文档库 最新最全的文档下载
当前位置:文档库 › 血细胞计数板-专项训练题(含答案)-基础和拔高题-好!

血细胞计数板-专项训练题(含答案)-基础和拔高题-好!

血细胞计数板-专项训练题(含答案)-基础和拔高题-好!
血细胞计数板-专项训练题(含答案)-基础和拔高题-好!

血细胞计数板-专项训练题

一、填空题

1.(1)血球计数板是一种专门用于计算较大单细胞微生物的一种仪器,它的规格有两种,一种叫25×16型,另一种叫16×25型。

以25×16型为例,在血球计数板的中央有两个平面台,每个平面台各有一个含9个大格的方格网,中央大格叫。将其放大,可见它含中格,每一个大方格的面积为1mm2,盖上盖玻片后,载玻片和盖玻片之间的高度为0.1mm,所以计数室的容积为 mm3。计数时,一般取个中格计数。

以16×25型为例,在血球计数板的中央有两个平面台,每个平面台各有一个含9个大格的方格网,将其放大,可见它含中格,每一个大方格的面积为1mm2,盖上盖玻片后,载玻片和盖玻片之间的高度为0.1mm,所以计数室的容积

为 mm3。计数时,一般取个中格计数。

已知1mL= cm3= mm3。

(2)遇压线细菌,一般只计。以一个大方格有25个中方格的计数板为例进行计算:设5个中方格中总菌数为A,菌液稀释倍数为B,那么,一个大方格中(即0.1mm3中的总菌数)的总菌数个个;故1mL

菌液中的总菌数为 (个)。

2.进行浮游生物计数时使用了血球计数板(注:该计数板中1个大方格中有16个中方格),假设盖玻片下的培养液厚度为0.1mm,4个中方格中浮游生物总数为40个,则1mL的培养液中有浮游生物数量为 (个)。

3.将样液稀释100倍,采用血球计数板(规格为1mm×1mm×0.1mm)计数,观察到的计数室细胞分布见图3,则培养液中藻细胞的密度是个/mL。

4.(2008江苏高考31.)

(1)在整个探究酵母菌数量变化的实验操作过程中,直接从静置的培养瓶中取培养原液计数的做法是错误的,正确的方法是和。

(2)实验结束后,用试管刷蘸洗涤剂擦洗血球计数板的做法是错误的,正确的方法是。

二、选择题

1.某小组进行“探究培养液中酵母菌种群数量的动态变化”实验时,同样实验条件下分别在4个试管中进行培养(见下表),均获得了“S”型增长曲线。根据实验结果判断,下列说法错误的是( )

A.4个试管内的种群初始阶段都经历了“J”型增长

B.4个试管内的种群同时达到K值

C.试管Ⅲ内种群的K值与试管Ⅱ不同

D.试管Ⅳ内的种群数量先于试管Ⅱ开始下降

2.为探究培养液中酵母菌种群数量的动态变化,某同学进行了如下操作。其中操作错误的是()

A.将适量干酵母放入装有一定浓度葡萄糖溶液的锥形瓶中,在适宜条件下培养

B.将培养液振荡摇匀后,用吸管从锥形瓶中吸取一定量的培养液

C.在血球计数板中央滴一滴培养液,盖上盖玻片,并用滤纸吸去边缘多余培养液

D.将计数板放在载物台中央,待酵母菌沉降到计数室底部,在显微镜下观察、计数

3.下列关于“培养液中酵母菌种群数量的变化”实验的相关操作,错误的是()

A.培养液和培养用具必须经过严格的灭菌处理

B.从瓶中吸出培养液进行计数之前,应将培养瓶轻轻震荡几次

C.为了方便酵母菌计数,培养后期的培养液应先稀释后再计数

D.应在每天的同一时间从同一培养瓶中吸出等量培养液进行计数

三、综合题

1.在“探究培养液中酵母菌种群数量变化”的实验中:

(1)对酵母菌进行计数可以采用________的方法,从试管中吸出培养液进行计数之前,要__________________。如果实验时发现血球计数板的一个小方格内酵母菌过多,难以数清,应当采取的措施是____________。

(2)如果提出的问题是“培养液中酵母菌种群的数量是怎样随时间变化的?”,试针对这一问题作出假设:_____________________________________。

(3)某一组同学为了探究“温度(5℃、28℃)对酵母菌种群数量变化是如何影响的?”设计了实验方案,进行了为期7天的实验,每天定时取样一次,并在实验前设计了记录实验数据的表格,如下:

时间/天

酵母菌数/个?mL-1

温度/℃第

1

2

3

4

5

6

7

5

28

根据上述表格,有人认为该同学设计的实验方案不能够准确反映酵母菌种群数量的变化,请指出该方案不足之处:_______________________________。

(4) 另一组同学为探究培养液中酵母菌种群数量的变化,按下表完成了有关实验:

试管编号培养液(mL)无菌水(mL)酵母菌母液

(mL)

温度(℃)

A 10 —0.1 28

B 10 —0.1 5

C —10 0.1 28

①请写出该同学研究的课题名称:探究_________对酵母菌种群动态变化的影响。

②用显微镜定期检测酵母菌数目,结果仅A管中第3天开始个体数目迅速增长,第5天开始A管中个体数目达到最大,第6天结束实验。请用曲线在图中表示出A、B、C三组结果的变化趋势。

2.在探究培养液中酵母菌种群数量变化的实验中,需利用计数板对微生物细胞进行直接计数。计数板是一个特制的可在显微镜下观察的玻片,样品就滴在计数室内。计数室由25×16=400个小室组成,容纳液体总体积为0.1mm3。某同学操作时将1mL酵母菌样品加99mL无菌水稀释,用无菌吸管吸取少许使其自行渗入计数室,盖上盖玻片并用滤纸吸去多余菌液,进行观察计数。

(1)在实验中,某学生的部分实验操作过程是这样的:①从静置试管中吸取酵母菌培养液加入计数板进行计数,记录数据;②把酵母菌培养液放置在冰箱中;

③第七天再取样计数,记录数据,统计分析绘成曲线。请纠正该同学实验操作中的3处错误:

①__________________ ②__________________③_________________

(2)在实验前应该对计数板、吸管等器具进行_________处理。

(3)如果观察到上图所示a、b、c、d、e5个大格共80个小室内共有酵母菌48个,则上述1mL酵母菌样品中约有酵母菌_________个;要获得较为准确的数值,减少误差,你认为该怎么做?______________________________

血细胞计数板-专项训练题

一、填空题

1.(1)大方格(计数室) 25 0.1 5 16 4 0.1 1 1000

(2)相邻两边及其顶角的酵母菌A/5×(25×B)

A/5×(25×10×1000×B)=50000AB

2. 1mL的培养液中有浮游生物数量为:40/4×16×10000×1=1600000(1.6百万个)

3.血球计数板规格为1mm×1mm×0.1mm,采用五点取样法,取四角和最中间的5个中方格计数,采取“数上线不数下线,数左线不数右线”的原则处理,平均每个中方格内有4个酵母菌。计数区有25个中方格,共计有酵母菌4×25=100个。计数区体积为1mm×1mm×0.1mm=0.1mm3=0.1×10-3 mL,换算成1mL,则有酵母菌100×104个,再乘以稀释倍数100,结果为108个。

