实验动物学课件
第一章实验动物学概述一、实验动物科学的概念和研究范畴二、实验动物科学的诞生三、中国现代实验动物学的诞生四、实验动物科学应用范畴五、动物实验研究的现状及发展趋势六、动物实验研究的优越性和欠缺一、实验动物科学的概念和研究范畴（一）、实验动物科学的基本概念1、实验动物科学（LaboratoryAnimalScience)是一门研究实验动物及其培育和应用的学科，是生命科学的一个分支。它是现代科学技术的重要组成部分，是生命科学研究的基础条件，是衡量一个国家或一个地区科研水平的重要标志。2、实验动物：指经人工饲育的，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定的动物。特点：生物学特性明确、遗传背景清楚、表型均一、对刺激敏感和反应一致等3、实验用动物：指能够用于科学实验的所有动物。（哺乳类、鱼类、两栖类、爬行类的蛇、昆虫类的果蝇等。它们不具有实验动物的特点、又达不到生产和检定所要求的那样精良。）二）、实验动物科学研究的范畴1、实验动物育种学：主要研究实验动物的遗传改良、遗传控制、新型实验动物的开发和野生动物的实验动物化。2、实验动物医学：研究实验动物的疾病诊断、治疗和预防。3、实验动物生态学：研究如何为实验动物提供适于生存的环境条件，使实验动物健康无病，生理指标稳定。4、比较医学：研究包括人体在内的所有实验动物的基本生命现象，并将各种正常构造和生理机能，以及疾病的发生发展的规律进行比较，研究人与其他动物的相同点与不同点，从而揭示生命的奥秘。5、动物实验技术：研究动物实验的设计、选择试验方法、选择恰当的实验动物等，也包括胚胎工程学、细胞工程学等动物实验技术。二、实验动物科学的诞生1、公元前4世纪至公元3世纪公元前4世纪，杰出的生物学奠基人Aristotle首先开展了多种动物解剖，但都是在死亡的动物和人尸体上进行的。Erasistratus可能是进行活体动物实验的创始人，他在猪体内确定了气管是吐纳空气的通道，肺是呼吸空气的器官。之后，Galen对猪、猴及其他多种动物都施行了活体解剖检查，以此推论人体的生理功能。2、公元3世纪至16世纪初从Galen之后，直到16世纪初，科学发展被教条主义所取代。动物实验技术的发展受到的影响尤为严重。当时即使是对死亡的动物和人的尸体施行解剖，也会被基督教会所禁止。他们阻止人们获取有关认识世界的知识，否则就被认为亵渎神明的行为。3、16世纪初至19世纪末这一时期是动物实验技术方法发展得辉煌时期。1538年，现代解剖学奠基人AndreasVesal利用犬和猪进行了公开的解剖学示范教学。1682年，WilliamHarvey采用20多种动物进行解剖与生理研究，揭开了血液循环的秘密，使生理学成为了一门学科。1796年，EdwardJenner研究牛痘疫苗，征服了天花，并开辟了免疫疗法。1859年，CDarwin发表了《动物起源》奠定了进化论和比较医学的基础，从而为通过动物来研究人提供给了理论基础。1865年，ClandBernard做了大量的动物实验，在其发表的《实验动物序说》中详细阐述了实验动物和动物实验的理论。1882年，RobertCoch对牛羊等动物研究，发现了结核菌和结核菌素，并研制了狂犬疫苗，奠定了微生物学和传染病学基础。后来Lister受到Coch启发，创立了无菌手术理论。1885年，Nuttall 培育了无菌豚鼠。1890年，Behring用豚鼠进行实验，研制出白喉抗毒素。1897年，Baflof 用狗做了大量实验，在消化生理和高级神经活动的研究中取得了巨大成就。4、20世纪初至今20世纪初，孟德尔遗传学定律发现以后，动物实验技术方法的发展进入了突飞猛进的时期。1909年，Little培育出第一株近交小鼠。1910年，Morgan用果蝇发现了染色体在遗传上的作用。1914年，山极和市川用沥青抹兔耳，诱发出皮肤癌。1929年，Fleming通过动物实验发现了青霉素。1937年，Krebs发现了三羧酸循环。1944年，美国纽约科学院召开会议，专门讨论实验动物与医学发展的关系，提出实验动物标准化势在必行。1947年，英国成立了实验动物管理署。1950年，美国成立了实验动物管理小组。1952年，日本成立了实验动物中央研究所。1953年，Crick提出DNA的双螺旋结构。1956年，联合国创立国际实验动物科学委员会（InternationalCouncilLaboratoryAnimalScienceICLAS)ICLAS的成立是实验动物学成为独立学科的标志，也是实验动物走向现代化的起点。故一般认为实验动物学
是20世纪50年代诞生的。上个世纪80年代以来，通过实验动物与动物实验研究获得三次诺贝尔医学奖：（1）、1980年度诺贝尔医学奖：GeorgeSnell的组织相容性基因的发现；（2）、1984年度诺贝尔医学奖：G.Kohler和https://www.wendangku.net/doc/5211326732.html,stein单克隆抗体的发现；（3）、1996年度诺贝尔医学奖：Koherty和ZinkermagelT淋巴细胞识别微生物的发现三、中国现代实验动物学的诞生1918年，中央防疫处从国外引进小鼠、豚鼠进行饲养、并进行动物实验。1919年，谢恩增医师等扑捉野生地鼠（后来公认为中国地鼠）作肺炎双球菌检定。1946年，从印度引进小白鼠，后繁育成昆明小鼠。1948年，蓝春霖教授从美国引进金黄地鼠。1949年，新中国成立，北京、上海、长春、兰州、成都成立了生物制品研究所，从此开始了大量饲养实验动物。1966年—1977年，文化大革命动乱使实验动物事业遭受严重的摧残。1982年，文革结束后，确立了改革开放的方针，经学者到国外考察实验动物情况，发现我国已落后20~30年。国家科委在云南西双版纳召开了第一次实验动物工作会议，我国实验动物现代化研究拉开了序幕。1983年，钟品仁主编的《哺乳类实验动物》出版，为我国实验动物学第一部专著。1985年，京沪两地实行实验动物合格证制度，推动了实验动物的标准化。1985年，国际小鼠命名委员会正式承认我国培育的TA1、TA2、615近交系小鼠。1988年，我国加入国际实验动物科学委员会并出版了《中国实验动物学杂志》。1988年，国家科委发布2号令即《实验动物管理条例》，为我国第一部有关实验动物的法律。四、实验动物科学应用范畴1、生命科学方面基础医学理论，疾病的病因、治疗和预防的研究；新的治疗方法、新的检查和治疗仪器的研制；分子生物学研究；基因工程研究；老年学研究；生育控制研究等。2、药学方面药理学的研究；新药开发研究；诊断用血清、疫苗、免疫血清的制作；药品的安全性评价试验；药效试验等。3、化工业和环境保护方面职业性中毒的预防研究；食品及食品添加剂的安全性评价；服装、面料、皮毛、化纤的安全性评价；化妆品、卫生纸等的安全性评价；环境条件的检测和评价等。4、重工业方面废水、废物、废气等公害的鉴定和防治；光辐射、噪声的有害性的鉴定和污染的防治等。5、农业科学方面化学肥料、农药的残毒的检测；新品种安全性检测等。6、畜牧科学方面家畜疾病的病因学诊断、治疗和预防研究；疫苗的制造和鉴定；新品种的培育研究；SPF蛋的生产和使用研究；饲料的营养学、安全性分析和鉴定。7、军事科学方面如武器杀伤效果、化学、辐射、生物激光等武器的防护研究等。
8、航天科学方面如宇宙射线、失重状态等对生物的影响及航天医学的研究等。9、国际贸易方面如疯牛病、口蹄疫等不合格肉类及食品的化学残毒等都需实验动物检疫和检测。10、行为科学方面如灾难事故的处理、汽车撞击的耐受度、建筑物耐受震动的允许度的检测等。五、动物实验研究的现状及发展趋势（一）、动物实验研究的现状1、国外动物实验方面的现状在美国，每年用于实验动物研究的非人灵长类动物、犬、豚鼠、兔、地鼠和其他动物（大、小鼠和禽鸟类除外）约150~200万只。大鼠、小鼠和禽鸟类，估计每年用1700万只动物。非人灵长类动物的使用基本上保持恒定，猫和犬的使用数量正在下降，逐渐被猪、小牛和其他家畜所取代。在加拿大，所使用的动物数量每年月200万只左右徘徊。在许多领域，特别是毒理学方面，鱼已取代哺乳动物。在英国，医学上每年使用的实验动物数量约263万只。在荷兰，每年使用实验动物约100万只左右。2、我国动物实验研究方面的概况（1）、80年代前的情况：80年代前，我国实验动物的饲养管理水平很低，动物实验发展水平也较低，没有法规和标准。（2）、80年代的情况：1982年国务院责成国家科委负责实验动物科技工作，启动了我国是实验动物与动物实验科技领域现代化工作进程。1988年11月14日经国务院批准由原国家科委颁布第2号令，即《实验动物管理条例》，条例对推动我国实验动物科学事业的发展，确保实验动物的质量起了重要作用。（3）、90年代的情况：1994年1月由国家技术监督局发布施行实验动物管理的国家标准，为我国实验动物标准化工作开创了新局面。随着实验动物质量逐步标准化，科学研究水平明显提高。（4）、目前的现状：据国家科技部统计，实验动物生产使用单位有2100多家，工作人员近9500余人，其中专业技术人员占
39.5%，已形成地区性生产基地。年生产各类实验动物约1321万余只，并已开始向生产规模化、供应社会化方向发展。年使用动物1045万余只，动物实验也在向技术服务社会化方向迈进。3、我国动物实验研究方面存在的问题（1）、研究人员缺乏必要的动物实验知识和训练。（2）、用于实验的动物种系少。（3）、用于实验的动物质量和笼器具质量差。（4）、动物使用率低。（5）、动物实验方面技术人员缺乏，国际交流少，信息不灵。二）、动物实验的发展趋势1、使用动物的数量不断下降2、使用动物的质量在不断的提高3、使用实验动物的种系不断增加4、实验动物模型走向商品化5、动物替代物和替代方法不断的应用六、动物实验研究的优越性和欠缺（一）、动物实验研究的优越性1、可以把临床研究中的复杂问题简单化，对各种因素可以进行细微的探讨。2、动物的各种条件可以进行严格控制，便于得出科学的结论。动物作为实验对象，可以在同一时间选择年龄、性别、环境条件、营养状况、遗传特点、微生物等条件相同的若干动物，而以人为研究对象是办不到的。3、可以缩短实验周期，短期内可观察多次。动物的寿命短，一个研究者可观察动物几十代、甚至几百代，而以人为研究对象是办不到的。4、可以在动物身上进行在人体上不能进行的高危险度的试验。从法律和道德上看，凡对人身安全构成威胁的试验在人身上都不能做（如烧伤、致癌等试验）。5、可按研究者的设计要求进行实验。动物实验中，可按时、按量、按次数、按种类、按方式施加任何条件，而人则不会给以配合。6、可随时取材，取任何材料，甚至处死后取材。（二）、动物实验研究的欠缺1、动物在遗传特性、生理、解剖特性上即使与人有相似之处，但毕竟不同于人，所以动物实验数据只能用作参考，不能直接应用于人。2、动物模型与临床疾病相比在病因、病理、外在表现等方面不完全相同，只能相似，所以复制的动物模型必须进行科学的分析和讨论。3、动物实验多在麻醉状态下进行，与人在清醒状态下的反应是不一样的。4、离体器官（或组织）实验与整体实验的情况是不一样的。5、动物缺少思维和语言，不能诉说内心感受，有些实验无法在动物身上进行。（一）、实验动物福利的概念及内涵1、实验动物福利的概念实验动物福利是在其整个生命过程中对其实施保护的具体体现，其实质和基本原则是为了保证实验动物的康乐（Welfare),通俗地说，就是让实验动物在康乐的状态下生活，在无痛苦状态下死亡，内容包括无任何疾病，行为无异常、无心理紧张、压抑和痛苦等。2、实验动物福利的内涵（1）、提供适当清洁饮水和保持身体健康需要的食物，使动物免受饥渴之苦（享受不受饥渴的自由）；（2）、提供适当的栖息场所，能舒适的休息，使动物免受困顿劳累之苦（享受生活舒适的自由）；（3）、做好卫生防疫、预防疾病和给患病的动物及时诊治，使动物免受病痛之苦（享受不受痛苦伤害和疾病威胁的自由）；3、实验动物饲养过程中的福利要求1）、对饲养设施、设备和饲育生活环境的要求；（2）、对待实验动物的态度和饲养管理的要求；（3）、对饲料和饮水的要求；（4）、特殊情况下对实验动物的照料。4、实验动物应用过程中的福利要求（1）、对科研人员素质的要求；（2）、对动物实验设备和手术器械的要求；（3）、对实验设计的要求；（4）、对保定和麻醉技术的要求；（5）、对术后护理的要求；（6）、对实验结束后，对实验动物的处理。1、实验动物工作者和研究者应树立爱护动物的观念。2、研究者应懂得正确的动物实验方法。3、试验中不许恐吓动物，不许造成动物肉体的痛苦，故进行使动物痛苦实验时，必须实施麻醉，处死动物时要施行安乐死、尸体要焚烧。4、要给牺牲的动物树立“慰灵碑”，表示对动物的感谢，唤起人们对动物的爱护和尊重。5、建立健全法规、用法律约束人们的行为。6、遵守3R原则、既代替（Replacement）减少（Reduction）优化（Refinement）。7、为动物设计舒适、有利于动物生存的环境。三）重视实验动物福利的意义1、有助于培养人类热爱自然、热爱生命、保护动物的意识。2、有利于从动物的身体上获得更加准确的数据。3、有利于非动物实验（代替法）的研究推广。4、有利于人类社会及人类社会和动物界的和谐，从而有利于科学的进步和社会的进步。四）、3R原则的内涵1、实验动物的代替（Replacement)（1）、生命系统包括离体培养的器官、组织、细胞等。在单克隆抗体生产、病毒疫苗研制、效力安全试验等
研究项目中广泛应用。（2）、非生命系统包括物理、化学方法代替动物。医学基础教学已有用物理学系统和机械系统者（如心肺复苏等病理过程）。免疫化学可用结合力很高的抗体来搜寻抗原或鉴定毒素存在。减少实验动物使用量（Reduction（1）、合用动物；（2）、改进统计学设计；（3）、使用低等动物代替高等的实验动物；（4）、使用高质量动物。3、动物实验的优化（Refinement（1）、改良仪器设备；（2）、减少对动物的侵扰。改善实验室条件，提高实验质量；（3）、进一步控制痛苦；（4）、改进动物保定技术。二、实验动物的法规（一）、管理机构与社会团体国家科技部：主管全国实验动物工作。实验动物学会：负责学术交流、技术咨询、人员培训。实验动物管理委员会：由科技部门出领导、学会出专家组成，负责各行业、各系统实验动物管理工作、法规落实、业务指导和业务协调。（二）、政策和法规第一部法规：1988年科委报请国务院批准颁布的《实验动物管理条例》国家科委2号令1997年又颁布了多项法规：《实验动物质量管理办法》〈实验动物国家种子中心管理办法〉〈国家实验动物质量检测机构技术〉现执行的是2001年国家科技部联合六部委颁布的〈实验动物许可证管理办法〉（四）、质量保证体系1、检测网络：国家的、系统的、地方的。负责检测方法、技术、试剂的研究人员培训和仲裁。2、种子中心：国家有啮齿类中心和上海分中心，云南灵长类中心，哈尔滨SPF鸡中心。3、生产、繁殖、供应中心：由各行业、各地区、各单位设施合格技术较好的单位负责生产和供应。五）、实验动物从业人员1、从业人员：是指从事实验动物的科技人员、专业管理人员和技术工人，以及利用动物进行教学、研究、药品和生物制品生产及检定等人员。国家规定从业人员实行岗位资格认可制度，所有人员必须持证上岗。2、人员素质要求：⑴遵守法律、法规、遵守生产和实验要求。⑵了解实验动物知识、科学管理和操作。⑶有饲养和实验操作技能。⑷善待动物。六）、科学教育：1、普及教育（相关人员培训上岗）2、大学教育（生物、医学、农业、林业等大学授课）3、硕士和博士学位的专业教育（一）、实验动物品种、品系1、种:动物“种”(species)是生物学分类的最基本单位,而在实验动物中,种是指可以相互交配且后代有繁殖能力的同一种类的动物。
2、实验动物品种(stockbreed):一般指具有一些容易识别和人们所需要的性状，而且是可以稳定遗传的动物群体。通常把封闭群动物称为品种,如新西兰白兔、KM小鼠等。
3、品系(strain):实验动物学上把基因高度纯合的动物称为品系动物,通常指近交系、突变系动物。vv二）、作为一个品种、品系应具备的条件1、相似的外貌特征：例如小鼠C57BL/6品系的毛色是黑色的,DBA/2品系的毛色是灰色的,KM品种的毛色是白色的。当然,相似的外貌特征只是品系、品种应具备的条件之一。不同品系、品种的动物也有外貌相似的,例如A、KM等十几个品种、品系动物的毛色都是白色，但它们在其他的条件上是有区别的。2、独特的生物学特性3、稳定的遗传性能：一个品种或品系有一定的育种价值，杂交F1代繁殖后代时，性状发生分离不能成为一个品系。
