激发学生的学习兴趣,培养学生的独立思考能力和动手能力。恰当地运用多媒体教学方式能有效地提高生理学教学效果。 [关键词]生理学;教学方法;探讨 生理学是医学教育中的一门重要基础课程,其主要特点是理论性强、名词繁多且抽象复杂。正是这些特点,给学生们学习生理学带来了一定的难度,因此,我们的医学教育,既要让学生掌握现有的知识,更要训练和教会学生不断获取知识的方法。我国古代思想家老子也曾说过:“授人以鱼,不如授人以渔”,“授人以鱼,三餐之需;授人以渔,终生之用”。所以,教给学生什么,让学生学会什么,是每个教师应该思考的问题。本文拟结合教学实践,探讨生理学教学中的教与学。 一、生理学与生活、临床的结合 生理学是一门重要的医学基础课,是每个医学生必须掌握的学科,其内容逻辑性强,知识点多,既有局部微观的生理机制,又有整体宏观的整合原理,学生较难理解和接受,但学好生理学,对后续课程的学习及从事临床医疗工作又有很大的帮助。在当前医学基础学科的学时明显缩减的情况下,在短时间内掌握微妙复杂的人体正常活动机理,教学难度可想而知。因此,如果能在基础阶段的学习中引入生活、临床事件,无疑可以使学生在学习生理学知识时变得容易、记忆深刻。 (一)生理与生活、临床教学结合的优势 在医学教学中,生理学知识丰富繁杂,而这些知识往往又很抽象,学生要深刻理解并掌握这些知识往往存在一定的难度。如果能在教学中根据一些普通的生活事件或临床事件,让学生结合生活体会、观看临床视频探讨生理学问题,教师通过启发、引导,让学生掌握生活、临床事件中所蕴含的生理学知识,往往会事半功倍。 (二)生理与生活、临床教学结合的效果 教学实践证明,结合生活事件和临床的教学是开发学生潜能的一种教学方式,它能最大限度地调动每一个学生学习的积极性和创造性,激发学生的学习兴趣,有助于学生知识的获得和能力的培养,而学生学习兴趣越浓厚,学习主动性越强,其学习效果也就越好,从而提高了教学质量。 二、恰当运用多媒体提高教学质量

生理学实验报告蛙心灌流

生理学实验报告-蛙心灌流

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蛙类离体心脏灌流 一、【目的要求】 1、学习离体蛙心灌流法。 2、观察Na+,K+,Ca2+及肾上腺素(Adr),乙酰胆碱(ACh),乳酸对离体心脏活动的影响。 二、【原理】 将离体蛙心(失去神经支配的蛙心)保持在适宜的环境中,在一定的时间内仍然能够保持节律性收缩,心脏正常的节律性活动需要一个适宜的理化环境,离体心脏也是如此,离体心脏脱离了机体的神经支配和全身体液因素的直接影响,可以通过改变灌流液的某些成分,观察其对心脏活动的作用。心肌细胞的自律性、兴奋性、传导性及收缩性,都与钠、钾及钙等离子有关。外源性给予去甲肾上腺素或乙酰胆碱可产生类似心交感神经或迷走神经兴奋时对心脏的作用。 三、【实验仪器】 青蛙、常用手术器械、蛙板(或蜡盘)、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿(或小烧杯)、棉线、任氏液。套管夹、0.65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、1:10000肾上腺素、1:10000乙酰肌碱、3%乳酸。 四、【方法与步骤】 1、斯氏蛙心插管法 (1)一只青蛙,双毁髓后背位置于蜡盘中,按前面的方法暴露心脏。仔细识别心脏周围的大血管(见右图)。在左主动脉下方穿一线,于动脉圆锥处结扎(动物个体小时,结扎位置可靠上些)。再从左右两主动脉下方穿一线,并打一活结备用。左手提起主动脉上的结扎线,右手用眼科剪在结扎线下方、沿向心方向将动脉上壁剪一斜口。选择大小适宜的蛙心套管,然后将盛有少量(套管内2~3cm高度)任氏液(内加入一滴肝素溶液)的斯氏蛙心套管,山开口处插入动脉圆锥(见右图)。当套管尖端到达动脉圆锥基部时,应将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进,经主动脉瓣插入心室腔内(于心室收缩时插入,但不可插得过深,以免心室壁堵住套管下口)。此时可见套管中血液冲人套管,并使液面随心脏搏动而亡下移动,表明操作成功(否则需退回并重新插入)。用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液。稳定住套管后,轻轻提起备用线,将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎紧(不得漏液),再将结线固定在套管的小玻璃钩上,然后剪断结扎线上方的血管。轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置,于静脉窦下方剪断有牵连的组织,仅保留静脉窦与心脏的联系,使心脏离体(切勿损伤静脉窦)。用任氏液反复冲洗心室内余血,使套管内灌流液不再有残留血液。保持套管内液面高度一致(1.5~2cm),即可进行实验。 (2)将插好离体心脏的套管固定在支架上,用蛙心夹夹住少许心尖部肌肉(不可夹得过多,以免因夹破心室而漏液)。再将蛙心夹上的系线绕过一个滑轮与张力传感器相连(如右图)。注意:勿使灌流液滴到传感器上。调节显示器上心脏收缩曲线的幅度适中。 2、实验观察 (1)记录正常心搏曲线 (2)改用0.65%NaCI溶液灌流,并作好加药标记,观察心搏变化。待曲线氏插管装置出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,同时做好冲洗标记,并用新鲜任氏液清洗2—3次,待心搏恢复正常。注意:换液时切勿碰套管,以免影响描记曲线的基线,同时保持灌流液面一致(以下同)。

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