4.(1)摇匀培养液后再取样培养后期的样液稀释后再计数(2)浸泡和冲洗)一、选择题

1—3 BCD

二、综合题

1.⑴抽样检测将试管轻轻震荡几次适当稀释菌液

⑵酵母菌种群的数量随时间呈“S”型增长变化(或在一定时间范围内,酵母菌种群的数量随时间推移逐渐增大,达到一定程度以后,酵母菌种群数量维持相对稳定,或其他表达了“酵母菌种群的数量”与“时间”关系的合理叙述)

⑶每天检测时应多次取样 ,求平均值

(4)①温度、营养物质②见下图(其它合理变化趋势也给分)

2.(1)①应将试管轻轻震荡几次再吸取酵母菌培养液进行计数

②应将酵母菌培养液放置在适宜温度下培养

③应连续七天,每天观察、取样计数并记录数据

(2)灭菌(3)2.4×108 多次记数,求平均值

微生物的计数——血球计数板法

微生物得计数——血球计数板法 【摘要】测定微生物细胞数量得方法很多,有分光光度法、显微直接计数法与平板计数法。分光光度法比较简便,易操作,但就是会使数据严重偏大。而平板计数法则会使实验数据严重偏小.?显微计数法适用于各种含单细胞菌体得纯培养悬浮液,如有杂菌或杂质,常不易分辨.菌体较大得酵母菌或霉菌孢子可采用血球计数板,一般细菌则采用彼得罗夫·霍泽(PetrofHausser)细菌计数板。两种计数板得原理与部件相同,只就是细菌计数板较薄,可以使用油镜观察。而血球计数板较厚,不能使用油镜,计数板下部得细菌不易瞧清.本实验采用血球计数板法,主要目得就是了解血球计数板法得构造与使用方法,学会用血球计数板对酵母菌细胞进行计数。 一、实验目得与要求 1、了解微生物计数常用得三种方法:分光光度法;平板计数法;血球计数板法。 2、了解血球计数板得构造与使用方法。 3、学会用血球计数板对酵母细胞进行计数。 二、基本原理 利用血球计数板在显微镜下直接计数,就是一种常用得微生物计数方法。此法得优点就是直观、快速.将经过适当稀释得菌悬液(或孢子悬液)放在血球计数板载玻片与盖玻片之间得计数室中,在显微镜下进行计数。由于计数室得容积就是一定得(0、1mm2),所以可以根据在显微镜下观察到得微生物数目来换算成单位体积内得微生物总数目。由于此法计得得就是活菌体与死菌体得总与,故又称为总菌计数法. 血球计数板,通常就是一块特制得载玻片,其上由四条槽构成三个平台。中间得平台又被一短横槽隔成两半,每一边得平台上各刻有一个方格网,每个方格网共分九个大方格,中间得大方格即为计数室,微生物得计数就在计数室中进行。 计数室得刻度一般有两种规格,一种就是一个大方格分成16个中方格,而每个中方格又分成25个小方格;另一种就是一个大方格分成25个中方格,而每个中方格又分成16个小方格。但无论就是哪种规格得计数板,每一个大方格中

血球计数法计数原理

一、血球计数板的使用原理 显微镜直接计数法是将小量待测样品的悬浮液置于一种特别的具有确定面积和容积的载玻片上(又称计菌器),于显微镜下直接计数,然后推算出含菌数的一种方法。血球计数板是常用的计菌器之一。 血球计数板是一种专门用于计算较大单细胞微生物的一种仪器,由一块比普通载玻片厚的特制玻片制成的玻片中有四条下凹的槽,构成三个平台。中间的平台较宽,其中间又被一短横槽隔为两半,每半边上面刻有一个方格网。方格网上刻有9个大方格,其中只有中间的一个大方格为计数室。这一大方格的长和宽各为1mm,深度为0.1mm,其容积为0.1mm3,即1mm×1mm×0.1mm方格的计数板;大方格的长和宽各2mm,深度为0.1mm,其容积为0.4mm3,即2mm×2mm×0.1mm方格的计数板。在血球计数板上,刻有一些符号和数字(见图一),其含义是:XB-K-25为计数板的型号和规格,表示此计数板分25个中格;0.1mm 为盖上盖玻片后计数室的高;1/400mm2表示计数室面积是1mm2,分400个小格,每小格面积是1/400 mm2。 计数室通常也有两种规格:一种是16×25型,即大方格内分为16中格,每一中格又分为25小格;另一种是25×16型,即大方格内分为25中格,每一中格又分为16小格。但是不管计数室是哪一种构造,它们都有一个共同的特点,即每一大方格都是由 16×25=25×16=400个小方格组成。 1.16×25型的计数板将计数室放大,可见它含16中格,一般取四角:1、4、13、16四个中方格(100个小方格)计数(见图二)。将每一中格放大,可见25个小格。计数重复3次,取其平均值。计数完毕后,依下列公式计算: 酵母细胞个数/1mL=100个小方格细胞总数/100 ×400×10000×稀释倍数

血细胞计数板计算方法

血细胞计数板计算方法 血细胞可以说是人类身体的一种微型结构,而且细胞计数吧,通常是用来计算血细胞数量的一种生物学工具。血细胞计数板计算公方法是怎样的呢?如果你对这个问题感兴趣,不妨跟小编一起来研究一下吧。 1.视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释(斜面一般稀释100倍),以每小格的菌数可数为度。 2.取洁净的血球计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片。 3.将菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘滴入一小滴(不宜过多),让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区,勿使气泡产生,并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。也可以将菌悬液直接滴加在计数区上(不要使计数区两边平台沾上菌悬液,以免加盖盖玻片后,造成计数区深度的升高),然后加盖盖玻片(勿使产生气泡)。 4.静置片刻,使细胞沉降到计数板上,不再随液体漂移。将血球计数板放置于显微镜的载物台上夹稳,先在低倍镜下找到计数区后,再转换高倍镜观察并计数。由于生活细胞的折光率和水的折光率相近,观察时应减弱光照的强度。 5.计数时若计数区是由16个中方格组成,按对角线方位,数左上、左下、右上、右下的4个中方格(即100小格)的菌数。如果是25个中方格组成的计数区,除数上述四个中方格外,还需数中央1个中方格的菌数(即80个小格)。 6.对于出芽的酵母菌,芽体达到母细胞大小一半时,即可作为两个菌体计算。每个样品重复计数2-3次(每次数值不应相差过大,否则应重新操作),按公式计算出每mL(g)菌悬液所含细胞数量。 7.测数完毕,取下盖玻片,用水将血球计数板冲洗干净,切勿用硬物洗刷或抹擦,以免损坏网格刻度。洗净后自行晾干或用吹风机吹干,放入盒内保存。 通过上文的介绍,你对血细胞计数板的计算方法是否增加了了解呢?血细胞是存在于我们人体血液中的一种重要组成成分,对人类的健康来说具有举足轻重的影响。而医生通过测量你的血细胞分布状况和数量,对于判断身体的病灶具有重大的作用。因此我们都应该对血细胞的计算方法有所了解。