4、具有共同的遗传来源和一定的遗传结构按培育的程度分为广义和狭义实验动物1、广义实验动物：泛指用于科学实验的各种动物2、狭义实验动物：指经人工饲育的，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定以及其它科学实验的动物。远交种的命名：（1）、一般用2~4个大写字母表示，如ICR、NIH小鼠。（2）、习惯用法，如Wistar大鼠、NewZealandWhite兔。（3）、在大写字母之前加上一个大写字母和几个小写字母构成的培养者或保留者的符号，并且与品系名称用冒号隔开，如Lac:LACA是由英国实验动物中心保持的LACA小鼠，N:NIH 是由美国国立卫生研究院保存的NIH小鼠。一、实验动物科学的概念和研究范畴二、实验动物科学的诞生三、中国现代实验动物学的诞生四、实验动物科学应用范畴五、动物实验研究的现状及发展趋势六、动物实验研究的优越性和欠缺1、实验动物育种学：主要研究实验动物的遗传改良、遗传控制、新型实验动物的开发和野生动物的实验动物化。2、实验动物医学：研究实验动物的疾病诊断、治疗和预防。3、实验动物生态学：研究如何为实验动物提供适于生存的环境条件，使实验动物健康无病，生理指标稳定。1、公元前4世纪至公元
3世纪公元前4世纪，杰出的生物学奠基人Aristotle首先开展了多种动物解剖，但都是在死亡的动物和人尸体上进行的。Erasistratus可能是进行活体动物实验的创始人，他在猪体内确定了气管是吐纳空气的通道，肺是呼吸空气的器官。之后，Galen对猪、猴及其他多种动物都施行了活体解剖检查，以此推论人体的生理功能。4、20世纪初至今上个世纪80年代以来，通过实验动物与动物实验研究获得三次诺贝尔医学奖：（1）、1980年度诺贝尔医学奖：GeorgeSnell的组织相容性基因的发现；（2）、1984年度诺贝尔医学奖：G.Kohler和https://www.wendangku.net/doc/5211326732.html,stein 单克隆抗体的发现；（3）、1996年度诺贝尔医学奖：Koherty和ZinkermagelT淋巴细胞识别微生物的发现三、中国现代实验动物学的诞生四、实验动物科学应用范畴1、生命科学方面基础医学理论，疾病的病因、治疗和预防的研究；新的治疗方法、新的检查和治疗仪器的研制；分子生物学研究；基因工程研究；老年学研究；生育控制研究等。2、药学方面药理学的研究；新药开发研究；诊断用血清、疫苗、免疫血清的制作；药品的安全性评价试验；药效试验等。五、动物实验研究的现状及发展趋势3、我国动物实验研究方面存在的问题（二）、动物实验的发展趋势六、动物实验研究的优越性和欠缺（二）、动物实验研究的欠缺第二章实验动物的法规和伦理一、实验动物福利2、实验动物福利的内涵3、实验动物饲养过程中的福利要求4、实验动物应用过程中的福利要求（二）、正确对待实验动物福利（三）重视实验动物福利的意义（四）、3R原则的内涵2、减少实验动物使用量（Reduction)3、动物实验的优化（Refinement)二、实验动物的法规（一）、管理机构与社会团体国家科技部：主管全国实验动物工作。实验动物学会：负责学术交流、技术咨询、人员培训。实验动物管理委员会：由科技部门出领导、学会出专家组成，负责各行业、各系统实验动物管理工作、法规落实、业务指导和业务协调。（二）、政策和法规第一部法规：1988年科委报请国务院批准颁布的《实验动物管理条例》国家科委2号令1997年又颁布了多项法规：《实验动物质量管理办法》〈实验动物国家种子中心管理办法〉〈国家实验动物质量检测机构技术〉现执行的是2001年国家科技部联合六部委颁布的〈实验动物许可证管理办法〉（三）许可证内容1、不同等级、不同种动物的生产、繁殖、供应合格证。2、不同等级的实验设施许可证。3、从业人员许可证。（四）、质量保证体系1、检测网络：国家的、系统的、地方的。负责检测方法、技术、试剂的研究人员培训和仲裁。2、种子中心：国家有啮齿类中心和上海分中心，云南灵长类中心，哈尔滨SPF鸡中心。3、生产、繁殖、供应中心：由各行业、各地区、各单位设施合格技术较好的单位负责生产和供应。（五）、实验动物从业人员1、从业人员：是指从事实验动物的科技人员、专业管理人员和技术工人，以及利用动物进行教学、研究、药品和生物制品生产及检定等人员。国家规定从业人员实行岗位资格认可制度，所有人员必须持证上岗。2、人员素质要求：⑴遵守法律、法规、遵守生产和实验要求。⑵了解实验动物知识、科学管理和操作。⑶有饲养和实验操作技能。⑷善待动物。（六）、科学教育：1、普及教育（相关人员培训上岗）2、大学教育（生物、医学、农业、林业等大学授课）3、硕士和博士学位的专业教育第三章实验动物分类一、自然分类法分类（二）、作为一个品种、品系应具备的条件)实验动物在生物学分类中的位置二、按培育的程度分类按培育的程度分为广义和狭义实验动物1、广义实验动物：泛指用于科学实验的各种动物2、狭义实验动物：指经人工饲育的，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定以及其它科学实验的动物。（一）、封闭群普通近交系（二）、近交系——→重组近交系同源近交系（三）、杂交一代动物同源导入系（四）、突变系分离近交系1、定义：一个有效群体在固定场所，五年以上不从外部引入新个体、以非近亲交配方式繁育生产的实验动物群体称为封闭群，亦称远交群。（1）、远交种：一个长时期于外界隔离，雌雄个体之间能够随机交配的动物群。其遗传组成比较接近于自然状态下的动物群体结构。常见的远交种动物有KM、ICR、NIH小鼠、SD大鼠、新西兰兔、Wistar大鼠等。（2）、突变种：携带个别突变基因的封闭群，这些突变可能以纯合或杂合形式存在于封闭群中。2、封闭群
的命名3、封闭群动物的特点及应用1、普通近交系（Inbredstrain)概念：是通过至少（或相当）连续20代以上兄妹或亲子交配培育而成，品系内所有个体都可以追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先，近交系数大于98.6%的动物群体。近交系特点：基因高度纯合；表现型一致；对外界刺激敏感而反应一致；生命力差、抗病力低。普通近交系的命名近交系动物的应用2、重组近交系3、同源突变、同源导入、分离近交系1、概念：杂交群动物（HybridAnimals）指两个近交系之间进行有计划交配所获得的第一代动物（也叫F1代动物）。实验动物所说的杂交群通常指杂交F1代动物。1、定义：遗传基因发生突变具有某种特殊表型的动物，称为突变系动物。2、特点：多为病态，生活能力差，对饲养管理要求严格，繁殖保种较为困难。3、应用：作为人类疾病动物模型如：糖尿病鼠（diabetesmice)、肥胖症鼠（obesemice）、自发性高血压大鼠（spontaneoushypertension）（SHR）、裸鼠（nudemice 或rats）、联合免疫缺陷小鼠（SCID）等。按照微生物控制程度，目前我国将实验动物分为四个等级：普通级动物（Ⅰ级）清洁级动物（Ⅱ级）无特定病原体动物（Ⅲ级或SPF级）无菌动物和悉生动物（Ⅳ级）1、普通级动物（Conventionalanimal，CV也叫一级动物）定义：未经严格的微生物学和寄生虫学控制，饲养在开放的环境中的实验动物，不携带所规定的人兽共患病病原和动物烈性传染病病原。特点：敏感性、一致性差，只能用于教学示教或科研预实验。国外没有这个等级的啮齿类动物。2、清洁级动物（Cleananimal，CL也叫二级动物）定义：除普通动物应排除的病原体外，还不许携带对动物危害大和对科学研究干扰大的病原体，肉眼观察无病外，尸体解剖时主要脏器、组织无论是宏观还是病理组织切片均不应有病变。种子来源于剖腹产或SPF动物、饲养在屏障系统内。特点：可靠性、重复性好，适用于大多数科研和教学实验。3、无特定病原体动物（Specificpathogenfreeanimal，SPF 也叫三级动物）定义：除清洁级动物应排除的病原外，不携带主要潜在感染或条件致病病原和对科学实验干扰大的病原。种子来源于剖腹产或无菌动物，饲养在屏障系统内。特点：国际通用的标准科研用实验动物。4、无菌动物（Germfreeanimal，GF）和悉生动物（Gnotobilticanimal，GN也叫四级动物）定义：用现有的科学知识和检测手段，在动物体内外不能检出一切外来生命的动物称为无菌动物；悉生动物是指在无菌动物体内植入已知微生物的动物。根据体内植入菌落种类不同，又可以分为单菌动物、双菌动物和三菌动物。种子来源于剖腹产，饲养在隔离器内。无菌动物的特点：盲肠薄，肠粘膜绒毛增多；肝脏重量下降，心脏、脾脏、肾脏缩小；白细胞增多，数值恒定；免疫功能低下；代谢周期和寿命延长；无菌豚鼠和家兔繁殖和生长机能下降。多用于特殊实验。第四章人类疾病的动物模型第一节人类疾病动物模型的概念、意义及分类一、人类疾病动物模型的概念人类疾病的动物模型（animalmodelofhumandisease）是指各种医学科学研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物实验对象和相关材料。动物模型主要用于实验生理、实验病理和实验治疗学（包括新药筛选）研究。二、人类疾病动物模型在生物医学研究中的意义1、可复制临床上一些不常见的疾病，如放射病、毒气中毒、烈性传染病、外伤、肿瘤等2、可按需要选择动物模型作为人类疾病的“复制品”，可按研究者的需要随时采集各种样品或分批处死动物收集标本，以了解疾病的全过程，这是临床难以办到的。3、可比性一般疾病多为零散发生，在同一时期内，很难获得一定数量的定性材料，而动物模型不仅在群体数量上容易得到满足，而且可以在方法学上严格控制实验条件，从而提高实验结果的可比性和重复性，使所得的实验结果更准确更深入。4、有助于全面认识疾病的本质在临床上研究疾病的本质难免带有一定的局限性。许多病原体除人以外也能引起多种动物的感染，其症状体征表现可能不完全相同。但是通过对人畜共患病的比较，则可以充分认识同一病原体给不同的机体带来的各种危害，使研究工作上升到立体的水平来揭示某种疾病的本质。三、好的人类疾病动物模型应具有的特点1、再现性好：应能再现所要研究的人类疾病，动物疾病的表现应与人类疾病相似；2、动物背景资料完整，生命周期满足实验要求，复制率高；3、专一性好：即一种方法只能复制出一
种模型。四、人类疾病动物模型的分类1、自发性动物模型（naturallyoccurringorspontaneousanimalmodels）是取自动物自然发生的疾病，或由于基因突变的异常表现通过定向培育而保留下来的疾病模型。2、诱发性动物模型（experimentalartificialorinducedanimalmodels）是通过物理、生物、化学等致病因素的作用，人为诱发出的具有类似人类疾病特征的动物模型。第二节常见自发性人类疾病的动物模型2、神经系统疾病3、循环系统疾病4、呼吸系统疾病5、消化系统疾病6、泌尿系统疾病7、血液与造血系统疾病8、新陈代谢疾病9、内分泌系统疾病第三节诱发性动物模型的复制方法简介1、神经系统疾病2、循环系统疾病3、呼吸系统疾病4、消化系统疾病5、泌尿系统
疾病6、血液与造血系统疾病7、新陈代谢疾病8、寄生虫2动物实验技术三、分类：1.按机体水平：整体实验和离体实验。具体分为亚细胞、细胞、组织、器官、整体动物和无损伤动物等水平的实验。2.时间：急性实验（2天以内）、亚急性实验（1~4周）、慢性实验（2~6个月或更长时间甚至整个生命期）四、方法：生理学、病理生理学、药理学、病理解剖学、组织学、微生物学、免疫学的动物实验方法等等。第二节动物实验前的准备（二）实验单位随机分为三组分组情况（二）耳缘剪孔法：是在动物的耳边缘剪出不同的缺口或打成不同的小孔进行标记的方法。为防止孔、口愈合，一般在打孔后用消毒的滑石粉涂抹在孔、口局部。由打孔或剪切的位置和孔数代表编号，一般在耳内按上、中、下打孔，分别代表1、2、3，在相应位置剪缺口代表4、5、6，剪两个缺口代表7、8、9，无孔或缺口为10。本法规定右耳代表个位数、左耳代表十位数。（三）烙印法：用烙印钳将号码烙印在犬等大中型动物无体毛或明显部位。大、小鼠等小动物可用刺针在动物耳上刺号，然后用棉签蘸着溶在酒精中的黑墨在针刺处涂抹。烙印前,最好对烙印的部位预先用酒精消毒，操作时要注意防止感染。（四）号牌法：用特制的金属号牌固定在实验动物的耳上，大动物可系于颈项部，固定号牌时要注意避开血管。（五）笼子编号法：不在动物身体上作标记而把装动物的笼子进行编号，也叫替代法。第三节动物实验的基本操作一、实验动物的抓取与固定二、实验动物被毛去除法三、实验动物的麻醉四、实验动物给药途径与方法五、实验动物采血和采液方法3、手术固定法：用乙醚等麻醉药品麻醉后，用长20~30cm的线绳分别系在四肢上，再把系在四肢的线绳分别系在固定板四角的钉子上，并且在头部上颚切齿的地方牵一根线绳达到完全固定。4、在尾静脉给药时，先根据小鼠的大小选择合适的固定器，打开鼠筒盖，把小鼠放在里面，只露出尾巴；或者用倒放的烧杯将鼠扣住，尾巴自烧杯凹口处露出，并压住，即可进行操作。（二）、大鼠的抓取与固定1、抓取方法：4~5周龄以内的大鼠同小鼠；周龄较大的大鼠其尾部皮肤容易被剥脱，所以用左手从背部中央到胸部捏起来抓住。抓取时最好带防护手套，但手套不宜过厚。2、手固定法：抓取大鼠的方法类似小鼠，即用左手的拇指、食指和中指抓住颈背部皮肤，小指和无名指挟住尾部牢牢固定；或左手按住抓起大鼠的时候，把食指放在颈背部，拇指及其他三指放在肋部，食指和中指挟住左前肢，分开两前肢带起来，右手按住后肢固定；还有一种方法，张开虎口，迅速将拇指、食指插入腹下，虎口向前，其余三指及掌心握住大鼠身体中段，并保持仰卧体位，然后调整左手拇指位置，紧抵在下颌骨上进行实验操作。3、手术固定法：同小鼠。4、尾静脉给药或采血时同小鼠。（三）、豚鼠的抓取与固定1、抓取方法：抓取幼小豚鼠时，用手捧起来；成熟的大豚鼠，用手大把抓起胸肋部即可。注意不能粗野，更不能抓取腰腹部，这样容易造成肝破裂而死亡。2、手固定法：⑴将左手的食指和中指放在豚鼠颈背部两侧，拇指和无名指放在肋部，分别用手指夹住左右前肢抓起来。⑵反转左手，用右手的拇指和食指夹住右后肢，用中指和无名指夹住左后肢是豚鼠整体伸直成一条直线。⑶一个人固定操作时，坐在椅子上，用右手拿着豚鼠的后肢夹在
两腿之间，用大腿代替右手夹住。3、手术固定法：同大、小鼠。（四）、家兔的抓取与固定1、抓取方法：用一只手大把抓住颈背部皮肤提起来，另一只手托住其臀部，让其重心落在托其臀部的手上，运送时，可抓住颈肩部皮肤抱着兔子运送。2、手固定法：在灌胃给药时，人坐在椅子上，用一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住两后肢放在两腿之间，大腿夹住兔子的下半身，用空着的手抓住两前肢固定之，抓住颈背部的手同时捏着两只耳朵，不让头部转动。3、固定器固定法：耳静脉给药或采血时用盒式固定法；从颈动脉采血或手术实验时用此固定法。（1）盒式固定法：把兔子放在盒子里，只露出头部，用转扭拧固定器固定家兔。（2）台式固定法：将麻醉的兔子仰卧，用纱布条依次将四肢捆绑固定于固定台的两侧，然后把头部放在金属制的首枷和咀环上固定。（五）、犬的抓取与固定1、抓取方法：先给犬带上系有铁链条的脖套，对于性情凶猛的犬，要用特制的钳式长柄犬夹夹住犬颈部将犬按倒后，再系脖套和链条。2、手固定法：首先绑住犬嘴，方法是饲养员或犬主人从侧面靠近并轻轻抚摸其颈部皮毛，然后迅速用布带绑住犬嘴，布带从下颌绕到上颌打一个结，再绕到下颌打一个结，然后将布带绕到头后颈，在颈后部再打一个结，最后打一个活结，对于未经驯服的犬，可用长柄犬夹夹住犬颈部按倒后强制绑嘴。3、手术台固定法：麻醉后，松开布带，将犬仰卧在手术台上，先固定四肢，再固定头部。（六）、猫的抓取与固定1、抓取方法：先轻声呼唤，慢慢将手伸入猫笼，轻轻抚摸猫头、颈及背部，然后一只手抓住其背部皮毛，另一只手抓其腰背部。如遇凶暴的猫不让接触时，可用网套抓取。2、固定方法：同兔台式固定法。猫头可用一根粗棉绳，一端拉住猫的两只门齿，另一端捆绑在实验台的铁柱上。（七）、蛙的抓取与固定1、抓取方法：左手将动物背部贴紧手掌固定，以中指、无名指、小指压住其左腹侧和后肢，拇指和食指分别压住左、右前肢，右手操作。注意：不要挤压其耳部两侧突起的毒腺，以免毒液射进眼中。2、固定方法：用探针破坏其脑脊髓或麻醉后用大头针固定在蛙板上。（八）、鸡的抓取与固定1、抓取方法：一只手从鸡的前方，另一只手绕到鸡的背后悄悄接近，两只手迅速将鸡抓住。2、手固定法：把鸡朝向持者方向，以右手的食指与中指夹住鸡的两脚，以左手掌紧握从腹部到翼部的位置。3、手术台固定法：用毛巾将动物裹住固定，放在实验台上。（九）、羊的抓取与固定1、抓取方法：通常只需在羊脖子上带上项圈，用绳牵着，便可抓取。2、固定方法：将羊蹄捆绑，使其侧卧在地，以手固定其头部防止挣扎翻滚；也可以采用特制的羊固定架固定。此种方法常应用于采血。（十）、猪的抓取与固定1、抓取方法：小猪常采用双手提起后肢，两膝夹住猪背倒立固定；成猪可采用站立固定。2、固定方法：可将猪仰放在“V”字型槽内固定，也可用木制三角固定架和帆布吊兜固定（挖四个孔使其四肢下伸）。如没有三脚架，也可以用犬固定台。（十一）、猴的抓取与固定1、抓取方法：从笼内抓取时，饲养人员应右手持短柄网罩，左臂紧靠门侧，以防止笼门敞开时猴逃出。右手将网罩塞入笼内，由上而下罩捕。当猴被罩住后，应立即将网罩翻转取出笼外，罩猴在地，由罩外抓住猴的颈部，清掀网罩，再提取猴的手臂反背握住。2、固定方法：（1）徒手固定：将猴两前肢反背其背后，操作者用一只手握着，用另一只手将猴两后肢捉住即可固定。（2）固定架固定：使用“猴限制椅”或“猴固定架”进行固定。二、实验动物被毛去除法1.拔毛法：在各种动物做后肢皮下静脉注射或采血，特别是兔耳缘静脉注射或采血时常用。动物固定→拇指和食指拔去所需部位毛→涂一层凡士林。2.剪毛法：动物固定→水湿润剪毛部位→将局部皮肤绷紧→用弯头手术剪紧贴皮肤剪毛。3.剃毛法：动物固定→肥皂水浸润剃毛部位→顺被毛方向剃毛（若用电动剃刀则逆被毛方向剃毛）。4.化学脱毛法：常用于大动物无菌手术、局部皮肤刺激性实验、观察动物局部血液循环或其它各种病理变化。⑴方法：动物固定→剪短脱毛部位被毛→用棉球或纱布沾取脱毛剂→在脱毛部位涂成薄层→2~3分钟后用温水洗涤脱下的被毛→干纱布擦干→涂一层油脂。⑵常用脱毛剂：硫化碱、硫化钠、硫化钙、硫化锶、硫化钡、三硫化二砷。⑶配方：Ⅰ、硫化钠:肥皂粉:淀粉=3:1:7加水适量调成膏状。Ⅱ、硫化钠:淀粉:糖:甘油;硼砂:水=8:7:4:5:1:75调成糊状。Ⅲ、
8%的硫化钠溶液以上脱毛剂配方适用于家兔、大鼠、小鼠等小动物脱毛。Ⅳ、硫化碱10g、生石灰15g，加水至100ml，溶解即可。此配方适用于犬等大动物的脱毛。三、实验动物的麻醉（一）、常用的麻醉剂1、挥发性麻醉剂包括乙醚、氯仿等。2、非挥发性麻醉剂包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠、氨基甲酸乙脂、水合氯醛。3、中药麻醉剂包括洋金花、氢溴酸东莨菪碱等。（二）、动物的麻醉方法
1、全身麻醉（1）、吸入麻醉：多采用乙醚做麻醉药。把带有乙醚的棉球放入玻璃容器内，挥发后将动物放入容器内4~6分钟，动物失去运动力后立即取出动物以避免麻醉过深致死。此法多用于短期操作性实验，乙醚麻醉的优点是苏醒快，但是对呼吸道刺激性大，长时间容易窒息死亡。（2）、注射麻醉：大、小鼠和豚鼠常采用腹腔注射法进行全身麻醉，犬、猫、兔等既可腹腔注射也可静脉注射给药。注射时，先用麻醉药总量的2/3，密切观察动物生命体征的变化，如已经达到所需麻醉的程度，余下的麻醉药则不用，避免麻醉过深抑制大脑呼吸中枢导致动物死亡。各种动物常用的全身麻醉剂的剂量及途径注:i.p指腹腔注射,i.m指肌肉注射,s.c指皮下注射,i.v指静脉注射
2、局部麻醉（1）、表面麻醉:利用局部麻醉药的组织穿透作用，透过粘膜，阻滞浅表的神经末梢，称为表面麻醉。常用利多卡因，眼部用药点滴、鼻内用药涂敷、咽喉气管用药喷雾、尿道灌注给药。（2）、区域阻滞麻醉：在手术区内四周和底部注射麻醉药阻断疼痛的向心传导，称为区域阻滞麻醉。常用普鲁卡因。（3）、神经干(丛)阻滞麻醉：在神经干(丛)的四周注射麻醉药，阻滞其传导，使其所支配的区域疼痛感觉消失，称为神经干(丛)阻滞麻醉。常用利多卡因。（4）、局部浸润麻醉：沿手术切口逐层注射局部麻醉药，阻滞组织中的神经末梢，称为局部浸润麻醉。常用普鲁卡因。
3、麻醉注意事项（1）有些麻醉药，如乙醚挥发性很强，易燃，使用时应远离火源，平时应妥善保存。（2）应特别注意各种麻醉药的剂量和给药途径，切莫因药量过大而引起中毒或死亡。（3）注射时，一般要求缓慢注入，并随时观察动物肌肉的紧张性、角膜反射、呼吸频率、疼痛反射等指标。（4）注意保温，采取实验桌内装灯、电褥、台灯照射等。（5）万一麻醉过量，根据不同情况采取措施，如施行人工呼吸、给予苏醒剂或注射强心剂、咖啡因、肾上腺素、可拉明等，也可以静脉注射5%温热的葡萄糖溶液。四、实验动物给药途径与方法（一）、注射法给药3.肌肉注射：一般选择肌肉发达而且无大血管经过的部位，犬、猫、兔多选臀部，大、小鼠多选股部。注射时针尖穿过皮肤后，再往深部刺入肌肉，此时针尖不能自由活动，回抽注射器无回血，即可注射。一般小动物选择5或5.5号针头，大动物选用6或6.5号针头。注意，注射时针头与肌肉成60。角，一次性刺入，小鼠每次注入量不超过0.1ml。4.腹腔注射：将动物固定，然后在左或右下腹皮下，将针头向前推0.5~1.0cm，再以45。角斜穿腹肌，缓慢注入药液。注药之前有落空感，回抽无肠液、尿液后方可注药。小鼠一次注射量为0.1~0.2ml/10g(体重)，大鼠为1~2ml/100(体重)。5.静脉注射：实验动物不同所选静脉注射部位也不同。大、小鼠一般选用尾静脉，兔选用耳缘静脉，犬选用后肢小隐静脉或前肢内侧皮下静脉注射。一般只限于液体药物，若是悬浊液，可能引起血管栓塞。⑴大、小鼠尾静脉注射：尾静脉有3条，左右两侧和背侧各有1条，由于两侧静脉比较容易固定，所以常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内（烧杯等），除毛后，将尾部置于45℃~50℃的温水中浸泡1~2分钟或用75%酒精棉反复擦拭使血管扩张，以左手拇指和食指捏住尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针，完毕后把尾部向注射侧弯曲止血。一次注射量为0.05~0.1mg/10g(体重)⑵兔耳缘静脉注射：兔耳缘静脉表浅易固定而常被采用。操作时，先固定兔子，而后用75%酒精棉球反复擦拭使血管充盈，左手食指、中指夹住静脉近心端，拇指绷紧静脉远心端，无名指和小指垫在耳下边，针从静脉末端刺入并顺血管方向平行刺入1cm左右，回抽有血后再用拇指固定针头，放开食指和中指将药液注入，拔针后用酒精棉球压迫几分钟，防止流血和消毒。⑶犬的静脉注射：多采用前肢内侧皮下静脉或后肢小隐静脉，在静脉血管近心端用橡皮带扎紧，使血管充盈，从静脉的远心端平行进针，回抽有血后松开
橡皮带，将药液缓慢注入。⑷豚鼠的静脉注射：同犬的静脉注射方法，也可以象兔一样采用耳缘静脉注射。6.淋巴囊注射：主要用于蛙类。腹部淋巴囊和头背部淋巴囊常作为蛙类给药途径。采用腹部淋巴囊给药时，将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，然后注入药物；采用胸淋巴囊给药时，将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入胸淋巴囊内注射药物，一次最大给药剂量为1ml。蛙全身分布为咽、胸、背、腹侧、腹、大腿和脚等七个淋巴囊。
（二）、经口给药法1.自动口服法：将药物放入饲料或饮水中，让动物自动摄入，方法简单不费工夫，也不会给动物造成损伤。但很难掌握给药量，有时药物在常温下还会分解。这种方法一般适用于动物疾病的防治、药物的毒性观察、某些与食物有关的人类疾病动物模型的复制等。2.强制灌胃给药：就是用灌胃器将药品直接强制灌入胃内。这种方法能准确掌握给药量、给药时间，并能发现和记录症状出现的时间及经过。缺点是费时、同时给动物带来一定的损伤和心理影响。因此，如果操作技术熟练对动物的不良影响就可以减少一些。⑴大、小鼠、豚鼠的灌胃法：左手抓住鼠背颈部皮毛将动物固定，右手持灌胃器，将灌胃针从口腔插入，沿咽后壁插入食道，使其前端达到膈肌水平，为防止插入气管，应回抽注射器针栓，如无空气被抽回，即可将药液注入。小鼠进针约3~4cm、大鼠、豚鼠为4~6cm，常用灌胃量小鼠为0.2~1.0ml、大鼠为1~4ml、豚鼠为1~5ml。⑵兔、犬、猫的灌胃法：先固定动物，然后将开口器固定在动物口中，压住舌头，然后将灌胃管从开口器小孔插入食道，将另一端浸入水中，如有气泡逸出，说明误入气管需拔出重插，插好后将药液推入，为避免药液残留需再注入5ml生理盐水。兔、猫插入为15cm左右，犬为20cm左右。一次耐受量兔为80~150ml，犬为200~500ml。各种动物一次灌胃能耐受的最大容积（三）、其他途径给药法⒈直肠给药：多用于家兔，将药物通过肛门直接注入动物直肠内，经直肠壁吸收，注意不要误入阴道。⒉呼吸道给药：以粉尘、气体、蒸汽、雾等状态存在的药物或毒气，均通过动物呼吸道给药。
⒊皮肤给药：为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等，均采用皮肤给药。⒋脊髓腔内给药：此法主要用于椎管麻醉或抽取脑脊液。⒌关节腔内给药：主要用于大中型动物，给兔子注射时首先将兔仰卧固定，在膑韧带附着点外上方约0.5cm处进针，针头从前上方向下后方倾斜刺入，直至针头遇到阻力变小为止，然后针头稍后退，以垂直方向推进关节腔中。当有刺破薄膜的感觉时即可注入药液。⒍脑内给药：常用于微生物学试验。将病原体接种于被检动物脑内，然后观察接种后的变化。⒎小脑延髓池给药：此种给药方法都是在动物麻醉情况下进行，而且常用于大动物如犬等，小动物很少采用。四、实验动物用药量及计算方法㈠给药剂量的确定⒈先用小鼠粗略地摸索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般取1/10~1/5。⒉植物药粗制剂的剂量多按生药量折算。⒊化学药品可参考化学结构和作用都相似的药物剂量。⒋一般情况下，在适宜的剂量范围内，药物的作用常随剂量的加大而增强。所以有条件时，最好同时用几个剂量作实验，以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时，则更应慎重分析。⒌用大动物进行实验时，开始的剂量可采用用于鼠类剂量的2/5~1/2，以后可以根据动物的反应调整剂量。⒍根据动物的年龄大小和体质强弱确定给药剂量，一般说确定的给药剂量是指成年动物的；如幼小动物，剂量应减少。如以狗为例：6个月以上的给药量为1份时，3~6个月的狗给1/2份，45~89日龄给1/4份，20~44日龄给1/8份，10~19日龄给1/16份。⒎根据给药途径不同确定给药剂量，如以口服量为100ml时，灌肠给药量为100~200ml，皮下注射为30~50ml，肌肉注射为25~30ml，静脉注射为25ml。㈡实验动物间用药量的计算方法动物实验所用的药物剂量，一般按mg/kg体重或g/kg体重计算，应用时须用已知药液的浓度换算出相当于每kg体重应注射的药液量(ml)，以便给药。㈢人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法dB=dA×ＲＢ/ＲA×(WA/WB)1/3公式中:dA、dB是AB两种动物kg体重的剂量(mg/kg)ＲA、ＲＢ是动物的体形系数。R可
由表查到。WA、WB是动物体重五、实验动物采血和采液方法（一）、采血（3）眼眶静脉丛采血：左手拇指、食指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部（防止动物窒息），轻轻压迫动物颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持接7号针头的1ml注射器或长颈（3~4cm）硬质玻璃滴管（毛细管内径0.5~1.0mm），使采血器与鼠面成45°夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180°使斜面对着眼眶后界。刺入深度小鼠约2~3mm，大鼠约4~5mm。当有阻力时即停止推进，同时将针退出约0.1~0.5mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管内，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时将采血器拔出，防止术后穿刺口出血。体重20~25g的小鼠每次可采血0.2~0.3ml；体重200~300g大鼠每次可以采血0.5~1.0ml。（4）心脏采血：小鼠心脏小、心率快，采血困难；大鼠可以采用此法，仰卧固定，选择心跳最明显的部位，通常在胸骨左缘的正中作穿刺。（5）断头采血：左手拇指和食指以背部较紧地握住鼠颈部皮肤，并使动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2~4/5的颈部全剪断，让血液自由滴入盛器。小鼠可采约0.8~1.2ml；大鼠约5~10ml。（6）颈动、静脉采血：动物仰卧固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，充分暴露颈动、静脉用注射器吸出血液。（7）腹主动脉采血：动物麻醉、仰卧固定，腹正中线切开腹腔，清晰暴露腹主动脉，用注射器吸出血液。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀剪断动脉，使血液喷入盛器。（8）股动（静）脉采血：由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈；或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。体重15~20g小鼠采血约0.2~0.8ml，大鼠约0.4~0.6ml。2、豚鼠采血法（1）耳缘剪口采血:用锐器割破耳缘，在切口边缘涂抹20%柠檬酸钠溶液以阻止血凝，血可自切口自动流出。可采血0.5ml左右。（2）心脏采血：选择心跳最明显的部位，通常在胸骨左缘的正中作穿刺。在第三、四肋间左缘3mm处垂直进针刺入心脏，血液即流入针管。成年豚鼠每周采血不超过10ml。（3）股动脉采血：动物仰卧固定，剪去腹股沟区的毛，麻醉后，局部碘酒消毒。切开长约2~3cm 的皮肤暴露股动脉。用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一个小孔。用无菌玻璃小导管或塑料管插入，放开止血钳，血液由导管口流出。一次可采血10~20ml。（4）背中足静脉采血：固定动物，将膝关节伸直，动物脚背面酒精消毒，找到背中足静脉，以左手的拇指和食指拉住其趾端，右手刺入静脉采血。3、兔采血法（1）耳静脉采血：常用采血法之一，可反复取血。方法同耳静脉给药，但需逆血流方向进针，最多一次采血5~10ml。（2）耳中央动脉采血：盒式固定，左手固定兔耳，右手持注射器，在动脉的末端，沿动脉平行向心方向刺入，取血完毕后注意止血。一次可达15ml。（3）心脏采血：仰卧固定，在第三、四肋间左缘3mm处垂直进针刺入心脏，血液即流入针管。一次取血20~25ml。（4）后肢胫部皮下静脉采血：仰卧固定，拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎橡皮管，左手固定好静脉，右手持注射器与皮下静脉平行方向刺入血管，回抽有血后即可取血。一次可以取2~5ml。（5）股静脉、颈静脉采血：先作股静脉和颈静脉暴露分离手术，再采血。实验动物的血液采集采血部位及采血量（二）、实验动物的体液采集1.尿液的采集⑴代谢笼法：此法较常用，适用于大、小鼠、沙鼠、豚鼠、兔等中小动物。将动物放在特制的笼内，动物排便时，可以通过笼底的大小便分离漏斗将尿液与粪便分开，达到采集尿液的目的。有的代谢笼除可以采集尿液外，还可以收集粪便及二氧化碳。⑵导尿管法：此法适用于雄性兔、犬。动物轻度麻醉后，固定于手术台上，用导尿管（顶端用液体石蜡涂抹）经尿道插入膀胱，可采到无污染的尿液。⑶压迫膀胱法：将动物轻度麻醉后，用手在动物下腹部加压，手要轻柔而有力。当外加的压力足以使动物膀胱括约肌松弛时，尿液会自动由尿道排出。此法适用于猫、犬、兔等较大动物。⑷膀胱穿刺法：将动物麻醉后固定在手术台上，在耻骨联合上腹正中线剪毛，消毒后进行穿刺，入皮后针头应稍改变角度，以避免穿刺后漏尿。⑸反射排尿法：此法适用于小鼠，因小鼠被人抓住尾巴提起时排便反射比较明显，故需要采集少量尿液时，可采用此法。操作者应在提起动物的同时，迅速用容器接住尿液。⑹剖腹采尿法：剖腹