血球计数板使用方法

血球计数板介绍 用优质厚玻璃制成。每块计数板由H形凹槽分为2个同样的计数池。计数池两侧各有一支持柱,将特制的专用盖玻片覆盖其上,形成高0.10mm的计数池。计数池画有长、宽各3.0mm的方格,分为9个大方格,每个大格面积为1.0mm.容积为0.1mm(ul),其中,中央大方格用双线分成25个中方格,位于正中及四角5个中方格是红细胞计数区域,用单线划分为16个小方格。四角的4个大方格是白细胞计数区域,用单线划分为16个中方格。根椐国际标准局(NBS)规定,大方格每边长度允许误差为±1%。 使用方法 1.视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释(斜面一般稀释100倍),以每小格的菌数可数为度。 2.取洁净的血球计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片。

3.将菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘摘入一小滴(不宜过多),让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区,勿使气泡产生,并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。也可以将菌悬液直接滴加在计数区上(不要使计数区两边平台沾上菌悬液,以免加盖盖玻片后,造成计数区深度的升高),然后加盖盖玻片(勿使产生气泡)。 4.静置片刻,使细胞沉降到计数板上,不再随液体漂移。将血球计数板放置于显微镜的载物台上夹稳,先在低倍镜下找到计数区后,再转换高倍镜观察并计数。由于生活细胞的折光率和水的折光率相近,观察时应减弱光照的强度。 5.计数时若计数区是由16个大方格组成,按对角线方位,数左上、左下、右上、右下的4个大方格(即100小格)的菌数。如果是25个大方格组成的 计数区,除数上述四个大方格外,还需数中央1个大方格的菌数(即80个小格)。为了保证计数的准确性,避免重复计数和漏记,在计数时,对沉降在格线上的细胞的统计应有统一的规定。如菌体位于大方格的双线上,计数时则数上线不数下线,数左线不数右线,以减少误差。即位于本格上线和左线上的细胞计入本格,本格的下线和右线上的细胞按规定计入相应的格中。见右图:即本格中计数细胞为3个。 6.对于出芽的酵母菌,芽体达到母细胞大小一半时,即可作为两个菌体计算。每个样品重复计数2-3次(每次数值不应相差过大,否则应重新操作),按公式计算出每mL(g)菌悬液所含细胞数量。 7.测数完毕,取下盖玻片,用水将血球计数板冲洗干净,切勿用硬物洗刷或抹擦,以免损坏网格刻度。洗净后自行晾干或用吹风机吹干,放入盒内保存。 计数公式 1、16格×25格的血球计数板计算公式: 细胞数/ml=100小格内细胞个数/100×400×10000×稀释倍数 1、25格×16格的血球计数板计算公式: 细胞数/ml=80小格内细胞个数/80×400×10000×稀释倍数

细胞计数方法细胞计数板法

细胞计数方法——---—细胞计数板法 实验原理:当待测细胞悬液中细胞均匀分布时,通过测定一定体积悬液中得细胞得数目,即可换算出每毫升细胞悬液中细胞得细胞数目。 具体操作: 1. 将计数板及盖片擦拭干净,并将盖片盖在计数板。 2、将细胞悬液吸出少许,滴加在盖片边缘,使悬液充满盖片与计数板之间,静置3min,注意盖片下不要有气泡,也不能让悬液流入旁边槽中。 3。计算板四大格细胞总数,压线细胞只计左侧与上方得。然后按公式计算: 细胞数/mL=四大格细胞总数/4×10个/ml (注:当细胞很多时,可在四个格中选一定数目较平均得小格,由于每大格中有16 个小格,然后计左侧与上方得细胞数,求出每小格得细胞数,取平均值m,m×16即每个格得平均值。所以,细胞密度=m×16×10个/ml) 说明:公式中除以4,因为计数了4个大格得细胞数。 公式中乘以10因为计数板中每一个大格得体积为: 1。0mm(长)×1.0mm(宽)×0。1mm(高)=0.1mm 而1ml=1000ul=1000mm (注意:镜下偶见有两个以上细胞组成得细胞团,应按单个细胞计算,若细胞团10% 以上,说明分散不好,需重新制备细胞悬液。) ================================================ 细胞计数板得使用 一、血球计数板-基本构造 血球计数板就是一块特制得厚型载玻片,载玻片上有四个槽构成三个平台。中间得平台较宽,其中间又被一短横槽分隔成两半,每个半边上面各刻有一小方格网,每个方格网共分九个大格,中央得一大格作为计数用,称为计数区。计数区得刻度有两种:一种就是计数区分为16个大方格(大方格用三线隔开),而每个大方格又分成25个小方格;另一种就是一个计数区分成25个大方格(大方格之间用双线分开),而每个大方格又分成16个小方格。但就是不管计数区就是哪一种构造,它们都有一个共同特点,即计数区都由400个小方格组成、

微生物的计数_血球计数板法

微生物的计数——血球计数板法 【摘要】测定微生物细胞数量的方法很多,有分光光度法、显微直接计数法和平板计数法。分光光度法比较简便,易操作,但是会使数据严重偏大。而平板计数法则会使实验数据严重偏小。 显微计数法适用于各种含单细胞菌体的纯培养悬浮液,如有杂菌或杂质,常不易分辨。菌体较大的酵母菌或霉菌孢子可采用血球计数板,一般细菌则采用彼得罗夫·霍泽(Petrof Hausser)细菌计数板。两种计数板的原理和部件相同,只是细菌计数板较薄,可以使用油镜观察。而血球计数板较厚,不能使用油镜,计数板下部的细菌不易看清。本实验采用血球计数板法,主要目的是了解血球计数板法的构造和使用方法,学会用血球计数板对酵母菌细胞进行计数。 一、实验目的与要求 1、了解微生物计数常用的三种方法:分光光度法;平板计数法;血球计数板法。 2、了解血球计数板的构造和使用方法。 3、学会用血球计数板对酵母细胞进行计数。 二、基本原理 利用血球计数板在显微镜下直接计数,是一种常用的微生物计数方法。此法的优点是直观、快速。将经过适当稀释的菌悬液(或孢子悬液)放在血球计数板载玻片与盖玻片之间的计数室中,在显微镜下进行计数。由于计数室的容积是一定的(0.1mm2),所以可以根据在显微镜下观察到的微生物数目来换算成单位体积内的微生物总数目。由于此法计得的是活菌体和死菌体的总和,故又称为总菌计数法。 血球计数板,通常是一块特制的载玻片,其上由四条槽构成三个平台。中间的平台又被一短横槽隔成两半,每一边的平台上各刻有一个方格网,每个方格网共分九个大方格,中间的大方格即为计数室,微生物的计数就在计数室中进行。 计数室的刻度一般有两种规格,一种是一个大方格分成16个中方格,而每个中方格又分成25个小方格;另一种是一个大方格分成25个中方格,而每个中方格又分成16个小方格。但无论是哪种规格的计数板,每一个大方格中的小方