暴露膀胱，用左手持小平镊夹住小部分膀胱壁，右手持针在该部位直接穿刺抽取尿液。2.胸、腹水的采集⑴胸水的采集：主要采用胸膜腔穿刺术。动物立位或侧卧固定→术部剪毛、消毒、局部浸润麻醉→左手将术部皮肤向侧方移动→右手持穿刺套管针沿紧靠肋骨前缘处皮肤垂直慢慢刺入→阻力消失或有落空感→抽取胸水⑵腹水的采集：主要采用腹膜腔穿刺术。动物自然站立固定→术部（耻骨前缘与脐之间，腹中线两侧）剪毛、消毒、局部浸润麻醉→左手拇指、食指紧绷穿刺部位的皮肤→右手控制穿刺深度做垂直穿刺→腹水流出→立即固定针头及注射器的位置连续抽吸注意：抽吸速度不要太快，腹水多时不要一次大量抽出，以免因腹压突然下降导致动物出现循环功能障碍等问题。3.唾液的采集⑴直接抽吸法：在急性实验中，可用吸管直接插入动物口腔或唾液腺导管抽吸唾液，不足在于从口腔抽吸的唾液会混入杂质。⑵制备腮腺瘘法：用手术方法将腮腺导管开口移向体外，即以腮腺导管开口为中心，切成一直径2~3cm的圆形粘膜片，将此粘膜片与周围组织分开，穿过皮肤切口引到颊外，将带有导管开口的粘膜片与周围的皮肤缝合，腮腺分泌的唾液就流出颊外，这种方法可以收集到比较纯净的唾液。四、实验动物的急救及处死方法（一）、实验动物的急救措施（二）、实验动物的处死方法（一）、实验动物的急救措施当实验进行中因麻醉过量、大失血、过强的创伤、窒息等各种原因，而使动物血压下降甚至测不到。呼吸极慢或无规则甚至呼吸停止、角膜反射消失等临床死亡症状时，应立即急救，急救的方法可根据动物的情况而定，对狗、兔、猫常用的急救措施有以下几种。1、针刺针刺人中穴对挽救家兔效果较好；对狗用每分钟几百次频率的脉冲电刺激膈神经效果较好。2、注射强心剂可以静脉注射0.1%肾上腺素1ml（增强心肌收缩力），必要时可直接心脏注射。当动物注射肾上腺素后，若心脏已经搏动但极为无力时，可静脉或心腔内注射1%氯化钙5ml(兴奋心肌紧张力）。3、注射呼吸中枢兴奋药可静脉注射尼可刹米(兴奋延髓呼吸中心）或山梗菜碱（颈动脉化学感应器)。每只动物一次注25%尼可刹米1ml或1%山梗菜碱0.5ml。4、动脉快速注射高渗葡萄糖液一般常采用动物股动脉逆血流加压、快速、冲击式注入40%葡萄糖液。注射量根据动物而定，如狗可按2~3ml/kg体重计算。这样可刺激动物血管内感受器，反射性地引起血压呼吸的改善。5、动脉快速输血、输液在作失血性休克或死亡复活等实验时采用。可在动物的股动脉插一软塑料套管，连接加压输液装置。当动物发生临床死亡时，即可加（180~200mmHg），快速从股动脉输血和输入低分子右旋糖酐。如实验前动物曾用肝素抗凝，由于微循环血管中始终保持畅通，不出现血管中血液凝固现象，因此就是动物出现临床死亡后数分钟，采用此种急救措施仍易救活。6、人工呼吸可采用双手压迫动物胸廓进行人工呼吸，如有电动人工呼吸器，可行气管分离插管后，再接人工呼吸器进行人工呼吸。一旦见到动物自主呼吸恢复，即可停止人工呼吸。有条件时，当动物呼吸停止，而心搏极弱或刚停止时，可用5%CO2和60%O2的混合气体进行人工呼吸，效果更好。采用人工呼吸器时，应调整其容量：大鼠为50次/分钟，每次8ml/kg（即400ml/kg/分钟）；兔和猫为30次/分钟，每次10ml/kg（即300ml/kg/分钟）；犬为20次/分钟，每次100ml/kg（即2000ml/kg/分钟）（二）、实验动物的处死方法处死实验动物应遵循动物安乐死的基本原则，即尽可能缩短动物死亡时间，尽量减少其疼痛、痛苦。1、化学致死法此法适用于各种动物，可吸入二氧化碳、乙醚、氯仿等致死。因乙醚易引起火灾，氯仿对人有较大毒性。而二氧化碳对人很安全，处死动物效果确切，故最好使用二氧化碳。也可静脉注射一定量的氯化钾溶液（心肌失去收缩力）、福尔马林溶液（蛋白凝固）、士的宁、DDT致死。2、脊椎脱臼法大、小鼠常用。将动物放在鼠笼盖或粗糙的表面上，用左手拇指与食指用力按住鼠头，右手抓住鼠用力向后上方拉，使颈椎脱臼，鼠立即死亡。3、空气栓塞法此法适用于犬、猫、兔、豚鼠等较大动物。向动物静脉内注入一定量的空气，使之发生栓塞而死。一般兔、猫等静脉内注入20~40ml空气即可致死。每条犬由前肢或后肢皮下静脉注入80~150ml空气，可很快致死。此法常出现动物长时间挣扎，从动物保护的角度出发，不提倡使用。4、急性失血法小鼠等小动物可采用颈总动脉大量失血而
致死的方法。犬等大型动物先麻醉后放血，要使放血的切口保持通畅，一般在股三角区横切约10cm的切口，切断股静、动脉，使之大量失血而死亡。采用此方法，动物十分安静，对脏器无损伤，对活杀采集病理切片标本是一种较好的方法。5、击打法此法适用于大鼠、家兔等。抓住动物尾部，提起，用力摔击其头部，或用小木锤用力击打后脑部也可致死。6、断头法此法适用于大、小鼠等小型动物，具体方法与断头采血法相同。7、破坏脑脊髓法此法适用于蛙类。8、其他方法其他处死实验动物的方法还有破坏延脑法、开放性气胸法等。第四节影响动物实验的因素实验动物对动物实验处理的反应可用如下的公式表示：R=（A+B+C）×D±E其中：R为实验动物的总反应或演出型；A为动物种间的共同反应；B 为动物品种、品系特有的反应；C为动物个体反应；D为环境因素（包括实验处理）；E为实验误差。可以看出A、B、C是实验动物的本身反应，是由遗传因素起决定性作用，被选择的实验动物，在严格控制环境因素D或改变其中某一条件后就可能得到一个理想的实验结果R。一、生物因素对动物实验的影响生物因素涉及同种生物因素和异种生物因素等。1、实验动物也存在社会地位和势力范围；2、实验动物要有一定的活动面积和空间，要有合理的饲养密度。3、异种动物之间可产生相互影响，因此不同种、品系的动物应分室饲养。4、病原微生物对实验动物的影响是明显的。普通动物、SPF动物和无菌动物特点的比较二、遗传因素对动物实验的影响1、不同种属的哺乳动物，其生命过程有一定的共性，这是科学实验中可以应用实验动物的基础。但另一方面不同种属的动物在解剖、生理生化特征和各种反应上又有个性。如犬、猫、猴对呕吐反应敏感，兔、豚鼠不敏感，大小鼠无反应。2、同种属不同品系的动物对同一刺激的反应有很大的差异。C3H小鼠乳腺癌97%，NOD易发糖尿病，C57BL低癌系。3、动物的解剖生理特征和反应性随年龄而明显变化，老年动物代谢能力低下，反应不灵敏，一般动物实验应选成年动物进行。慢性实验或观察动物的生长发育，应选择幼龄动物。在老年医学研究中，应选用老龄动物。论文设计要保证在动物生命周期内完成。4、不同品种和品系的实验动物的寿命各不相同，所以选用实验动物时应注意到实验动物之间年龄的对应，以便进行分析比较。犬与人的年龄对应（年）5、不同性别的动物对同一药物的敏感性不同，对同一刺激的反应也不一致。雌性动物在性周期的不同时期，怀孕和授乳时，机体的反应性差异很大。因此科研工作中一般选雄性动物或雌雄各半作实验。三、环境因素对实验动物的影响影响动物实验的环境因素很多，主要有温度、湿度、通风、光照、噪音、有害气体、笼具和垫料等，按国家或行业标准加以控制。1、应在标准的实验室中进行实验。特别在进行毒性实验时，室温应设定在22~24℃。用大、小鼠所作的急性毒性实验中，在不同的温度下所作的LD50有所不同，见下表：不同室温下几种药物对小鼠的半数致死量2、实验结果表明麻醉或固定后动物体温将下降，动物实验中应特别注意动物正常体温的维持。3、动物的许多机能，如体温、血糖、基础代谢率、各种内分泌激素的水平都呈昼夜性的节律性变化，动物实验时应注意动物的这些节律性变化，应选择在同样的季节，每日在同样的时间进行，才能得到正确的实验结果。四、实验操作对动物实验的影响1、动物实验要求按照实验室操作规范（GLP）和标准的操作程序（SOP）严格执行。这些法规对实验动物、实验室条件、工作人员素质、技术水平和操作方法都有明确的要求。2、实验动物的精神、神经因素对实验研究有影响。当动物遭受虐待、创伤、粗暴对待等外部刺激时，其内分泌系统、循环系统、机体代谢都与正常时不同。应养成日常善待动物，并熟练掌握捉拿、固定、注射、给药、手术等技能，减少对动物的不良刺激。3、给药途径也是影响实验的重要问题。如有些药品在胃内被破坏或在肝内分解，经口服给药就会影响其效果。有些中药制剂经静脉注射和口服其疗效相差很大。有些药的效果与给药次数和浓度关系很大，动物和人的用药剂量的换算也应准确。4、动物实验后对动物的管理也非常重要，应特别保证动物的有足够量的营养供给。营养缺乏或过剩都会影响实验结果。5、在动物实验中对照问题也很重要，对照的方法很多，有空白对照、实验对照、有效对照、配对对照等。6、肯定一个结
果最好采用两种以上的动物进行比较观察，其中之一不应是啮齿类动物。常用选择顺序是小鼠、大鼠、犬、猴或小型猪。猴、犬、大鼠与人在药物代谢方面的相似性比较五、实验技术环节对动物实验的影响1、动物选择选择好适合研究需要的实验动物是获得正确实验结果和实验成功的重要环节。按照不同的实验要求选择合适的实验动物。2、实验季节生物体的许多功能随着季节产生规律性的变动。不同的实验季节，动物的机体反应性有一定的改变。3、昼夜过程机体的有些功能有昼夜规律形变动。4、麻醉深度动物实验中往往需要将动物麻醉后才能进行各种操作。要求麻醉深度要适度，而且在整个实验过程中要保持始终恒定。5、手术技巧动物实验中除了注意选择合适的实验动物，高纯度的试剂，灵敏的仪器，方法准确外，还必须注意手术技巧，即操作技术的熟练。手术熟练可以减少对动物的刺激，将会提高实验的成功率和实验结果的准确性。6、实验药物（1）动物实验中常常需要给动物体内注入各种药物以观察其作用和变化。因此给药的途径、剂量是影响实验中很重要的问题。（2）给药次数对一些药物的药效也有影响。（3）药物的浓度和剂量也是一个重要的问题，太高的浓度，太大的剂量都会出现错误的结果。（4）在动物实验中常遇到的问题是动物和人用药剂量的换算。动物和人用药的剂量的换算以体表面积计算比以体重换算好一些，但仍需慎重处理。
7、对照问题动物实验中对照问题也是非常重要的，常有忽视或错误地应用对照的情况，从而造成实验失败。一般对照的原则“齐同对比”。对照的方法很多，有空白对照、实验对照、有效（或标准）对照、配对对照、组间对照、历史对照以及正常值对照等。（1）空白对照是指在不给任何处理情况下观察动物的自发变化的规律。（2）实验对照是采用与实验相同操作条件的对照，如给药实验中的药物溶剂、手术以及观察抚摸等都可以对动物发生影响。（3）有效（或标准）对照常用于药物研究。对一新药的疗效可用一已知的有效药或能引起标准反应的药物作对照，这样既可考核实验方法的可靠性，又可通过比较来了解新药的疗效和特点。
(4)配对对照是同一个体在前后不同时间内比较对照期和实验期的差异，或同一个体的左右两部分作对照处理和实验处理的差异，这样可大大减少抽样误差。（5）组间对照是将实验对象分成两组或几组比较差异。这种对照个体差异和抽样误差比较大。组间可用交叉对照法以减少误差。如观察某药物的疗效可用两组犬分别做一次实验和对照，再互相交换，以原实验作为对照组，原对照组作为实验组重复第一次实验所观察的疗效或影响，而且检查的指标和条件要等同。（6）历史对照和正常值对照，这种对照要十分谨慎，必须要条件、背景、指标、技术方法相同才可以进行对比，否则将会得出不恰当的甚至错误的结论。（7）实验的重复和肯定选用动物一方面要数量合适，不造成浪费，另一方面也应做必要的重复实验。有些实验单做一种动物还不够，应当重复几种动物。这不仅可以比较不同动物的差异，而且可以在不同的动物实验中发现新问题，提供使用不同指标的线索。
动物实验技术三、分类：1.按机体水平：整体实验和离体实验。具体分为亚细胞、细胞、组织、器官、整体动物和无损伤动物等水平的实验。2.时间：急性实验（2天以内）、亚急性实验（1~4周）、慢性实验（2~6个月或更长时间甚至整个生命期）四、方法：生理学、病理生理学、药理学、病理解剖学、组织学、微生物学、免疫学的动物实验方法等等。第二节动物实验前的准备（二）实验单位随机分为三组分组情况（二）耳缘剪孔法：是在动物的耳边缘剪出不同的缺口或打成不同的小孔进行标记的方法。为防止孔、口愈合，一般在打孔后用消毒的滑石粉涂抹在孔、口局部。由打孔或剪切的位置和孔数代表编号，一般在耳内按上、中、下打孔，分别代表1、2、3，在相应位置剪缺口代表4、5、6，剪两个缺口代表7、8、9，无孔或缺口为10。本法规定右耳代表个位数、左耳代表十位数。（三）烙印法：用烙印钳将号码烙印在犬等大中型动物无体毛或明显部位。大、小鼠等小动物可用刺针在动物耳上刺号，然后用棉签蘸着溶在酒精中的黑墨在针刺处涂抹。烙印前,最好对烙印的部位预先用酒精消毒，操作时要注意防止感染。（四）号牌法：用特制的金属号牌固定在实验动物的耳上，大动物可系于颈项部，固定号牌时要注意避开血管。（五）笼子编号法：不在动物身体
上作标记而把装动物的笼子进行编号，也叫替代法。第三节动物实验的基本操作一、实验动物的抓取与固定二、实验动物被毛去除法三、实验动物的麻醉四、实验动物给药途径与方法五、实验动物采血和采液方法3、手术固定法：用乙醚等麻醉药品麻醉后，用长20~30cm的线绳分别系在四肢上，再把系在四肢的线绳分别系在固定板四角的钉子上，并且在头部上颚切齿的地方牵一根线绳达到完全固定。4、在尾静脉给药时，先根据小鼠的大小选择合适的固定器，打开鼠筒盖，把小鼠放在里面，只露出尾巴；或者用倒放的烧杯将鼠扣住，尾巴自烧杯凹口处露出，并压住，即可进行操作。（二）、大鼠的抓取与固定1、抓取方法：4~5周龄以内的大鼠同小鼠；周龄较大的大鼠其尾部皮肤容易被剥脱，所以用左手从背部中央到胸部捏起来抓住。抓取时最好带防护手套，但手套不宜过厚。2、手固定法：抓取大鼠的方法类似小鼠，即用左手的拇指、食指和中指抓住颈背部皮肤，小指和无名指挟住尾部牢牢固定；或左手按住抓起大鼠的时候，把食指放在颈背部，拇指及其他三指放在肋部，食指和中指挟住左前肢，分开两前肢带起来，右手按住后肢固定；还有一种方法，张开虎口，迅速将拇指、食指插入腹下，虎口向前，其余三指及掌心握住大鼠身体中段，并保持仰卧体位，然后调整左手拇指位置，紧抵在下颌骨上进行实验操作。3、手术固定法：同小鼠。4、尾静脉给药或采血时同小鼠。（三）、豚鼠的抓取与固定1、抓取方法：抓取幼小豚鼠时，用手捧起来；成熟的大豚鼠，用手大把抓起胸肋部即可。注意不能粗野，更不能抓取腰腹部，这样容易造成肝破裂而死亡。2、手固定法：⑴将左手的食指和中指放在豚鼠颈背部两侧，拇指和无名指放在肋部，分别用手指夹住左右前肢抓起来。⑵反转左手，用右手的拇指和食指夹住右后肢，用中指和无名指夹住左后肢是豚鼠整体伸直成一条直线。⑶一个人固定操作时，坐在椅子上，用右手拿着豚鼠的后肢夹在两腿之间，用大腿代替右手夹住。3、手术固定法：同大、小鼠。（四）、家兔的抓取与固定1、抓取方法：用一只手大把抓住颈背部皮肤提起来，另一只手托住其臀部，让其重心落在托其臀部的手上，运送时，可抓住颈肩部皮肤抱着兔子运送。2、手固定法：在灌胃给药时，人坐在椅子上，用一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住两后肢放在两腿之间，大腿夹住兔子的下半身，用空着的手抓住两前肢固定之，抓住颈背部的手同时捏着两只耳朵，不让头部转动。3、固定器固定法：耳静脉给药或采血时用盒式固定法；从颈动脉采血或手术实验时用此固定法。（1）盒式固定法：把兔子放在盒子里，只露出头部，用转扭拧固定器固定家兔。（2）台式固定法：将麻醉的兔子仰卧，用纱布条依次将四肢捆绑固定于固定台的两侧，然后把头部放在金属制的首枷和咀环上固定。（五）、犬的抓取与固定1、抓取方法：先给犬带上系有铁链条的脖套，对于性情凶猛的犬，要用特制的钳式长柄犬夹夹住犬颈部将犬按倒后，再系脖套和链条。2、手固定法：首先绑住犬嘴，方法是饲养员或犬主人从侧面靠近并轻轻抚摸其颈部皮毛，然后迅速用布带绑住犬嘴，布带从下颌绕到上颌打一个结，再绕到下颌打一个结，然后将布带绕到头后颈，在颈后部再打一个结，最后打一个活结，对于未经驯服的犬，可用长柄犬夹夹住犬颈部按倒后强制绑嘴。3、手术台固定法：麻醉后，松开布带，将犬仰卧在手术台上，先固定四肢，再固定头部。（六）、猫的抓取与固定1、抓取方法：先轻声呼唤，慢慢将手伸入猫笼，轻轻抚摸猫头、颈及背部，然后一只手抓住其背部皮毛，另一只手抓其腰背部。如遇凶暴的猫不让接触时，可用网套抓取。2、固定方法：同兔台式固定法。猫头可用一根粗棉绳，一端拉住猫的两只门齿，另一端捆绑在实验台的铁柱上。（七）、蛙的抓取与固定1、抓取方法：左手将动物背部贴紧手掌固定，以中指、无名指、小指压住其左腹侧和后肢，拇指和食指分别压住左、右前肢，右手操作。注意：不要挤压其耳部两侧突起的毒腺，以免毒液射进眼中。2、固定方法：用探针破坏其脑脊髓或麻醉后用大头针固定在蛙板上。（八）、鸡的抓取与固定1、抓取方法：一只手从鸡的前方，另一只手绕到鸡的背后悄悄接近，两只手迅速将鸡抓住。2、手固定法：把鸡朝向持者方向，以右手的食指与中指夹住鸡的两脚，以左手掌紧握从腹部到翼部的位置。3、手术台固定法：用毛巾将动物裹住固定，放在实验台上。（九）、羊的抓取与固定1、抓取方法：