细胞数的测定(血球计数板的使用方法)

、目的与要求了解血球计数板计数的原理,学会测定细胞总数方法。 二、原理 用血球计数板在显微镜下直接计数是一种常用的微生物计数方法。血球计数板是一块特制的厚载玻 片,其上由四条槽构 成三个平台,中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半,每一边的平台上各刻有一个方格网,每个方格网共分为9个大方格,中间的大方格即为计数室。计数室的刻度一般有两种规格,一种是一个大方格分成16个中方格,每个中方格又分成25个小格(即16x25),另一种是一个大方格分成25个中方格,每个中方格又分为16个小方格(即25X 16),但无论是哪一种规格的计数板,每一个大方格中的小方格都是400个,每一个大方格边长为 1 mm则每一个大方格的面积为 1 mm2,盖上盖玻片后,盖玻片 与载玻片之间的高度为0.1mm,所以计数室的容积为0.1 mm3 实磴圈-石血球计弦板杓构jfi 三、血球计数板的使用方法 (一)菌悬液的制备为便于计数,对样品进行适当稀释,稀释程度以每小格内含5?10个酵母为 宜,可采用10倍系列稀释法。 (二)加菌悬液样品将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片,再用无菌的毛细滴管将摇匀的菌悬液由盖玻片边缘滴一小滴,让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自动进入计数室,用吸水纸吸去多余水液。由盖玻 片边缘或槽内加入计数板来回推压盖玻片,使其紧贴在计数板上,计数室内不能有气泡。静置5-10分钟。 (三)显微镜计数在低倍镜下找到小方格网后更换高倍镜观察计数,上下调动细螺旋,以便看到小室内不同深度的菌体。位于分格线上的菌体,只数两条边上的,其余两边不计数。如数上线就不数下线,数左边线就不数右边线。当芽抱菌体达到母细胞大小的二分之一时,可记作两个细胞。 (四)计数时若使用刻度为25X 16 (大格)的计数板,则数四角的4个大格(即100小格)内的菌数。如用刻 细胞数的测定 D申決甌裕牧我

细胞计数方法 细胞计数板法

细胞计数方法------细胞计数板法 实验原理:当待测细胞悬液中细胞均匀分布时,通过测定一定体积悬液中的细胞的数目,即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。 具体操作: 1. 将计数板及盖片擦拭干净,并将盖片盖在计数板。 2. 将细胞悬液吸出少许,滴加在盖片边缘,使悬液充满盖片和计数板之间,静置3min,注意盖片下不要有气泡,也不能让悬液流入旁边槽中。 3. 计算板四大格细胞总数,压线细胞只计左侧和上方的。然后按公式计算: 细胞数/mL=四大格细胞总数/4×104个/ml (注:当细胞很多时,可在四个大格中选一定数目较平均的小格,由于每大格中有16个小格,然后对选定的小格计左侧和上方的细胞数,求出每小格的细胞数,取平均值m,m×16即每个大格的平均值。所以,细胞密度=m×16×104个/ml) 说明:公式中除以4,因为计数了4个大格的细胞数。 公式中乘以104因为计数板中每一个大格的体积为: 1.0mm(长)×1.0mm(宽)×0.1mm(高)=0.1mm3而1ml=1000ul=1000mm3 (注意:镜下偶见有两个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计算,若细胞团10%以上,说明分散不好,需重新制备细胞悬液。) ================================================ 细胞计数板的使用 一、血球计数板-基本构造 血球计数板是一块特制的厚型载玻片,载玻片上有四个槽构成三个平台。中间的平台较宽,其中间又被一短横槽分隔成两半,每个半边上面各刻有一小方格网,每个方格网共分九个大格,中央的一大格作为计数用,称为计数区。计数区的刻度有两种:一种是计数区分为16个大方格(大方格用三线隔开),而每个大方格又分成25个小方格;另一种是一个计数区分成25个大方格(大方格之间用双线分开),而每个大方格又分成16个小方格。但是不管计数区是哪一种构造,它们都有一个共同特点,即计数区都由400个小方格组成。

细胞计数方法--细胞计数板法

细胞计数方法------细胞计数板法实验原理:当待测细胞悬液中细胞均匀分布时,通过测定一定体积悬液中的细胞的数目,即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。 具体操作: 1. 将计数板及盖片擦拭干净,并将盖片盖在计数板。 2. 将细胞悬液吸出少许,滴加在盖片边缘,使悬液充满盖片和计数板之间,静置3min,注意盖片下不要有气泡,也不能让悬液流入旁边槽中。 3. 计算板四大格细胞总数,压线细胞只计左侧和上方的。然后按公式计算: 细胞数/mL=四大格细胞总数/4×104个/ml (注:当细胞很多时,可在四个格中选一定数目较平均的小格,由于每大格中有16个小格,然后计左侧和上方的细胞数,求出每小格的细胞数,取平均值m,m×16即每个格的平均值。所以,细胞密度=m×16×104个/ml) 说明:公式中除以4,因为计数了4个大格的细胞数。 公式中乘以104因为计数板中每一个大格的体积为: 1.0mm(长)×1.0mm(宽)×0.1mm(高)=0.1mm3而 1ml=1000ul=1000mm3 (注意:镜下偶见有两个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计算,若细胞团10%以上,说明分散不好,需重新制备细胞悬液。)

================================================ 细胞计数板的使用 一、血球计数板-基本构造 血球计数板是一块特制的厚型载玻片,载玻片上有四个槽构成三个平台。中间的平台较宽,其中间又被一短横槽分隔成两半,每个半边上面各刻有一小方格网,每个方格网共分九个大格,中央的一大格作为计数用,称为计数区。计数区的刻度有两种:一种是计数区分为16个大方格(大方格用三线隔开),而每个大方格又分成25个小方格;另一种是一个计数区分成25个大方格(大方格之间用双线分开),而每个大方格又分成16个小方格。但是不管计数区是哪一种构造,它们都有一个共同特点,即计数区都由400个小方格组成。 计数区边长为1mm,则计数区的面积为1mm2,每个小方格的面积为1/400mm2。盖上盖玻片后,计数区的高度为0.1mm,所以每个计数区的体积为0.1mm3,每个小方格的体积为 1/4000mm3。 使用细胞计数板计数时,先要测定每个小方格中微生物的数量,再换算成每毫升菌液(或每克样品)中微生物细胞的数量。 二、细胞计数板-使用方法 1.视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释(斜面一般稀释100倍),以每小格的菌数可数为度。 2.取洁净的细胞计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片。 3.将菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘摘入一小滴(不宜过多),让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区,勿使气泡产生,并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。也可以将菌悬液直接滴加在计数区上(不要使计数区两边平台沾上菌悬液,以免加盖盖玻片后,造成计数区深度的升高),然后加盖盖玻片(勿使产生气泡)。