通常只需在羊脖子上带上项圈，用绳牵着，便可抓取。2、固定方法：将羊蹄捆绑，使其侧卧在地，以手固定其头部防止挣扎翻滚；也可以采用特制的羊固定架固定。此种方法常应用于采血。（十）、猪的抓取与固定1、抓取方法：小猪常采用双手提起后肢，两膝夹住猪背倒立固定；成猪可采用站立固定。2、固定方法：可将猪仰放在“V”字型槽内固定，也可用木制三角固定架和帆布吊兜固定（挖四个孔使其四肢下伸）。如没有三脚架，也可以用犬固定台。（十一）、猴的抓取与固定1、抓取方法：从笼内抓取时，饲养人员应右手持短柄网罩，左臂紧靠门侧，以防止笼门敞开时猴逃出。右手将网罩塞入笼内，由上而下罩捕。当猴被罩住后，应立即将网罩翻转取出笼外，罩猴在地，由罩外抓住猴的颈部，清掀网罩，再提取猴的手臂反背握住。2、固定方法：（1）徒手固定：将猴两前肢反背其背后，操作者用一只手握着，用另一只手将猴两后肢捉住即可固定。（2）固定架固定：使用“猴限制椅”或“猴固定架”进行固定。二、实验动物被毛去除法1.拔毛法：在各种动物做后肢皮下静脉注射或采血，特别是兔耳缘静脉注射或采血时常用。动物固定→拇指和食指拔去所需部位毛→涂一层凡士林。2.剪毛法：动物固定→水湿润剪毛部位→将局部皮肤绷紧→用弯头手术剪紧贴皮肤剪毛。
3.剃毛法：动物固定→肥皂水浸润剃毛部位→顺被毛方向剃毛（若用电动剃刀则逆被毛方向剃毛）。
4.化学脱毛法：常用于大动物无菌手术、局部皮肤刺激性实验、观察动物局部血液循环或其它各种病理变化。⑴方法：动物固定→剪短脱毛部位被毛→用棉球或纱布沾取脱毛剂→在脱毛部位涂成薄层→2~3分钟后用温水洗涤脱下的被毛→干纱布擦干→涂一层油脂。
⑵常用脱毛剂：硫化碱、硫化钠、硫化钙、硫化锶、硫化钡、三硫化二砷。⑶配方：Ⅰ、硫化钠:肥皂粉:淀粉=3:1:7加水适量调成膏状。Ⅱ、硫化钠:淀粉:糖:甘油;硼砂:水=8:7:4:5:1:75调成糊状。Ⅲ、8%的硫化钠溶液以上脱毛剂配方适用于家兔、大鼠、小鼠等小动物脱毛。Ⅳ、硫化碱10g、生石灰15g，加水至100ml，溶解即可。此配方适用于犬等大动物的脱毛。
三、实验动物的麻醉（一）、常用的麻醉剂1、挥发性麻醉剂包括乙醚、氯仿等。2、非挥发性麻醉剂包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠、氨基甲酸乙脂、水合氯醛。3、中药麻醉剂包括洋金花、氢溴酸东莨菪碱等。（二）、动物的麻醉方法
1、全身麻醉（1）、吸入麻醉：多采用乙醚做麻醉药。把带有乙醚的棉球放入玻璃容器内，挥发后将动物放入容器内4~6分钟，动物失去运动力后立即取出动物以避免麻醉过深致死。此法多用于短期操作性实验，乙醚麻醉的优点是苏醒快，但是对呼吸道刺激性大，长时间容易窒息死亡。（2）、注射麻醉：大、小鼠和豚鼠常采用腹腔注射法进行全身麻醉，犬、猫、兔等既可腹腔注射也可静脉注射给药。注射时，先用麻醉药总量的2/3，密切观察动物生命体征的变化，如已经达到所需麻醉的程度，余下的麻醉药则不用，避免麻醉过深抑制大脑呼吸中枢导致动物死亡。各种动物常用的全身麻醉剂的剂量及途径注:i.p指腹腔注射,i.m指肌肉注射,s.c指皮下注射,i.v指静脉注射
2、局部麻醉（1）、表面麻醉:利用局部麻醉药的组织穿透作用，透过粘膜，阻滞浅表的神经末梢，称为表面麻醉。常用利多卡因，眼部用药点滴、鼻内用药涂敷、咽喉气管用药喷雾、尿道灌注给药。（2）、区域阻滞麻醉：在手术区内四周和底部注射麻醉药阻断疼痛的向心传导，称为区域阻滞麻醉。常用普鲁卡因。（3）、神经干(丛)阻滞麻醉：在神经干(丛)的四周注射麻醉药，阻滞其传导，使其所支配的区域疼痛感觉消失，称为神经干(丛)阻滞麻醉。常用利多卡因。（4）、局部浸润麻醉：沿手术切口逐层注射局部麻醉药，阻滞组织中的神经末梢，称为局部浸润麻醉。常用普鲁卡因。
3、麻醉注意事项（1）有些麻醉药，如乙醚挥发性很强，易燃，使用时应远离火源，平时应妥善保存。（2）应特别注意各种麻醉药的剂量和给药途径，切莫因药量过大而引起中毒或死亡。（3）注射时，一般要求缓慢注入，并随时观察动物肌肉的紧张性、角膜反射、呼吸频率、疼痛反射等指标。（4）注意保温，采取实验桌内装灯、电褥、台灯照射等。（5）万一麻醉过量，根据不同情况采取措施，如施行人工呼吸、给予苏醒剂或注射强心剂、咖啡因、肾上腺素、可拉明等，也可以静脉注射5%温热的葡萄糖溶液。四、实验动物给药途径与方法（一）、注射法给药3.肌肉
注射：一般选择肌肉发达而且无大血管经过的部位，犬、猫、兔多选臀部，大、小鼠多选股部。注射时针尖穿过皮肤后，再往深部刺入肌肉，此时针尖不能自由活动，回抽注射器无回血，即可注射。一般小动物选择5或5.5号针头，大动物选用6或6.5号针头。注意，注射时针头与肌肉成60。角，一次性刺入，小鼠每次注入量不超过0.1ml。4.腹腔注射：将动物固定，然后在左或右下腹皮下，将针头向前推0.5~1.0cm，再以45。角斜穿腹肌，缓慢注入药液。注药之前有落空感，回抽无肠液、尿液后方可注药。小鼠一次注射量为0.1~0.2ml/10g(体重)，大鼠为1~2ml/100(体重)。5.静脉注射：实验动物不同所选静脉注射部位也不同。大、小鼠一般选用尾静脉，兔选用耳缘静脉，犬选用后肢小隐静脉或前肢内侧皮下静脉注射。一般只限于液体药物，若是悬浊液，可能引起血管栓塞。⑴大、小鼠尾静脉注射：尾静脉有3条，左右两侧和背侧各有1条，由于两侧静脉比较容易固定，所以常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内（烧杯等），除毛后，将尾部置于45℃~50℃的温水中浸泡1~2分钟或用75%酒精棉反复擦拭使血管扩张，以左手拇指和食指捏住尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针，完毕后把尾部向注射侧弯曲止血。一次注射量为0.05~0.1mg/10g(体重)⑵兔耳缘静脉注射：兔耳缘静脉表浅易固定而常被采用。操作时，先固定兔子，而后用75%酒精棉球反复擦拭使血管充盈，左手食指、中指夹住静脉近心端，拇指绷紧静脉远心端，无名指和小指垫在耳下边，针从静脉末端刺入并顺血管方向平行刺入1cm左右，回抽有血后再用拇指固定针头，放开食指和中指将药液注入，拔针后用酒精棉球压迫几分钟，防止流血和消毒。⑶犬的静脉注射：多采用前肢内侧皮下静脉或后肢小隐静脉，在静脉血管近心端用橡皮带扎紧，使血管充盈，从静脉的远心端平行进针，回抽有血后松开橡皮带，将药液缓慢注入。⑷豚鼠的静脉注射：同犬的静脉注射方法，也可以象兔一样采用耳缘静脉注射。6.淋巴囊注射：主要用于蛙类。腹部淋巴囊和头背部淋巴囊常作为蛙类给药途径。采用腹部淋巴囊给药时，将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，然后注入药物；采用胸淋巴囊给药时，将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入胸淋巴囊内注射药物，一次最大给药剂量为1ml。蛙全身分布为咽、胸、背、腹侧、腹、大腿和脚等七个淋巴囊。
（二）、经口给药法1.自动口服法：将药物放入饲料或饮水中，让动物自动摄入，方法简单不费工夫，也不会给动物造成损伤。但很难掌握给药量，有时药物在常温下还会分解。这种方法一般适用于动物疾病的防治、药物的毒性观察、某些与食物有关的人类疾病动物模型的复制等。2.强制灌胃给药：就是用灌胃器将药品直接强制灌入胃内。这种方法能准确掌握给药量、给药时间，并能发现和记录症状出现的时间及经过。缺点是费时、同时给动物带来一定的损伤和心理影响。因此，如果操作技术熟练对动物的不良影响就可以减少一些。⑴大、小鼠、豚鼠的灌胃法：左手抓住鼠背颈部皮毛将动物固定，右手持灌胃器，将灌胃针从口腔插入，沿咽后壁插入食道，使其前端达到膈肌水平，为防止插入气管，应回抽注射器针栓，如无空气被抽回，即可将药液注入。小鼠进针约3~4cm、大鼠、豚鼠为4~6cm，常用灌胃量小鼠为0.2~1.0ml、大鼠为1~4ml、豚鼠为1~5ml。⑵兔、犬、猫的灌胃法：先固定动物，然后将开口器固定在动物口中，压住舌头，然后将灌胃管从开口器小孔插入食道，将另一端浸入水中，如有气泡逸出，说明误入气管需拔出重插，插好后将药液推入，为避免药液残留需再注入5ml生理盐水。兔、猫插入为15cm左右，犬为20cm左右。一次耐受量兔为80~150ml，犬为200~500ml。各种动物一次灌胃能耐受的最大容积（三）、其他途径给药法⒈直肠给药：多用于家兔，将药物通过肛门直接注入动物直肠内，经直肠壁吸收，注意不要误入阴道。⒉呼吸道给药：以粉尘、气体、蒸汽、雾等状态存在的药物或毒气，均通过动物呼吸道给药。
⒊皮肤给药：为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等，均采用皮肤给药。⒋脊髓腔内给药：此法主要用于椎管麻醉或抽取脑脊液。⒌关节腔内给药：主要用于大中型动物，给兔子注射时首先将兔仰卧固定，在膑韧带附着点外上方约0.5cm处
进针，针头从前上方向下后方倾斜刺入，直至针头遇到阻力变小为止，然后针头稍后退，以垂直方向推进关节腔中。当有刺破薄膜的感觉时即可注入药液。⒍脑内给药：常用于微生物学试验。将病原体接种于被检动物脑内，然后观察接种后的变化。⒎小脑延髓池给药：此种给药方法都是在动物麻醉情况下进行，而且常用于大动物如犬等，小动物很少采用。四、实验动物用药量及计算方法㈠给药剂量的确定⒈先用小鼠粗略地摸索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般取1/10~1/5。⒉植物药粗制剂的剂量多按生药量折算。⒊化学药品可参考化学结构和作用都相似的药物剂量。⒋一般情况下，在适宜的剂量范围内，药物的作用常随剂量的加大而增强。所以有条件时，最好同时用几个剂量作实验，以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时，则更应慎重分析。⒌用大动物进行实验时，开始的剂量可采用用于鼠类剂量的2/5~1/2，以后可以根据动物的反应调整剂量。⒍根据动物的年龄大小和体质强弱确定给药剂量，一般说确定的给药剂量是指成年动物的；如幼小动物，剂量应减少。如以狗为例：6个月以上的给药量为1份时，3~6个月的狗给1/2份，45~89日龄给1/4份，20~44日龄给1/8份，10~19日龄给1/16份。⒎根据给药途径不同确定给药剂量，如以口服量为100ml时，灌肠给药量为100~200ml，皮下注射为30~50ml，肌肉注射为25~30ml，静脉注射为25ml。㈡实验动物间用药量的计算方法动物实验所用的药物剂量，一般按mg/kg体重或g/kg体重计算，应用时须用已知药液的浓度换算出相当于每kg体重应注射的药液量(ml)，以便给药。㈢人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法dB=dA×ＲＢ/ＲA×(WA/WB)1/3公式中:dA、dB是AB两种动物kg体重的剂量(mg/kg)ＲA、ＲＢ是动物的体形系数。R可由表查到。WA、WB是动物体重五、实验动物采血和采液方法（一）、采血（3）眼眶静脉丛采血：左手拇指、食指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部（防止动物窒息），轻轻压迫动物颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持接7号针头的1ml注射器或长颈（3~4cm）硬质玻璃滴管（毛细管内径0.5~1.0mm），使采血器与鼠面成45°夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180°使斜面对着眼眶后界。刺入深度小鼠约2~3mm，大鼠约4~5mm。当有阻力时即停止推进，同时将针退出约0.1~0.5mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管内，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时将采血器拔出，防止术后穿刺口出血。体重20~25g的小鼠每次可采血0.2~0.3ml；体重200~300g大鼠每次可以采血0.5~1.0ml。（4）心脏采血：小鼠心脏小、心率快，采血困难；大鼠可以采用此法，仰卧固定，选择心跳最明显的部位，通常在胸骨左缘的正中作穿刺。（5）断头采血：左手拇指和食指以背部较紧地握住鼠颈部皮肤，并使动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2~4/5的颈部全剪断，让血液自由滴入盛器。小鼠可采约0.8~1.2ml；大鼠约5~10ml。（6）颈动、静脉采血：动物仰卧固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，充分暴露颈动、静脉用注射器吸出血液。（7）腹主动脉采血：动物麻醉、仰卧固定，腹正中线切开腹腔，清晰暴露腹主动脉，用注射器吸出血液。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀剪断动脉，使血液喷入盛器。（8）股动（静）脉采血：由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈；或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。体重15~20g小鼠采血约0.2~0.8ml，大鼠约0.4~0.6ml。2、豚鼠采血法（1）耳缘剪口采血:用锐器割破耳缘，在切口边缘涂抹20%柠檬酸钠溶液以阻止血凝，血可自切口自动流出。可采血0.5ml左右。（2）心脏采血：选择心跳最明显的部位，通常在胸骨左缘的正中作穿刺。在第三、四肋间左缘3mm处垂直进针刺入心脏，血液即流入针管。成年豚鼠每周采血不超过10ml。（3）股动脉采血：动物仰卧固定，剪去腹股沟区的毛，麻醉后，局部碘酒消毒。切开长约2~3cm 的皮肤暴露股动脉。用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一个小孔。用无菌玻璃小导管或塑料管插入，放开止血钳，血液由导管口流出。一次可采血10~20ml。（4）背中足静脉采血：固定动物，将膝关节伸直，动物脚背面酒精消毒，找到背
中足静脉，以左手的拇指和食指拉住其趾端，右手刺入静脉采血。3、兔采血法（1）耳静脉采血：常用采血法之一，可反复取血。方法同耳静脉给药，但需逆血流方向进针，最多一次采血5~10ml。（2）耳中央动脉采血：盒式固定，左手固定兔耳，右手持注射器，在动脉的末端，沿动脉平行向心方向刺入，取血完毕后注意止血。一次可达15ml。（3）心脏采血：仰卧固定，在第三、四肋间左缘3mm处垂直进针刺入心脏，血液即流入针管。一次取血20~25ml。（4）后肢胫部皮下静脉采血：仰卧固定，拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎橡皮管，左手固定好静脉，右手持注射器与皮下静脉平行方向刺入血管，回抽有血后即可取血。一次可以取2~5ml。（5）股静脉、颈静脉采血：先作股静脉和颈静脉暴露分离手术，再采血。实验动物的血液采集采血部位及采血量（二）、实验动物的体液采集1.尿液的采集⑴代谢笼法：此法较常用，适用于大、小鼠、沙鼠、豚鼠、兔等中小动物。将动物放在特制的笼内，动物排便时，可以通过笼底的大小便分离漏斗将尿液与粪便分开，达到采集尿液的目的。有的代谢笼除可以采集尿液外，还可以收集粪便及二氧化碳。⑵导尿管法：此法适用于雄性兔、犬。动物轻度麻醉后，固定于手术台上，用导尿管（顶端用液体石蜡涂抹）经尿道插入膀胱，可采到无污染的尿液。⑶压迫膀胱法：将动物轻度麻醉后，用手在动物下腹部加压，手要轻柔而有力。当外加的压力足以使动物膀胱括约肌松弛时，尿液会自动由尿道排出。此法适用于猫、犬、兔等较大动物。⑷膀胱穿刺法：将动物麻醉后固定在手术台上，在耻骨联合上腹正中线剪毛，消毒后进行穿刺，入皮后针头应稍改变角度，以避免穿刺后漏尿。⑸反射排尿法：此法适用于小鼠，因小鼠被人抓住尾巴提起时排便反射比较明显，故需要采集少量尿液时，可采用此法。操作者应在提起动物的同时，迅速用容器接住尿液。⑹剖腹采尿法：剖腹暴露膀胱，用左手持小平镊夹住小部分膀胱壁，右手持针在该部位直接穿刺抽取尿液。2.胸、腹水的采集⑴胸水的采集：主要采用胸膜腔穿刺术。动物立位或侧卧固定→术部剪毛、消毒、局部浸润麻醉→左手将术部皮肤向侧方移动→右手持穿刺套管针沿紧靠肋骨前缘处皮肤垂直慢慢刺入→阻力消失或有落空感→抽取胸水⑵腹水的采集：主要采用腹膜腔穿刺术。动物自然站立固定→术部（耻骨前缘与脐之间，腹中线两侧）剪毛、消毒、局部浸润麻醉→左手拇指、食指紧绷穿刺部位的皮肤→右手控制穿刺深度做垂直穿刺→腹水流出→立即固定针头及注射器的位置连续抽吸注意：抽吸速度不要太快，腹水多时不要一次大量抽出，以免因腹压突然下降导致动物出现循环功能障碍等问题。3.唾液的采集⑴直接抽吸法：在急性实验中，可用吸管直接插入动物口腔或唾液腺导管抽吸唾液，不足在于从口腔抽吸的唾液会混入杂质。⑵制备腮腺瘘法：用手术方法将腮腺导管开口移向体外，即以腮腺导管开口为中心，切成一直径2~3cm的圆形粘膜片，将此粘膜片与周围组织分开，穿过皮肤切口引到颊外，将带有导管开口的粘膜片与周围的皮肤缝合，腮腺分泌的唾液就流出颊外，这种方法可以收集到比较纯净的唾液。四、实验动物的急救及处死方法（一）、实验动物的急救措施（二）、实验动物的处死方法（一）、实验动物的急救措施当实验进行中因麻醉过量、大失血、过强的创伤、窒息等各种原因，而使动物血压下降甚至测不到。呼吸极慢或无规则甚至呼吸停止、角膜反射消失等临床死亡症状时，应立即急救，急救的方法可根据动物的情况而定，对狗、兔、猫常用的急救措施有以下几种。1、针刺针刺人中穴对挽救家兔效果较好；对狗用每分钟几百次频率的脉冲电刺激膈神经效果较好。2、注射强心剂可以静脉注射0.1%肾上腺素1ml（增强心肌收缩力），必要时可直接心脏注射。当动物注射肾上腺素后，若心脏已经搏动但极为无力时，可静脉或心腔内注射1%氯化钙5ml(兴奋心肌紧张力）。3、注射呼吸中枢兴奋药可静脉注射尼可刹米(兴奋延髓呼吸中心）或山梗菜碱（颈动脉化学感应器)。每只动物一次注25%尼可刹米1ml或1%山梗菜碱0.5ml。4、动脉快速注射高渗葡萄糖液一般常采用动物股动脉逆血流加压、快速、冲击式注入40%葡萄糖液。注射量根据动物而定，如狗可按2~3ml/kg体重计算。这样可刺激动物血管内感受器，反射性地引起血压呼吸的改善。5、动脉快速输血、输液在作失血性休克或死亡复活等实验时采用。可在动物的股动脉插一软塑
料套管，连接加压输液装置。当动物发生临床死亡时，即可加（180~200mmHg），快速从股动脉输血和输入低分子右旋糖酐。如实验前动物曾用肝素抗凝，由于微循环血管中始终保持畅通，不出现血管中血液凝固现象，因此就是动物出现临床死亡后数分钟，采用此种急救措施仍易救活。6、人工呼吸可采用双手压迫动物胸廓进行人工呼吸，如有电动人工呼吸器，可行气管分离插管后，再接人工呼吸器进行人工呼吸。一旦见到动物自主呼吸恢复，即可停止人工呼吸。有条件时，当动物呼吸停止，而心搏极弱或刚停止时，可用5%CO2和60%O2的混合气体进行人工呼吸，效果更好。采用人工呼吸器时，应调整其容量：大鼠为50次/分钟，每次8ml/kg（即400ml/kg/分钟）；兔和猫为30次/分钟，每次10ml/kg（即300ml/kg/分钟）；犬为20次/分钟，每次100ml/kg（即2000ml/kg/分钟）（二）、实验动物的处死方法处死实验动物应遵循动物安乐死的基本原则，即尽可能缩短动物死亡时间，尽量减少其疼痛、痛苦。1、化学致死法此法适用于各种动物，可吸入二氧化碳、乙醚、氯仿等致死。因乙醚易引起火灾，氯仿对人有较大毒性。而二氧化碳对人很安全，处死动物效果确切，故最好使用二氧化碳。也可静脉注射一定量的氯化钾溶液（心肌失去收缩力）、福尔马林溶液（蛋白凝固）、士的宁、DDT致死。2、脊椎脱臼法大、小鼠常用。将动物放在鼠笼盖或粗糙的表面上，用左手拇指与食指用力按住鼠头，右手抓住鼠用力向后上方拉，使颈椎脱臼，鼠立即死亡。3、空气栓塞法此法适用于犬、猫、兔、豚鼠等较大动物。向动物静脉内注入一定量的空气，使之发生栓塞而死。一般兔、猫等静脉内注入20~40ml空气即可致死。每条犬由前肢或后肢皮下静脉注入80~150ml空气，可很快致死。此法常出现动物长时间挣扎，从动物保护的角度出发，不提倡使用。4、急性失血法小鼠等小动物可采用颈总动脉大量失血而致死的方法。犬等大型动物先麻醉后放血，要使放血的切口保持通畅，一般在股三角区横切约10cm的切口，切断股静、动脉，使之大量失血而死亡。采用此方法，动物十分安静，对脏器无损伤，对活杀采集病理切片标本是一种较好的方法。5、击打法此法适用于大鼠、家兔等。抓住动物尾部，提起，用力摔击其头部，或用小木锤用力击打后脑部也可致死。6、断头法此法适用于大、小鼠等小型动物，具体方法与断头采血法相同。7、破坏脑脊髓法此法适用于蛙类。8、其他方法其他处死实验动物的方法还有破坏延脑法、开放性气胸法等。第四节影响动物实验的因素实验动物对动物实验处理的反应可用如下的公式表示：R=（A+B+C）×D±E其中：R为实验动物的总反应或演出型；A为动物种间的共同反应；B 为动物品种、品系特有的反应；C为动物个体反应；D为环境因素（包括实验处理）；E为实验误差。可以看出A、B、C是实验动物的本身反应，是由遗传因素起决定性作用，被选择的实验动物，在严格控制环境因素D或改变其中某一条件后就可能得到一个理想的实验结果R。一、生物因素对动物实验的影响生物因素涉及同种生物因素和异种生物因素等。1、实验动物也存在社会地位和势力范围；2、实验动物要有一定的活动面积和空间，要有合理的饲养密度。3、异种动物之间可产生相互影响，因此不同种、品系的动物应分室饲养。4、病原微生物对实验动物的影响是明显的。普通动物、SPF动物和无菌动物特点的比较二、遗传因素对动物实验的影响1、不同种属的哺乳动物，其生命过程有一定的共性，这是科学实验中可以应用实验动物的基础。但另一方面不同种属的动物在解剖、生理生化特征和各种反应上又有个性。如犬、猫、猴对呕吐反应敏感，兔、豚鼠不敏感，大小鼠无反应。2、同种属不同品系的动物对同一刺激的反应有很大的差异。C3H小鼠乳腺癌97%，NOD易发糖尿病，C57BL低癌系。3、动物的解剖生理特征和反应性随年龄而明显变化，老年动物代谢能力低下，反应不灵敏，一般动物实验应选成年动物进行。慢性实验或观察动物的生长发育，应选择幼龄动物。在老年医学研究中，应选用老龄动物。论文设计要保证在动物生命周期内完成。4、不同品种和品系的实验动物的寿命各不相同，所以选用实验动物时应注意到实验动物之间年龄的对应，以便进行分析比较。犬与人的年龄对应（年）5、不同性别的动物对同一药物的敏感性不同，对同一刺激的反应也不一致。雌性动物在性周期的不同时期，怀孕
医学实验动物学简答题.doc
1.简述“近交系动物” 2.经至少连续 20 代的全同胞亲兄妹或亲子交配培育而成，同品系内所有个体都可追溯到 起源于第 20 代或以后代数的共同祖先，该品系称为近交系。 3.近亲交配的弊端 固定基因时，有害的隐性基因也会纯合，出现不利的性状而造成育种失败；近交可能导致 多基因之间丧失平衡，从而使高度纯化的动物对不良环境的调节适应能力降低；近交 使动物失去为保持足够生物适合度所必需的最低水平的基因杂合性，从而影响动物生长率，寿命，对疾病的感受性，生活力，体力及繁殖能力。 4.简述“封闭群动物” 以非近交交配方式进行繁殖生产的一个实验动物种群，在不从其外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖 4 代以上，称为一个封闭群，或叫远交群。 5.简述“哨兵动物” 指为微生物检测所设置的指示动物，用于监控实验动物饲养环境中病原及病原感染的动 物。哨兵动物一般采用来源于与被监测动物遗传背景相同的、免疫功能正常的清洁级或 SPF级封闭群动物。通常有二个功能： 1. 实验初期意外缺损时的补充； 2. 微生物定期检测 6.简述空气洁净度“级”的含义，各种动物实验环境设施对“级”的要求是什么 级是空气洁净度的计量单位，含义:每立方英尺空气中含有大于等于0.5μm的尘埃粒子数。 屏障环境：洁净度7 级 (英美制一万级)；隔离环境：洁净度 5 级 (英美制一百级) 7.简述营养 动物从外界摄取自身所需要的食物，经消化、吸收，用来维持生命活动的行为或作用。 8.简述标准化饲料 根据不同动物的营养需求和动物的食性，经人工配合、加工而成的营养全面、适口性好、符合微生物要求的饲料。 9.简述颗粒饲料优越性 ①原料配合合理，符合营养标准和不同动物的食性；②加工过程中经过高温、挤压，杀 灭了大量微生物和寄生虫，普通级动物可直接饲喂；③压制成型，避免了动物采食过程 中的大量浪费；④大幅度减少了粉尘；⑤颗粒饲料有利于进一步包装灭菌处理。 10.简述人类疾病动物模型的定义和分类 定义：在生物医药研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物实验对象和材料。 分类：诱发性动物疾病模型、自发性动物模型、抗疾病型动物模型、生物医学动物模型 11.简述安乐死 在动物实验过程中或结束时，对不欲保留的动物（动物承受不可缓解的疼痛、非存活手 术和样本采集），实施痛苦感最低或者无痛苦感死亡的科学方法。 12.裸鼠的解剖生理特点 ①毛囊发育不良，外观几乎全身没有被毛，称裸体外表，故称“裸鼠”；②胸腺严重萎缩， 仅有胸腺残迹或异常的胸腺上皮。故不能分泌胸腺素，不能使T 细胞正常分化，因而细胞免疫力低下；③IgG 的产生需要T 细胞和巨噬细胞的参与，因此其免疫球蛋白主要是IgM ，只有极少量的 IgG；④自发肿瘤现象罕见，可能与 NK 细胞的活性高有关；⑤裸鼠 易患鼠肝炎和病毒性肺炎；⑥纯合裸鼠母性极差，且受孕率低，乳房发育不良。通常以 纯合雄鼠与带有nu 基因的杂合雌鼠交配，可获1/2裸小鼠；⑦必须饲养在屏障环境中。13.在动物实验设计、实施和完成阶段，有关动物福利和保护环境方面我们应该注重哪些？ 设计阶段 :①动物福利法核心：善待活着的动物，减少死亡的痛苦；②“3R”原则：替代、
实验动物学重点题库
复习题 1、简述动物实验中3R原则内容及其意义。 Replacement 替代1.尽量使动物一体多用2、用低等动物代替高等动物3、尽量使用高质量动物4、使用恰当的试验设计和统计学方法 Reduction 减少1、用有生命的物体代替动物进行研究2、用数理化方法模拟动物进行研究Refinement 优化1、改善实验设施条件，提高动物实验质量2、改善控制技术，减少对机体的干扰 3R研究的意义 1、作为提升突破技术壁垒能力的载体和具体体现“标尺”，在经济发展和国际贸易中发挥不可替代的重要作用。 2、为科学发展提供了新思路和新方法。 3、体现时代发展、社会进步 2、简述免疫缺陷动物的概念以及生物学特性（主要是裸鼠和联合免疫缺陷鼠）。 指由于先天性遗传突变或用人工方法造成一种或多种免疫系统组成成分缺陷的动物。 一、T淋巴细胞功能缺陷动物：1、裸小鼠（nude mice）：1）被毛生长异常，呈裸体外表。2）无胸腺，仅有胸腺残迹或异常胸腺上皮，不能使T-cell正常分化，导致细胞免疫力低下。幼龄鼠有残存的未分化的上皮细胞。3）B细胞功能正常，NK细胞活力增强。4）繁育能力差，乳腺发育缺损，以雄性纯合子与雌性杂合子繁育。5）T细胞缺陷可通过移植成熟T细胞、胸腺细胞或正常胸腺上皮得到校正。2、裸大鼠(nude rat)：基因符号为rnu，一般特征似裸小鼠。1）发育迟缓，体重为正常大鼠的70%。2）裸大鼠较裸小鼠对多种传染病更敏感。3）比裸小鼠更强壮、寿命更长。4）体型较大，对大范围的外科手术方法较有利。二、联合免疫缺陷动物1、严重联合免疫缺陷小鼠(SCID mice)：突变基因scid位于16号染色体。1）该突变基因造成编码Ig重链和TCR的基因重排异常，抑制B-cell和T-cell前体的正常分化。2）C.B-17Icr为携带来自C57BL/ka小鼠的免疫球蛋白重链Igh-1b等位基因的 BALB/cAnIcr的同源近交系。3）纯合子血清中无免疫球蛋白，淋巴结、胸腺变小，缺乏体液、细胞免疫功能。饲养于SPF环境中。4）通过移植人免疫组织或免疫细胞，可使SCID 小鼠具有人类部分免疫系统，称为SCID-hu小鼠。
小动物疾病学(笔记)
小动物疾病学(笔记) 小动物疾病学 兽医教学参考,兽医临床交流&P5W/F.K/P.}1[%N 诊断、内科、寄生虫病12学时兽医人技术联盟_中国专业兽医人的技术交流平台)I3~;E!u"q1\'N/u2o:C 专题一犬猫养殖与宠物经济(0.5) 3[#|+z:S*{4K/x动物医学论坛专题二犬猫的生物学特性(1) 4J-i'?8R)x3[#{转自https://www.wendangku.net/doc/5211326732.html, 动物医学论坛专题三兽医临床诊疗过程(1.5)兽医教学参考,兽医临床交流,犬病辅助诊断系统.U A"{;R3E 专题四犬猫的常见内科病防治(7) 5l#a0[1x+f%F/h,Y.[兽医教学参考,兽医临床交流,犬病辅助诊断系统专题五犬猫的常见寄生虫病防治(2) 3w,L7C0D q兽医教学参考,兽医临床交流,犬病辅助诊断系统 犬猫养殖与宠物经济 数据－－我国是世界上养犬和养猫较早和较多的国家之一，据不完全统计，现全国养猫超过5000万只，中国宠物狗的数量已经达到1.5亿只。 用途－－农村养犬：看家护院），养猫：捕鼠； 城市养犬猫多数作为宠物，丰富人们的精神文化生活 科研院所、医疗、环保、制药等单位饲养的犬猫，作为实验动物 军队和公安部门驯养的军警犬，则已成为他们在搜毒、搜爆、警戒、守卫、追踪、侦破等国防和公安作业中的特殊武器装备。 犬猫养殖与宠物经济 市场潜力巨大：我国宠物经济的市场潜力可以达到150亿元，如此庞大的市场分额孕育了不少的新兴职位。 待遇优厚：目前宠物医生初出茅庐者的薪资一般在1000元左右，有2年以上工作经验的工
资在3000元以上，经验丰富者万元月薪也可轻易获得；宠物美容师只需通过1个月左右的培训学习便可获得初级资格，一些A级美容师的月薪可拿到7000——10000元之间。 专题二犬猫的生物学特性 一、犬的生活习性及解剖生理特点 二、犬的行为 三、猫的生活习性及解剖生理特点 四、猫的行为 一、狗的生活习性及解剖生理特点 一、狗的生活习性及解剖生理特点 1．狗（Dog；Canis familiaris）属哺乳纲、食肉目、犬科。 2.犬的消化道比草食动物短，为体长的3~4倍（马、兔为体长的12倍）。 3. 犬为肉食动物,习惯于啃咬肉、骨头，喜吃肉类及脂肪；但由于长期家畜化，也可杂食或素食，消化蔬菜能力差。 4.智力发达，反应灵敏，被科学家认为是地球上最聪明的动物之一。 5.犬具有许多美德。对主人忠贞，勇敢和勇于牺牲的献身精神及强烈的责任感（军犬），博得人类喜爱。 6. 狗的嗅脑、嗅觉器官和嗅神经极为发达。鼻长，鼻粘膜上布满嗅神经，能够嗅出稀释一千万分之一的有机酸，特别是对动物性脂肪酸更为敏感，狗嗅觉能力超过人的1200倍。
医学实验动物学考试重点总结