实验五、微生物的计数——血球计数板法

实验五、微生物的计数——血球计数板法测定微生物细胞数量的方法很多,有分光光度法、显微直接计数法和平板计数法。分光光度法比较简便,易操作,但是会使数据严重偏大。而平板计数法则会使实验数据严重偏小。 显微计数法适用于各种含单细胞菌体的纯培养悬浮液,如有杂菌或杂质,常不易分辨。菌体较大的酵母菌或霉菌孢子可采用血球计数板,一般细菌则采用彼得罗夫·霍泽(Petrof Hausser)细菌计数板。两种计数板的原理和部件相同,只是细菌计数板较薄,可以使用油镜观察。而血球计数板较厚,不能使用油镜,计数板下部的细菌不易看清。本实验采用血球计数板法,主要目的是了解血球计数板法的构造和使用方法,学会用血球计数板对酵母菌细胞进行计数。 一、实验目的与要求 1、了解微生物计数常用的三种方法:分光光度法;平板计数法;血球计数板法。 2、了解血球计数板的构造和使用方法。 3、学会用血球计数板对酵母细胞进行计数。 二、基本原理 利用血球计数板在显微镜下直接计数,是一种常用的微生物计数方法。此法的优点是直观、快速。将经过适当稀释的菌悬液(或孢子悬液)放在血球计数板载玻片与盖玻片之间的计数室中,在显微镜下进行计数。由于计数室的容积是一定的(0.1mm2),所以可以根据在显微镜下观察到的微生物数目来换算成单位体积内的微生物总数目。由于此法计得的是活菌体和死菌体的总和,故又称为总菌计数法。 血球计数板,通常是一块特制的载玻片,其上由四条槽构成三个平台。中间的平台又被一短横槽隔成两半,每一边的平台上各刻有一个方格网,每个方格网共分九个大方格,中间的大方格即为计数室,微生物的计数就在计数室中进行。 计数室的刻度一般有两种规格,一种是一个大方格分成16个中方格,而每个中方格又分成25个小方格;另一种是一个大方格分成25个中方格,而每个中方格又分成16个小方格。但无论是哪种规格的计数板,每一个大方格中的小方

血细胞计数板相关知识及练习

血细胞计数板 一、血细胞计数板的构造 血细胞计数板被用以对人体内红、白血细胞进行显微计数之用,也常用于计算一些细菌、 真菌、酵母等微生物的数量,是一种常见的生物学工具。 血细胞计数板是由一块比普通载玻片厚的特制玻片制成的。玻片中有四条下凹的槽,构成三个平台。中间的平台较宽,其中间又被一短横槽隔为两半,每半边上面,刻有一个方格网。方格网上刻有9个大方格,其中只有中间的一个大方格为计数室,供微生物计数用。这一大方格的长和宽各为1mm,深度为0.1mm,其体积为0.1mm 3。 计数室通常有两种规格?一种是大方格内分为16中格,每一中格又分为25小格;另一种是大方格内分为25中格,每一中格又分为16小格。但是不管计数室是哪一种构造,它们都有一个共同的特点,即每一大方格都是由16 X 25=25 X 16=400个小方格组成,见图: 血细胞计数板(25格X16格) 、血细胞计数板的使用 以计数酵母菌为例 1. 使用 (1) 用血细胞计数板计数酵母菌悬液的酵母菌个数。

一般稀释10倍即可。 (3) 将血细胞计数板用擦镜纸擦净,在中央的计数室上加盖专用的厚玻片。 (4) 将稀释后的酵母菌悬液,用吸管吸取一滴置于盖玻片的边缘,使菌液缓缓渗入,多余的菌液用吸水纸吸取,捎待片刻,使酵母菌全部沉降到血细胞计数室内。 (5) 计数时,如果使用16格X 25格规格的计数室,要按对角线位,取左上,右上,左下,右下 4个中格(即100个小格)的酵母菌数.如果规格为25格X 16格的计数板,除了取其4个对角方位外,还需再数中央的一个中格(即80个小方格)的酵母菌数。 (6) 当遇到位于大格线上的酵母菌,一般只计数大方格的上方和右方线上的酵母细胞(或只计数下方和左方线上的酵母细胞)。 (7) 对每个样品计数三次,取其平均值,按下列公式计算每1ml菌液中所含的酵母菌个数。 2、计算公式: (1) 16格X 25格的血细胞计数板计算公式: 酵母细胞数/ml=100 小格内酵母细胞个数/100 X 400 X 10四次方X稀释倍数 (2) 25格x16格的血细胞计数板计算公式: 酵母细胞数/ml=80 小格内酵母细胞个数/80 X 400 X 10四次方X稀释倍数 3 .血细胞计数板的清洁: 血细胞汁数板使用后,用自来水冲洗,切勿用硬物洗刷,洗后自行晾干或用吹风机吹干,或用95%的乙醇,无水乙醇,丙酮等有机溶剂脱水使其干燥?通过镜检观察每小格内是否残留菌 体或其他沉淀物?若不干净,则必须重复清洗直到干净为止? 三、不足之处 血细胞计数板在显微镜下直接进行测定。它观察在一定的容积中的微生物的个体数目,然后推算出含菌数,简便快捷。但是在计数时包括死活细胞均被计算在内,还有微小杂物也被计算在内。这样得出结果往往偏高,因此适用于对形态个体较大的菌体或孢子进行计数。 四、相关练习: 1 .在一定量的酵母菌培养液中放人活酵母菌若干,抽样镜检,视野下如图甲所示(图 中小点代表酵母菌)。将容器放在适宜温度下恒温培养5小时后,稀释100倍,再抽样镜检, 视野下如乙图所示。根据实验结果判断,以下叙述正确的是( ) 甲乙

血细胞计数板的构造和使用方法简介

血细胞计数板的构造和使用方法简介 【摘要】人民教育出版社高中生物教材必修3《稳态与环境》中“探究培养液中酵母菌种群数量的变化”实验用到血细胞计数板(血球计数板),教材中没有介绍其构造和用法,学生对此感到很生疏。本文简要介绍血细胞计数板的构造和使用方法。 【关键词】血细胞计数板的构造计数方法使用方法 人民教育出版社高中生物教材必修3《稳态与环境》中“探究培养液中酵母菌种群数量的变化”实验用到血细胞计数板(血球计数板),教材中没有介绍其构造和用法,学生对此感到很生疏。下面简要介绍血细胞计数板的构造和使用方法。 1.血细胞计数板的构造 血细胞计数板(血球计数板)是显微镜上的外挂物件,可用来测量细胞、细菌等一些微小物体的长度,测量单位体积细胞的数量等。血细胞计数板是由一块比普通玻片大而厚的特制玻璃片制成的,它的两边有两个凸起部分,中间有四条槽沟构成三个平台,中央的平台较宽,而且被一短槽隔成两半,每个半边上各刻有一个方格网,每个方格网共有九大格,中央的大格就是计数室、中央的平台比两边稍低,加盖盖玻片后,中央平台要比两边平台低0.1mm,也就是盖上盖玻片后计数室深度为0.1mm.。(见图A、B、C、D) 1.1 计数室的规格有两种,一种是由25中格组成,每个中格又分为16个小格(共25×16=400小格)(见图E);另一种是由16中格组成,每个中格又分成25个小格(共16×25=400小格)(见图F)。可见,尽管计数室有两种规格,但是,不管计数室是哪一种构造,它们都有一个共同的特点,即每一大方格都是16×25=25×16=400个小方格组成。 1.2 计数室的大小有两种,一种是边长为1mm,则计数室面积为1mm2,每个小格面积为〖SX(〗1〖〗400〖SX)〗mm 2 ,盖上盖玻片后,计数室的高度为0.1mm。所以,一个计数室的体积为0.1mm3,每个小方格的体积为〖SX(〗1〖〗4000〖SX)〗mm 3 ;另一种是边长为2mm,则计数室的面积为4mm2,每个小格面积为〖SX(〗1〖〗100〖SX)〗mm2,盖上盖玻片后计数室的高度为0.1mm,所以,一个计数室的体积为0.4mm3,每个小方格的体积为〖SX(〗1〖〗1000〖SX)〗mm3。 〖XC12.TIF;%50%50〗 2.计数方法 2.1 25×16计数室:显微镜下数左上、右上、左下、右下和中央共五个中格,即5×16=80个小方格的细菌数,若这80个小方格细菌数为A(对每个样品计数三次,取其平均值)。①若计数室的边长为1mm,则每毫升菌液的含菌量计算公式为〖SX(〗A〖〗80〖SX)〗×400×10×1000=50000A(若菌液被稀释,还要乘以

血细胞计数板相关知识及练习

血细胞计数板

(2)样品稀释的目的是便于酵母菌悬液的计数,以每小方格内含有4-5个酵母细胞为宜,一般稀释10倍即可。 (3)将血细胞计数板用擦镜纸擦净,在中央的计数室上加盖专用的厚玻片。 (4)将稀释后的酵母菌悬液,用吸管吸取一滴置于盖玻片的边缘,使菌液缓缓渗入,多余的菌液用吸水纸吸取,捎待片刻,使酵母菌全部沉降到血细胞计数室内。 (5)计数时,如果使用16格×25格规格的计数室,要按对角线位,取左上,右上,左下,右下4个中格(即100个小格)的酵母菌数.如果规格为25格×16格的计数板,除了取其4个对角方位外,还需再数中央的一个中格(即80个小方格)的酵母菌数。 (6)当遇到位于大格线上的酵母菌,一般只计数大方格的上方和右方线上的酵母细胞(或只计数下方和左方线上的酵母细胞) 。 (7)对每个样品计数三次,取其平均值,按下列公式计算每1ml菌液中所含的酵母菌个数。 2、计算公式: (1)16格×25格的血细胞计数板计算公式: 酵母细胞数/ml=100小格内酵母细胞个数/100×400×10四次方×稀释倍数 (2)25格x16格的血细胞计数板计算公式: 酵母细胞数/ml=80小格内酵母细胞个数/80×400×10四次方×稀释倍数 3.血细胞计数板的清洁: 血细胞汁数板使用后,用自来水冲洗,切勿用硬物洗刷,洗后自行晾干或用吹风机吹干,或用95%的乙醇,无水乙醇,丙酮等有机溶剂脱水使其干燥.通过镜检观察每小格内是否残留菌体或其他沉淀物.若不干净,则必须重复清洗直到干净为止. 三、不足之处 血细胞计数板在显微镜下直接进行测定。它观察在一定的容积中的微生物的个体数目,然后推算出含菌数,简便快捷。但是在计数时包括死活细胞均被计算在内,还有微小杂物也被计算在内。这样得出结果往往偏高,因此适用于对形态个体较大的菌体或孢子进行计数。 四、相关练习: 1.在一定量的酵母菌培养液中放人活酵母菌若干,抽样镜检,视野下如图甲所示(图中小点代表酵母菌)。将容器放在适宜温度下恒温培养5小时后,稀释100倍,再抽样镜检,视野下如乙图所示。根据实验结果判断,以下叙述正确的是()

微生物显微计数--血球计数板法

微生物显微计数--血球计数板法 一、目的要求 1.了解血球计数板的构造和使用方法。 2.学会用血球计数板对酵母细胞进行计数。 二、基本原理 利用血球计数板在显微镜下直接计数,是一种常用的微生物计数方法。此法的优点是直观、快速。将经过适当稀释的菌悬液(或孢子悬液)放在血球计数板载玻片与盖玻片之间的计数室中,在显微镜下进行计数。由于计数室的容积是一定的(0.1mm2),所以可以根据在显微镜下观察到的微生物数目来换算成单位体积内的微生物总数目。由于此法计得的是活菌体和死菌体的总和,故又称为总菌计数法。 血球计数板,通常是一块特制的载玻片,其上由四条槽构成三个平台。中间的平台又被一短横槽隔成两半,每一边的平台上各刻有一个方格网,每个方格网共分九个大方格,中间的大方格即为计数室,微生物的计数就在计数室中进行。 计数室的刻度一般有两种规格,一种是一个大方格分成16个中方格,而每个中方格又分成25个小方格;另一种是一个大方格分成25个中方格,而每个中方格又分成16个小方格。但无论是哪种规格的计数板,每一个大方格中的小方格数都是相同的,即16×25=400小方格。 每一个大方格边长为1mm,则每一大方格的面积为1mm2,盖上盖玻片后,载玻片与盖玻片之间的高度为0.1mm,所以计数室的容积为0.1mm3。 在计数时,通常数五个中方格的总菌数,然后求得每个中方格的平均值,再乘上16或25,就得出一个大方格中的总菌数,然后再换算成1ml菌液中的总菌数。 下面以一个大方格有25个中方格的计数板为例进行计算:设五个中方格中总菌数为A,菌液稀释倍数为B,那么,一个大方格中的总菌数 因1ml=1cm3=1000mm3, =50000A·B(个) 同理,如果是16个中方格的计数板,设五个中方格的总菌数为A',则 三、器材 酿酒酵母菌悬液,血球计数板,显微镜,盖玻片,无菌毛细管。 四、操作步骤 1.稀释 将酿酒酵母菌悬液进行适当稀释,菌液如不浓,可不必稀释。 2.镜检计数室 在加样前,先对计数板的计数室进行镜检。若有污物,则需清洗后才能进行计数。 3.加样品 将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片,再用无菌的细口滴管将稀释的酿酒酵母菌液由盖玻片边缘滴一小滴(不宜过多),让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自行进入计数室,一般计数室均能充满菌液。注意不可有气泡产生。 4.显微镜计数 静止5分钟后,将血球计数板置于显微镜载物台上,先用低倍镜找到计数室所在位置,然后换成高倍镜进行计数。在计数前若发现菌液太浓或太稀,需重新调节稀释度后再计数。

细胞计数板使用方法.