名词解释：实验动物（laboratory animal）：指经人工培育，对其携带的微生物、寄生虫进行严格控制，遗传背景明确，可用于科学实验、药品、生物制品的生产和检定及其它科学研究的动物。 实验用动物：是指一切用于实验的动物，除了符合严格要求的实验动物外，还包括家畜和野生动物等。 实验动物与实验用动物：遗传控制不同,微生物控制等级不同,培育的形质和目标不同。 人类疾病的动物模型：是指医学研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物实验对象和相关材料。 实验动物标准化：遗传质量标准化微生物质量标准化环境标准化营养标准化 按遗传控制标准，实验动物分为：近交系（CH3），突变系（裸鼠），杂交系（F1），封闭群（远交系）（KM小鼠，wister大鼠） 按基因型分：1、同基因型动物（如近交系、F1代） 2、不同基因型动物（如封闭群） 按微生物控制程度分级：普通级，清洁级，SPF级，无菌级（2001年版的国家标准中，大小鼠取消普通级动物，犬、猴只分普通级和SPF级，豚鼠、地鼠和兔仍然分4级） SPF动物定义：除清洁动物应排除的病原外，不携带主要潜在感染或条件致病和对科学实验干扰大的病原。（屏障环境中饲养，种子群来源于无菌动物或剖腹产动物。饲养管理同清洁动物） 无菌动物的特点：形态学及生理学特点： ①形态学：盲肠肥大（增大5～6倍），肠壁薄，易发肠扭转。心脏、肝脏、脾脏相对较小。 ②生理学: 血中无抗体，巨噬细胞吞噬能力弱。体不能合成维生素B和K。无菌鸡生长较快、无菌豚鼠和无菌兔生长较慢。无菌大小鼠与普通大小鼠生长速度相同。 （3)饲养要求：隔离环境中饲养，种子群来源于剖腹产动物或无菌卵的孵化。由于肠道无菌，饲养困难，应注意添加各种维生素。每2～4周检查一次动物的生活环境和粪便标本。 悉生动物：概念：悉生动物是指在无菌动物体植入已知微生物的动物。又称已知菌动物。植入一种细菌的动物叫单菌动物；植入两种细菌的动物叫双菌动物；植入三种细菌的动物叫三菌动物；植入多种细菌的动物叫多菌动物。（由于肠道接种有利于消化吸收的细菌，故饲养较无菌动物容易，形态学和生理学方面与普通动物无异。） 近交系：经至少连续20代的全同胞兄妹交配培育而成，品系所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先。 特点： 1、其基因纯合度达到98.6%，个体差异小，似同卵双生反应一致重复性好，用少量动物即可获得精确度很高的实验结果，个体相互之间可以接受皮肤、器官移植。 2、隐性基因纯合使许多病态性状得以暴露，可获得大量先天性畸形及先天性疾病的动物模型.如高血压、白障、糖尿病.动物模型。 缺点：出现近交衰退。近交衰退是近交过程中动物群体由于基因分离与纯合发生一系列不利于个体或群体发育的变化和现象。
陈阅增普通生物学笔记
普通生物学笔记（陈阅增） 普通生物学讲课文本 绪论 思考题：1.生物的分界系统有哪些？2.生物的基本特征是什么？3.什么是动物学？4.什么是细胞学说？其意义是什么？5.学习和研究动物学有哪些方法？ 一、生物分界：物质世界是由生物和非生物二部分组成。 非生物界：所有无生命的物质，如：空气、阳光、岩石、土壤、水等。 生物界：一切有生命的生物。 非生物界组成了生物生存的环境。生物和它所居住的环境共同组成了生物圈。 生物的形式多样，种类繁多，各种生物在形态结构、生活习性及对环境的适应方式等方面有着千差万别,变化无穷，共同组成了五彩缤纷而又生机勃勃的生物界。 最小的生物为病毒，如细小病毒只有20nm纳米，它是一种只有1600对核苷酸的单一DNA链的二十面体，没有蛋白膜。最大的有20-30m长的蓝鲸，重达100多吨。 (一)生物的基本特征 1.除病毒以外的一切生物都是由细胞组成。构成生物体的基本单位是细胞。 2.生物都有新陈代谢作用。 同化作用或称合成代谢：是指生物体把从食物中摄取的养料加以改造，转换成自身的组成物质，并把能量储藏起来的过程。 异化作用或称分解代谢：是指生物体将自身的组成物质进行分解，并释放出能量和排出废物的过程。 3.生物都有有生长、发育和繁殖的现象。 任何生物体在其一生中都要经过从小到大的生长过程。在生长过程中，生物的形态结构和生理机能都要经过一系列的变化，才能从幼体长成与亲代相似的
个体，然后逐渐衰老死亡。这种转变过程总称为发育。当生物体生长到一定阶段就能产生后代，使个体数目增多，种族得以绵延。这种现象称为繁殖。 4.生物都有遗传和变异的特性：生物在繁殖时，通常都产生与自身相似的后代，这就是遗传。但两者之间不会完全一样，这种不同就是变异。生物具有遗传性才能保持物种的相对稳定和生物类型间的区别。生物的变异性才能导致物种的变化发展。 (二)动物的基本特征：动物自身不能将无机物合成有机物，只能通过摄取食物从外界获得自身建设所需的营养。这种营养方式称为异养。 (三)生物的分界：地球上生活着的生物约有200万种，但每年还有许多新种被发现，估计生物的总数可达2000万种以上。对这么庞大的生物类群，必须将它们分门别类进行系统的整理，这就是分类学的任务。 1.二界分类：公元前300多年，古希腊亚里士多德将生物分为二界：植物界、动物界。 2.三界分类：1886年德国生物学家海克尔(E.Haeckel)提出三界分类法： 原生生物界：单细胞动物、细菌、真菌、多细胞藻类；植物界；动物界。 3.四界分类：由美国人科帕兰(Copeland)提出。 原核生物界：包括蓝藻和细菌、放线菌、立克次氏体、螺旋体、支原体等多种微生物。 原生生物界：包括原生动物和单细胞的藻类。动物界。植物界。 4.五界分类：1959年美国学者魏泰克(Whitaker)提出五界分类法： 原核生物界：细菌、立克次体、支原体、蓝藻。特点：环状DNA位于细胞质中，不具成形的细胞核，细胞器无膜，为原核生物。细胞进行无丝分裂。 原生生物界：单细胞的原生动物、藻类。特点：细胞核具核膜的单细胞生物，细胞内有膜结构的细胞器。细胞进行有丝分裂。
陈阅增普通生物学笔记
普通生物学笔记(陈阅增) 普通生物学讲课文本 绪论 思考题:1.生物的分界系统有哪些?2.生物的基本特征是什么?3.什么是动物学?4.什么是细胞学说?其意义是什么?5.学习和研究动物学有哪些方法? 一、生物分界:物质世界是由生物和非生物二部分组成。 非生物界:所有无生命的物质,如:空气、阳光、岩石、土壤、水等。 生物界:一切有生命的生物。 非生物界组成了生物生存的环境。生物和它所居住的环境共同组成了生物圈。 生物的形式多样,种类繁多,各种生物在形态结构、生活习性及对环境的适应方式等方面有着千差万别,变化无穷,共同组成了五彩缤纷而又生机勃勃的生物界。 最小的生物为病毒,如细小病毒只有20nm纳米,它是一种只有1600对核苷酸的单一DNA链的二十面体,没有蛋白膜。最大的有20-30m长的蓝鲸,重达100多吨。 (一)生物的基本特征 1.除病毒以外的一切生物都是由细胞组成。构成生物体的基本单位是细胞。 2.生物都有新陈代谢作用。
同化作用或称合成代谢:是指生物体把从食物中摄取的养料加以改造,转换成自身的组成物质,并把能量储藏起来的过程。 异化作用或称分解代谢:是指生物体将自身的组成物质进行分解,并释放出能量和排出废物的过程。 3.生物都有有生长、发育和繁殖的现象。 任何生物体在其一生中都要经过从小到大的生长过程。在生长过程中,生物的形态结构和生理机能都要经过一系列的变化,才能从幼体长成与亲代相似的 个体,然后逐渐衰老死亡。这种转变过程总称为发育。当生物体生长到一定阶段就能产生后代,使个体数目增多,种族得以绵延。这种现象称为繁殖。 4.生物都有遗传和变异的特性:生物在繁殖时,通常都产生与自身相似的后代,这就是遗传。但两者之间不会完全一样,这种不同就是变异。生物具有遗传性才能保持物种的相对稳定和生物类型间的区别。生物的变异性才能导致物种的变化发展。 (二)动物的基本特征:动物自身不能将无机物合成有机物,只能通过摄取食物从外界获得自身建设所需的营养。这种营养方式称为异养。 (三)生物的分界:地球上生活着的生物约有200万种,但每年还有许多新种被发现,估计生物的总数可达2000万种以上。对这么庞大的生物类群,必须将它们分门别类进行系统的整理,这就是分类学的任务。 1.二界分类:公元前300多年,古希腊亚里士多德将生物分为二界:植物界、动物界。 2.三界分类:1886年德国生物学家海克尔(E.Haeckel)提出三界分类法:
实验动物学重点整理
实验动物学重点整理 1大小鼠年龄、体重、寿命的比较数据？ 成年动物的年龄、体重和寿命比较 小鼠大鼠 成年日龄（天）65-90 85-110 成年体重（克）20-28 200-280 平均寿命（年）1-2 2-3 2动物实验的对照类型？ （一）空白对照： 不给任何措施的情况下观察动物自发变化的规律。家兔白细胞数每天上下午有周期性的生物钟变化。 （二）实验对照： 采用与实验组相同操作条件下对照，如给药实验中的溶媒（Nacl），手术，注射以及观察时的抚摩等都可以对动物发生影响。有人报告，针刺犬的人中穴对休克、心脏血液动力学有改变，但采用空白对照（不针刺）不够，应该设有针刺其它部位或穴部的实验对照。 （三）有效（标准）对照： 常用于药物研究。对一新药疗效可用一已知有效药或能引起标准反应药物做对照，可考核实验方法可靠性，又可通过比较，了解新药疗效和特点（普鲁卡因---对皮肤黏膜穿透力弱，用纳塞卡因---穿透力强，作用快、持久）。（四）配对对照： 同一个体不同眼睛比较对照期和实验期差异（左眼试验，右眼对照）；同一种动物后代分成左右两部分进行对照和实验以比较差异，此法可大大减少抽样误差。实验中可用同卵双胎或同窝动物。 （五）组间对照： 将实验对象分成两组或几组比较其差异。这种对照个体差异和抽样误差比较大，可用交叉对照方法以减少误差。观察某药物疗效可用两组犬先分别做一次实验和对照，再相互交换，以原实验组做对照组，原对照组做实验组重复第一次实验，观察疗效或影响，切记检查指标和条件要等同。 （六）历史对照与正常值对照： 此种对照要慎重，similar background ---条件、背景、指标和技术方法相同才进行对比，否则得出不恰当的甚至错误结论。 3转基因动物的概念、制备过程? 转基因动物： 用物理、化学、生物手段将确定外源基因通过生殖细胞或早期胚胎导入动物染色体，其基因组内稳定整合导入外源基因，能遗传给后代的一类动物,使其获得人类需要新功能。 技术程序：
动物临床诊断学笔记(畜牧专业)
1兽医临床诊断学：以畜禽为研究对象，从临床的角度判断疾病的性质的方法和程序的一门学科。 2.稽留热:高热持续3天以上，每日温差变动在1度以内，是因致热源在血液内持续存在，并不断的刺激体温调节中枢所致。见于猪瘟、大叶性肺炎、炭疽等。 3.弛张热:体温升高后，每天的温度变动常超过1度以上，但又不降至正常。见于败血症、化脓性疾病、支气管肺炎等。 3.间歇热:发热期交替出现，见于牛伊氏椎虫病、亚急性和慢性马传染性贫血、亚急性和慢性钩端 4.里急后重:屡呈排粪动作，而仅排出少量粪便或黏液，见于直肠炎或牛的子宫.阴道炎症 5.胸腹试呼吸:呼吸时，胸壁和服壁动作协调，强度一致，是健康动物呼吸方式。 6.胸试呼吸:呼吸活动中胸壁的起伏动作特别明显，而腹壁运动微弱。见于急性腹膜炎、瘤胃膨气、重度肠膨气等。 7.腹式呼吸:呼吸活动中腹壁的起伏动作特别明显，而胸壁活动微弱。见于肺气肿、胸膜 8干咳:呼吸道内有粘稠的分泌物或炎症初期，出现尖而短、声音清脆的干性咳嗽。见于喉、气管有异物，急性呼吸道炎症的初期。 9湿咳:呼吸道内积有多量稀薄的渗出物时呈湿而长、声音盾浊的咳嗽。见于咽喉炎、支气管炎及支气管肺炎等。 10.痛咳:咳嗽伴有疼痛，患畜伸颈摇头、前肢刨地。见于呼吸道有异物、急性喉炎及胸膜炎等。 11痉挛性咳嗽频繁而连续不断的咳嗽，常见与急性喉炎、猪霉形体病、猪巴氏杆菌病、幼畜肺炎和猪后圆线虫病等。 12.胸膜摩擦音：胸膜发炎时，胸膜表面变为粗糙，且有纤维素附着，呼吸时两层胸膜摩擦而产生的一种声音，类似两粗糙物的擦过声。见于牛肺疫.犬瘟热.马传染性胸膜肺炎等。 13.多尿：多尿表现为排尿次数增多,每次均有大量尿液排出,见于慢性肾病或渗出性胸膜炎的吸收期。 14.频尿：频尿则表现为时呈排尿动作,而每次仅有少量尿液排出,主要见于膀胱及尿道炎。 15.少尿：少尿表现为排尿次数和尿量的减少，见于热性病、急性肾炎、严重腹泻 16.啰音：为伴随呼吸而出现的附加音响，是一种重要的病理象征。 17.干啰音：当支气管分泌物粘稠或支气管黏膜肿胀.狭窄，气流通过时产生的音响，似蜂鸣.笛音.哨音。见于慢性支气管炎.肺结核等。 18.湿啰音：又称水泡音。当支气管分泌物稀薄，呼吸时气流冲击而发生，似含漱音，为水泡破裂声。见于支气管炎及支气管肺炎等。 19.无尿：真性无尿，是泌尿机能的严重障碍，如患急性肾炎；假设无尿，可见排尿动作，但无尿液排出，见于尿道完全阻塞（如公牛尿道结石）及膀胱破裂。 20.尿失禁：无排尿姿势与动作，而尿液自行流出，称尿失禁，见于脊髓挫伤、膀胱括约肌麻痹及中枢神经系统疾病 21.精神抑制：是中枢神经系统机能障碍的另一种表现形式，根据程度不同可分为3种。 22.精神沉郁：病畜对周围事物注意力降低，离群呆立，低头耷耳，眼睛半闭，但对外界刺激尚能迅速发生反应。可见于各种热性病、缺氧等多种疾病过程中。 23阵发性痉挛个别肌肉或肌组织发生短而快的不随意收缩，间隔歇性。见于脑炎、脑脊髓炎、隔肌痉挛、中毒和低血钙症等。 24强直性痉挛肌肉长时间均等地持续性收缩。见于脑炎、脑脊髓炎、破伤风、有机磷农药及士的宁中毒等。25陈—施二氏呼吸：呼吸开始逐渐加强、加深、加快直达高峰，然后又逐渐变弱、变浅、变慢，最后呼吸中断，又以上述方式开始呼吸，如此反复交替，出现波浪式的呼吸节律， 26尿淋漓：是指排尿不畅，尿液呈点滴状或细流状排出。 1问诊的内容？ ①现病史了解发病时间、地点、发病数量、病后表现、对发病原因的估计、病的经过及所采取的治疗措施与效果等。 ②既往病史了解病畜或畜群过去的患病情况。当有群发现象时，更要详细调查、了解当地疫病流行、防疫、检疫情况等。 ③饲养、管理、使役情况了解饲料的种类、数量、质量及配方、加工情况，饲喂制度，畜舍卫生及环境条件，
实验动物学重点
实验动物学重点
1.实验动物学绪论 2.实验动物质量控制 3.常用实验动物 4.实验动物营养与饲料 5.实验动物环境和设施 6.基因工程动物 7.“3Rs”理论及其研究进展 8.怎样才能作好动物实验 实验动物学绪论 实验动物学：以生物学、动物科学、动物医学、医学,药理学、毒理学等学科为基础，综合发展而形成的一门覆盖 面极广的边缘学科。 实验动物学包括：实验动物，实验动物医学，比较医学，动物实验 实验动物：是指经人工培育的、遗传背景清楚、对其携带微生物和寄生虫实行控制、用于科学实验、教学、检定及 药品、生物制品生产的动物。 实验用动物：实验动物、家畜、野生动物、伴侣动物 概况：实验动物科学内容：实验动物、实验动物医学、比较医学、动物实验 1988年，国家科委发布《实验动物管理条例》 1996年10月，《北京市实验动物管理条例》出台，于2005年1月1日实施 实验动物伦理：是人与实验动物关系的伦理信念、道德态度和行为规范。主要体现在尊重实验动物的价值和权利。 实验动物福利：实验动物的一种康乐状态。在此状态下，其基本需求得到满足，而痛苦被减至最小。 五项基本福利：一，提供适当的清洁饮水和保持健康和精力所需要的食物，使动物不受饥渴之苦 二，提供适当的栖息场所，能够舒适地休息
和睡眠，使动物不受困顿不适之苦 三，做好防疫，预防疾病和给患病动物及时诊治，使动物不受疼痛、伤病之苦 四，保证拥有良好的条件和处置（包括安乐死），使动物不受恐惧和精神上的痛苦 五，提供足够的空间、适当的设施以及与同类动物伙伴在一起，使动物能够自由表达正常的习性 动物实验需要考虑实验动物伦理的几个环节：实验目的确定和必要性评估、实验设计遵循3Rs原则、实验操作过程避免或减轻动物疼痛及恐惧、日常饲养及护理、安乐死 CRO：Contract Research Organization Include: Clinical trial、Preclinical research AAALAC认证（国际实验动物管理评估和认证协会）实验动物学发展趋势：基因修饰技术运用； 实验动物福利与“3Rs”原则； 实验动物商品化及SPF动物广泛应用； 人源化小鼠模型的建立。 实验动物科学发展简史：1909年，Prof. Little 采用近交方法 培育出首个近交系小鼠DBA 1943年，美国Dr. Reynier研制出第一台金属隔离器，饲养无菌 大鼠 1948年，美国成立实验动物管理小组，后又成立实验动物科 学学会（AALAS） 1966年，美国国会批准《实验动物福利法案》 1982年，第一例转基因小鼠问世 实验动物学、比较医学等专业的设立及建立相应培训制度 我国实验动物科学发展概况：1918年，原北平中央防疫处开 3