细胞计数板使用方法 实验原理:当待测细胞悬液中细胞均匀分布时,通过测定一定体积悬液中的细胞的数目,即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。 具体操作: 1. 将计数板及盖片擦拭干净,并将盖片盖在计数板。 2. 将细胞悬液吸出少许,滴加在盖片边缘,使悬液充满盖片和计数板之间,静置3min,注意盖片下不要有气泡,也不能让悬液流入旁边槽中。 3. 计算板四大格细胞总数,压线细胞只计左侧和上方的。然后按公式计算: 细胞数/mL=四大格细胞总数/4×104 说明:公式中除以4,因为计数了4个大格的细胞数。 公式中乘以104因为计数板中每一个大格的体积为: 1.0mm(长)×1.0mm(宽)×0.1mm(高)=0.1mm3 而1ml=1000mm3 (注意:镜下偶见有两个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计算,若细胞团10%以上,说明分散不好,需重新制备细胞悬液) 细胞计数板的使用 血球计数板-基本构造 血球计数板是一块特制的厚型载玻片,载玻片上有四个槽构成三个平台。中间的平台较宽,其中间又被一短横槽分隔成两半,每个半边上面各刻有一小方格网,每个方格网共分九个大格,中央的一大格作为计数用,称为计数区。计数区的刻度有两种:一种是计数区分为16个大方格(大方格用三线隔开),而每个大方格又分成25个小方格;另一种是一个计数区分成25个大方格(大方格之间用双线分开),而每个大方格又分成16个小方格。但是不管计数区是哪一种构造,它们都有一个共同特点,即计数区都由400个小方格组成。

计数区边长为1mm,则计数区的面积为1mm2,每个小方格的面积为1/400mm2。盖上盖玻片后,计数区的高度为0.1mm,所以每个计数区的体积为0.1mm3,每个小方格的体积为1/4000mm3。 使用细胞计数板计数时,先要测定每个小方格中微生物的数量,再换算成每毫升菌液(或每克样品)中微生物细胞的数量。 细胞计数板-使用方法 1.视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释(斜面一般稀释100倍),以每小格的菌数可数为度。 2.取洁净的细胞计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片。 3.将菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘摘入一小滴(不宜过多),让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区,勿使气泡产生,并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。也可以将菌悬液直接滴加在计数区上(不要使计数区两边平台沾上菌悬液,以免加盖盖玻片后,造成计数区深度的升高),然后加盖盖玻片(勿使产生气泡)。 4.静置片刻,使细胞沉降到计数板上,不再随液体漂移。将细胞计数板放置于显微镜的载物台上夹稳,先在低倍镜下找到计数区后,再转换高倍镜观察并计数。由于生活细胞的折光率和水的折光率相近,观察时应减弱光照的强度。 5.计数时若计数区是由16个大方格组成,按对角线方位,数左上、左下、右上、右下的4个大方格(即100小格)的菌数。如果是25个大方格组成的计数区,除数上述四个大方格外,还需数中央1个大方格的菌数(即80个小格)。为了保证计数的准确性,避免重复计数和漏记,在计数时,对沉降在格线上的细胞的统计应有统一的规定。如菌体位于大方格的双线上,计数时则数上线不数下线,数左线不数右线,以减少误差。即位于本格上线和左线上的细胞计入本格,本格的下线和右线上的细胞按规定计入相应的格中。见下图:即本格中计数细胞为3个。

血球计数板的使用

关于血球计数板的使用及问题讨论 摘要:《培养液中酵母菌种群数量的动态变化》是新课标教材“必修3:稳态与环境”中的学生分组实验,该实验需要测定酵母菌细胞数量,教材采用显微镜直接计数法,需要学生学会使用血球计数板进行准确计数。但是该计数方法,对高中教师来说,比较陌生,对学生而言,使用的难度较大。本文通过结合《培养液中酵母菌种群数量的动态变化》这一实验,对血球计数板的使用原理和操作步骤、方法等进行详细地介绍,并分析有关血球计数板的命题。 关键词:血球计数板使用原理、方法问题讨论 《培养液中酵母菌种群数量的动态变化》是新课标教材“必修3:稳态与环境”中的学生分组实验,该实验通过探究培养液中酵母菌种群数量的变化,尝试建构种群增长的数学模型并用数学模型解释种群数量的变化,说明制约种群个体数量变化的种群外部环境因素和种群内部因素。 在该实验中,需要测定酵母菌细胞数量。测定细胞数目的方法有显微镜直接计数法、平板菌落计数法、光电比浊法等,教材采用的是较为简便、快速、直观的显微镜直接计数法。因此,学会使用血球计数板进行准确计数,是该实验成功与否的关键。 虽然不同版本的教材推荐使用的血球计数板的规格不同,人教版建议使用2mm×2mm×0.1mm方格,苏教版推荐使用1mm×1mm×0.1mm方格,但是血球计数板的使用原理和方法是相同的。笔者通过近年来对该实验的摸索,对血球计数板的使用和命题方面存在的一些问题进行了分析总结。 一、血球计数板的使用原理 显微镜直接计数法是将小量待测样品的悬浮液置于一种特别的具有确定面积和容积的载玻片上(又称计菌器),于显微镜下直接计数,然后推算出含菌数的一种方法。血球计数板是常用的计菌器之一。 血球计数板是一种专门用于计算较大单细胞微生物的一种仪器,由一块比普通载玻片厚的特制玻片制成的玻片中有四条下凹的槽,构成三个平台。中间的平台较宽,其中间又被一短横槽隔为两半,每半边上面刻有一个方格网。方格网上刻有9个大方格,其中只有中间的一个大方格为计数室。这一大方格的长和宽各为1mm,深度为0.1mm,其容积为0.1mm3,即1mm×1mm×0.1mm方格的计数板;大方格的长和宽各2mm,深度为0.1mm,其容积为0.4mm3,即2mm×2mm×0.1mm方格的计数板。在血球计数板上,刻有一些符号和数字(见图一),其含义是:XB-K-25为计数板的型号和规格,表示此计数板分25个中格;0.1mm为盖上盖玻片后计数室的高;1/400mm2表示计数室面积是1mm2,分400个小格,每小格 面积是1/400 mm2。

细胞计数方法细胞计数板法

细胞计数板法细胞计数方法------ 实验原理:当待测细胞悬液中细胞均匀分布时,通过测定一定体积悬液中的细胞的数目,即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。具体操作: 将计数板及盖片擦拭干净,并将盖片盖在计数板。1. 将细胞悬液吸出少许,滴加在盖片边缘,使悬液充满盖片和计数板之间,静2. ,注意盖片下不要有气泡,也不能让悬液流入旁边槽中。置3min计算板四大格细胞总数,压线细胞只计左侧和上方的。然后按公式计算:3. /ml10个细胞数/mL=四大格细胞总数/4×4:注当细胞很多时,可在四个格中选一定数目较平均的小格,由于每大格中有(mm个小格,然后计左侧和上方的细胞数,求出每小格的细胞数,取平均值,16个/ml)×16×10×16即每个格的平均值。所以,细胞密度=m4说明:个大格的细胞数。4,因为计数了4公式中除以的体积为:10因为计数板中每一个大格公式中乘以41ml=1000ul=1000mm 而0.1mm(高)=0.1mm (宽)×1.0mm(长)×1.0mm33 注意:镜下偶见有两个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计算,若细胞(以上,说明分散不好,需重新制备细胞悬液。)10%团 ================================================细胞计数板的使用 一、血球计数板-基本构造

word 编辑版. 中间的载玻片上有四个槽构成三个平台。血球计数板是一块特制的厚型载玻片,平台较宽,其中间又被一短横槽分隔成两半,每个半边上面各刻有一小方格网,计数区的刻称为计数区。每个方格网共分九个大格,中央的一大格作为计数用, 个大方格(大方格用三线隔开),而每个大方度有两种:一种是计数区分为16(大方格之间用双另一种是一个计数区分成25个大方格格又分成25个小方格;个小方格。但是不管计数区是哪一种构造,线分开),而每个大方格又分成16400个小方格组成。它们都有一个共同特点,即计数区都由 22。1/400mm1mm计数区边长为,则计数区的面积为1mm,每个小方格的面积为3,每盖上盖玻片后,计数区的高度为0.1mm,所以每个计数区的体积为0.1mm3 1/4000mm。个小方格的体积为再换算成每毫升先要测定每个小方格中微生物的 数量,使用细胞计数板计数时,菌液(或每克样品)中微生物细胞的数量。word 编辑版. 二、细胞计数板-使用方法 1.视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释(斜面一般稀释100倍),以每小格的 菌数可数为度。 2.取洁净的细胞计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片。 3.将菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片 的下边缘摘入一小滴(不宜过多),让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区,勿使气泡产生,并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。也可以将菌悬液直接滴加在计数区上(不要使计数区两边平台沾上菌悬液,以免加盖盖玻片后,造成

血球计数板计数实验

环工综合实验血球计数板计数实验 实验报告 环境科学与工程学院实验中心

使用血球计数板计数时,先要测定每个小方格中微生物的数量,再换算成每毫升菌液(或每克样品)中微生物细胞的数量。 2.血球计数板计算微生物数量的优缺点是什么?血球计数板与平板稀释法对细菌个数进行测定,结果往往差别很大。分析原因。 答:⑴将细菌(或其他微生物)以染料(例如结晶紫)染色后,直接以显微镜观察的方式计数,再推算回细菌数,所得即为总菌数,即死菌、活菌一并计算。 优点:简单、快速、重复性高。 不足:不能区分死细胞和活细胞,应用范围较窄;一些小的细胞在显微镜下很难看到;样品中菌液浓度不能低于106个/mL;不能用于菌丝体或呈链状而不分散的微生物测定 ⑵血球计数板计量时所得到的结果为死菌与活菌的总数,而平板稀释法培养得到的为活菌数目,因此结果差异较大。 四、实验步骤 1.稀释:取接种酵母菌的斜面一支,加入5ml无菌水,摇晃试管一分钟,使形成菌液;将菌液倒入洁净的150ml锥形瓶中,加结晶紫三滴,摇晃2分钟,再加入无菌水至50ml。

2.镜检计数室:在加样前,先对计数板的计数室进行镜检。若有污物,则需清洗后才能进行计数。 2.加样品:将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片,再用无菌的细口滴管将稀释的酿酒酵母菌液由盖玻片边缘滴一小滴(不宜过多),让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自行进入计数室,一般计数室均能充满菌液。注意不可有气泡产生。 4.显微镜计数:静止5分钟后,将血球计数板置于显微镜载物台上,先用低倍镜找到计数室所在位置,然后换成高倍镜进行计数。在计数前若发现菌液太浓或太稀,需重新调节稀释度后再计数。一般样品稀释度要求每小格内约有5—10个菌体为宜。每个计数室选5个中格(可选4个角和中央的中格)中的菌体进行计数。位于格线上的菌体一般只数上方和右边线上的。如遇酵母出芽,芽体大小达到母细胞的一半时,即作两个菌体计数。计数一个样品要从两个计数室中计得的值来计算样品的含菌量。 5.清洗血球计数板:使用完毕后,将血球计数板在水笼头上用水柱冲洗,切勿用硬物洗刷,洗完后自行晾干或用吹风机吹干。镜检,观察每小格内是否有残留菌体或其他沉淀物。若不干净,则必须重复洗涤至干净为止。(注意:血球计数板计数室只能水冲,不得擦拭!) 五、实验数据及观察结果 血球计数板镜检结果:

认识血球计数板进阶测试1、右下图是一块血球计数板正面示意图,其上

认识血球计数板进阶测试 1、右下图是一块血球计数板正面示意图,其上有几个计数室? A.1个 B.2个 C.3个 D.4个 2、右下图是计数室中—个小格的酵母菌分布示意图(●代表酵母菌),计数时该小格中酵母菌数量应计为几个? A.3个 B.6个 C.5个 D.7个 3、某同学将试管中培养液摇匀后取样并制片,在显微镜下观察到右图所示的现象,则应采 取的措施是? A.将试管静置后,重新抽样检测 B.多次测量求平均值 C.未设置对照实验 D.加水适当稀释后,再观察计数 4、检测员将1 mL水样稀释10倍后,用抽样检测的方法检测每毫升蓝藻的数量;将盖玻片放在计数室上,用吸管吸取少许培养液使其自行渗入计数室,并用滤纸吸去多余液体。已知每个计数室由25×16=400个小格组成,容纳液体的总体积为0.1 mm3。 现观察到图中该计数室所示a、b、c、d、e 5个中格80个小格内共有蓝藻n个,则上述水样中约有蓝藻多少个/mL? A.5n×104 B.8n ×104 C.5n×105 D.8n×105 5、下列关于血球计数板的使用方法正确的是 A.在使用血球计数板时发现有污物,则需用试管刷蘸洗涤剂擦洗血球计数板 B.在滴加样液时应先滴加样液再盖盖玻片 C.计数时应不时地调节焦距,才能观察不同深度的菌体 D.在实验过程中,直接从静置的培养瓶中取培养原液计数

认识血球计数板进阶测试标准答案 1、B 解析:血球计数板是由一块比普通载玻片厚的特制玻璃制成的,玻片中有4条下凹的槽,构成3个平台,中间的平台较宽,其中间又被一短槽横为两半,每半边上面刻有1个大方格网,方格网上刻有9个大方格,其中只有中间的大方格为计数室,供微生物计数。 2、C 解析:对正好位于中方格界线上的酵母菌,在计数时一般只计数相邻两边及夹角。 3、D 解析:如果一个小方格内数量过多,难以数清则需稀释再计数。 4、C 解析:因为80个小格内共有蓝藻n个,所以一个计数室(400个小格)内的蓝藻数量为5n,由于一个计数室的体积为0.1mm3,则1mL中蓝藻数量为5n×104,又由于1 mL水样稀释10倍,所以1mL水样中蓝藻数量为5n×105。 5、C 解析:实验结束后,用试管刷蘸洗涤剂擦洗血球计数板的做法是错误的,正确的方法是浸泡和冲洗。将清洁干燥的血球计数板的计数室上加盖专用的盖玻片,用吸管吸取稀释后的酵母菌悬液,滴于盖玻片边缘,让培养液自行缓缓渗入,一次性充满计数室,防止产生气泡. 从试管中吸取样液进行计数之前,要将试管轻轻震荡几下,使其分布均匀。

相关文档
相关文档 最新文档