实验动物学论文
关于实验动物学生物医学等领域的应用的研究 摘要：在医学生物学的发展过程中，实验动物的重要性已愈来愈被人们所认识。合理地应实验动物对达到预定的实验目的起着至关重要的作用。人类各种疾病的发展过程十分复杂,要深入探讨其疾病的发病及防治机制是不可能也不应该在病人身上进行的,但可以对动物各种疾病和生命现象的研究进而类推到人类,而实验动物又容易感染类似人类的一些疾病,对动物这些疾病的研究结果,可以应用于人类的类似疾病,也有利于其他动物类似疾病的预防和治疗。但另一方面，动物权利论—生态伦理学的一个流派,主张动物和人类一样,也拥有天赋的生存权和自由权。因此，医学工作者应以科学、认真、人道的态度来进行动物实验。 关键词：实验动物学；应用； 生命科学是21世纪的领衔学科群，目前从事这一行业的人是一群名副其实的21世纪追梦人，这群追梦人明天可能取得的成就无疑会造福于人类1中国科学院生物学部生命科学发展战略调研小组．迎接生命科学世纪的挑战口[J]、世界科技研究与发展．2001：23（I）：I-6。但生命的许多研究领域都依赖于实验动物借助于实验动物，可以开展有关生命现象及其本质的许多研究。通过动物实验，可以对化学药物和生物制品进行安全和效果评价，实验动物可以用作人类和动物疾病的模型．研究许多疾病的发生发展及其结构和机能上的变化，探索和评估诊疗方法。以实验动物为材料,开展医学实验研究,进行生命基本规律和病理发生机制的研究并通过推演、类比解决生命科学和医学中的重大问题[2[2施新猷,王四旺,顾为望,等·比较医学[M]·西安:陕西科学技术出版社, 2003·15-25· 因此，若没有优质的实验动物，虽有优秀的科研人员精密的仪器，也根本无法准确、全面、多方位、多层次地了解和回答生命科学．实验动物学是现代科学技术的重要组成部分,是生命科学的基础和重要支撑条件,是衡量现代生命科学研究水平的重要标志[3白晶.动物实验“3R”原则的伦理论证[J].中国医学伦理学,2007,20(5):48~50. 但是，近年来由于动物保护运动的兴起,保护动物权利的呼声愈来愈高涨,动物实验面临动物权利论的伦理挑战。鉴于以上本文对实验动物在生物医学上的应
实验动物学 重点
实验动物学Laboratory Animal Science 是研究有关实验动物和动物实验、融合了生物学、医学与畜牧兽医学的一门新兴、交叉学科。 特点：A.综合性学科B.应用性强C. 发展迅速 实验动物Laboratory Animals经人工培育或人工改造，对其携带的微生物实行控制、遗传学背景明确或来源清楚，用于科学研究、教学、生物制品或药品鉴定以及其它科学实验的动物。 特点：人工饲育、微生物控制、遗传背景清楚、应用要求、质量标准 实验用动物Animals for Research指所有用于动物实验的动物，包括实验动物。 实验动物和实验用动物的区别：实验用动物是指所有用于动物实验的动物，包括实验动物、野生动物、甚至观赏动物等。而实验动物是为研究的需要而培育的标准化的动物。确定是否是实验动物，要经过一系列检测，如微生物和遗传基因等，并要求达到一定的质量标准. 实验动物遗传控制程度分类 远交（封闭）群动物(Outbreed stock, Close colony) 基因突变动物(mutant stock) 近交系动物(Inbred strain): 嵌合体(Chimera) 重组近交系(Recombinant inbred strains) 同源近交系(Cogenic inbred strains) 分离近交系(Segregating inbred strain) 杂交群动物(Hybrids) 实验动物微生物控制程度分类 无菌动物(Germ-free animal) 悉生动物(Gnotophoric animal) SPF动物(Specific pathogen-free) 清洁动物(Clean animal) 普通动物(Conventional animal) 根据对饲养环境控制分类 Isolation system（隔离系统）animal; Barrier system（屏障系统）animal; Semi-barrier system （半屏障系统）animal; Open system（开放系统）animal. AEIR 动物(Animal)设备(Equipment)信息(Information)试剂(Reagent) 近代实验动物学发展特点 1实验动物生产技术逐步完善 2实验动物品种增加 3有关实验动物的法规日趋完善 4充分利用现有动物资源 5开展实验动物附属设施及动物实验技术的研究 6转基因（遗传工程）技术的应用 7遗传学和微生物学监测方法的研究 实验动物研究内容 实验动物遗传学(Laboratory Animal Genetics)是应用遗传调控原理, 控制实验动物的遗传特征,培育新的实验动物品系和多种实验动物模型, 以实现实验动物标准化的目的. 实验动物微生物学(Laboratory Animal Microbiology)是研究实验动物的细菌、病毒、寄生虫的种类、特性及其与宿主的相互关系，并进一步研究其对实验动物与动物实验的影响 实验动物生态学(Laboratory Animal Ecology)是研究实验动物与环境相互关系，研究对实验动物与动物实验有利的环境条件; 实际上主要研究气候因素, 理化因素, 生物因素, 栖居环境对实验动物的影响. 实验动物营养学(Laboratory Animal Nutrition)是研究饲料与实验动物机体生长、发育、繁殖、健康及实验结果关系的分支学科. 实验动物医学(Laboratory Animal Medicine)是专门研究实验动物疾病的诊断、治疗、预防及其在生物医学领域中应用的分支学科.
动物检疫笔记答案
动物检疫 1.病原微生物：自然界中极少数微生物对动植物有害，可引起疾病，称为致病微生物或病原微生物。 2.细菌：是一类具有细胞壁的单细胞原核型的微小生物。 3.病毒：目前所知道的微生物中体积最小的生物，没有完整的细胞结构，但却具有一般的生物学活性，不能单独进行新陈代谢，只能在一定的活细胞内生长繁殖，专营寄生生活。 4.寄生虫：暂时或永久寄居在另一种生物的体表或体内，夺取被寄居者（宿主）的营养物质并给被寄居者造成不同程度危害的动物。 5.检疫的作用: 1监督作用。 2防止染病动物及产品进入流通环节。 3消灭某些动物疫病的有效手段。 4维护动物及产品的对外贸易,保护人体健康。 6.检疫目的：在于防止动物传染病，寄生虫以及其他有害生物的传入，促进经济贸易，保护养殖业发展和人员身体健康。 7.动物疾病指动物机体在致病因素作用下而发生的损伤与抗损伤的复杂的相互斗争过程。在这个过程中，机体表现出一系列机能、代谢和形态结构的变化，这些变化使机体和外界环境之间的相对平衡发生紊乱，从而出现一系列的症状与体征，并造成动物机体生产与生殖性能下降和经济价值的降低。 8.疫病必须在一定条件、一定环境中病因作用于机体的结果。 9.疫病是完整机体的反应 :疾病的发生是机体内部器官之间和与之所处的外界环境之间的平衡发生紊乱，出现一系列的症状与体征。症状只是外部表现，任何变化都是完整机体的反应，并受到神经和体液因素的影响和调解。 9.疫病是一 种损伤与抗损伤的斗争过 程。生产性能的降低是动物 疫病的重要标志。 10.影响 流行病的因素1自然因素： 地理位置，气候，植被，土 壤等。可以作用于流行病的 各个环节，影响传播。 2饲 养管理：卫生，通风条件， 畜舍结构，饲养管理制度等。 3社会因素：重视程度和处 理措施。 11.流行过程中发 展的某些规律表现形式：散 发、地方流行、流行性、大 流行。季节性：在每年一定 季节发病率明显上升的现 象。周期性：某些传染病有 规律性地间隔一定时间发生 一次流行的现象。传染病发 展阶段根据发病过程一般分 为四个阶段潜伏期：又称 隐蔽期，指病因作用与机体 开始，只最早出现一般临床 症状为止的时间。前驱期： 又称先兆期或发病期，从出 现一般症状到出现主要症状 为止的时期。一般几小时或 1-2天。明显期：又称临 床经过期，特征症状充分暴 露出来的时期。转归期： 终结期，使疾病的结束阶段 （完全痊愈、不完全痊愈、 死亡）。 12.动物检疫：遵照 国家法律，用运强制性手段 和科学的技术和方法对于动 物产品和运输工具进行疫病 的检查，并且采取相应的措 施。防止疾病的发生。13. 检疫：内检产地检疫运输 检疫屠宰检疫外检动 物或动物产品出售或者调运 离开生产地由检疫部门到市 场或到制定地点检疫14.产 地检疫：集贸市场检疫（公 路铁路客运）收购15.国 境检疫：动物或动物产品输 入或输出国外的时候，由国 家检疫的部门实施的检疫 （进竟出境过境）16.检疫 处理：动物检疫部门经过有 关法律规定对经过检疫不合 格的动物或动产品所采取的 捕杀，焚烧，掩埋，化制的 一系列措施。17.检疫监督： 动物检疫监督机构依法对管 理相对遵守的动物检疫的法 律规章履行法定义务的检 查。18.管理相对人的方式验 证查物19..疫病的危害 性？答：某些疾病可以导致 大批动物死亡从而直接造成 巨大的经济损失。某些动 物的病死率虽然不高，但是 传播速度快，流行范围广， 可以导致动物的生产性能下 降和动物产品的质量下降， 从而间接造成动物的经济损 失某些动物疫病属于人兽 共患病范畴，不仅感染动物 还感染人可能影响人兽的健 康。对于动物疫病的检疫 和控制和捕杀是一个国家综 合国力的标尺，因此疫病的 防止需要大量的人力和物力 强大经济互动。动物疫病的 发生有可能回影响经济贸易 的开展甚至可引起国家地区 间的冲突，从而不利于国家 的安全20.感染病员微生物 进入动物机体或者在其集居 生长繁殖，并导致动物机体 产生一系列的病理反应过 程。21.易感性：动物机体对 某种传染病病原微生物缺乏 免疫力。22.传染病：是由一 定的病原微生物引起，具有 一定的潜伏期和临床症状并 具有一定的传染性和流行性 的疾病。23.传染病：能够产 生免疫，耐过动物能够产生 一定的免疫力24.感染的类 型：典型感染和非典型感染 25.感染根据病原微生物的 种类：单纯感染和混合感染 26.感染根据先后顺序分：原 发性和寄发性及持续性感染 27.感染根据过程分为：慢性 感染和寻常感染及非寻常感 染。传染病的发展阶段：潜 伏期，前驱期，转归期。28. 流行病学调查：通过询问调 查，现场察看，查阅历史资 料，实验室检查；本地区最 近是否进口了动物或是动物 产品；本地区政治经济文化 以及生产活动的基本情况和 当地对疫情的看法和态度； 了解当地动物饲养管理和放 牧以及畜禽防疫检疫现状。 29.免疫学诊断方法：（血清 学试验）并料的采集与处理； 涂片染色和镜检；病原分离 以及培养鉴定；动物接种试 验；30.可用变态反应诊断的 疾病：结核病；副结核病； 鼻疽；布鲁氏杆菌。31.病畜 的处理方法：扑杀对严重 危害人畜健康得传染病进行 屠宰的；治疗治疗方法有： 特异性疗法和抗生素疗法以 及高免血清治疗。32.抗生素 诊断：掌握抗生素的适应症； 禁止赖用抗生素；掌握抗生 素的用法用量使用范围以及 副作用；注意不同抗生素的 配伍应用。33.封锁原则：早 严快小34.检疫检验样 品：为了实施检疫检验，而 采集的动物组织样品称为 -35.检疫处理：动物检疫部 门依据有关法律法规对经检 不合格的动物或者动物产品 进行扑杀焚烧，深埋掩埋化 制一系列措施。36.疫情报告 制度：在发生某种传染性疾 病时，依据有关动物法律法 规将动物的疫情，流行情况 向有关部门及时汇报的制 度。37.检疫：若确证为恶性 传染病的动物不许屠宰；对 于检验出患有恶性传染病的 动物不能用于食用职能销 毁；对患有结核病布鲁氏病 在指定地点销毁，38.动物检 疫的目的：保护动物安全生 产；保护人类健康；促进经 济贸易的开展；保障消费者 食用合格的动物产品。39. 预防接种：对传染病发生的 地区或者某个受传染病威 胁的地区的易感动物注射疫 苗或类毒素等生物制剂以提 高动物抵抗力的措施。40. 消毒方法有：机械消毒；化 学消毒；生物性消毒；紫外 线消毒。41.切断传播途径： 消毒；灭鼠；预防接种；42. 诊断方法：临床学诊断；流 行病学诊断；病原学诊断； 免疫学诊断；分子生物学诊 断。43.周期性：传染病的发 生是隔一定时间再次流行和 发生，耐过动物产生一定的 免疫力；传染病在流行过动 物群体中随着新生动物的个 体增多，群体整体抵抗力下 降，从而导致疫病的发生； 随着引进动物的个体增多， 动物群体抵抗力下降也有可 能导致疫病的发生。44.防 疫方法：确诊有疫情时及时 向上级汇报，采取相应的措 施；查清传染源；切断传播 途径；保护易感动物。45. 紧急接种：对传染病发生地 区对疫区类尚未发生的易 感动物所进行的免疫接种。 46.接种动物的特点：传染病 的特异性而制定的47.疫源 地：有传染源排出的病原微 生物地区。48.疫区：在疫病 发生的地区49.自然疫源性 疫病：某种传染病如果其存 在病原微生物50、什么是抽 检？答：是指动物、动物产 品的检疫证明在有效期内， 从动物、动物产品中抽取部 分样品进行查验的监督检查 活动。51、什么是补检？答： 是指对未经检疫进入流通领 域的动物、动物产品进行的 检疫。52、什么是重检？答： 是指动物、动物产品的检疫 证明过期或证物不符或发现 患病及疑似疫病动物、染疫 及疑似染疫动物产品时进行 53.口蹄疫的主要临床症状 有哪些？答：牛，体温升高 40℃-41℃，水疱破裂后，降 为为常温。口粘膜、舌面等 形成水疱或糜烂，大量流泡 沫样口涎，挂于口角或下唇。 蹄冠、蹄叉、乳房等部出现 局部发红，微热、敏感等症 状，不久逐渐形成米粒大到 蚕豆大的水疱，水疱破裂后 表面出血，形成糜烂。羊多 见烂蹄冠。猪与牛相似，但 鼻盘常出现水疱，轻者一周， 重者二周或更长时间才能愈 合，病畜跛行，重者蹄匣脱 落，多取良性经过。幼畜常 发生恶性口蹄疫，死亡率高， 主要表现为出血性肠炎和心 肌麻痹而死。54.、猪、牛、 羊、鸡的正常体温是多少？ 答：猪38-39.5℃。牛 37.5-39.5℃。羊38-39.5℃ 鸡40-42℃55.、高致病性禽 流感的主要临床症状是什 么？答：表现为突然发病， 在短时间内可见食欲废绝， 体温骤升，精神高度沉郁， 鸡冠与肉垂水肿，发绀，腿 部鳞片有红色或紫黑色出 血。伴随着大批死亡，数天 内死亡率可达90%以上。 56.、慢性猪瘟的主要病理变 化是什么？答：在回肠和 结肠常有特征性的坏死和溃 疡变化，呈钮扣状，即通常 所说的"钮扣状溃疡"。的检 疫。1.牛瘟、口蹄疫、牛传 染性胸膜肺炎、炭疽病、羊 痘、狂犬病、马鼻疽、马媾 疫和猪瘟列为各成员国必须 申报的9种疫病。根据1999 年重新修订的《国际动物卫 生法典》，国际兽疫局将危害 畜牧业较严重、各成员国必 须通报的动物传染病和寄生 虫病分为A、B两类。A类疫 病15种传染病；B类疫病67 种传染病和寄生虫病一、调 查方式和方法 1、现场调查
实验动物学重点汇总
一、实验动物、近交系动物、转基因动物、屏障环境 实验动物(Laboratory Animal):是指经人工饲养、繁育，对其携带的微生物及寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚的，应用于科学研究、教学、生产和检定以及其他科学实验的动物。包括四个基本内涵： 1.遗传背景明确（近交系、封闭群、杂交群） 2.对携带微生物和寄生虫实施控制（普通动物、清洁动物、无特定病原体动物、无菌动物） 3.在特定的环境条件下，人工培育而成的动物 4.应用范围明确 近交系(Inbred Strain)是指至少连续经过20代以上全同胞兄妹或亲子交配，品系内所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先。近交系动物的近交系数（Inbreeding Coefficient）应大于99%。近交系动物的特点： 1．基因纯合性和同基因性 2．各品系均具有独特的特性 3．研究结果的一致性 4．可作为有价值的动物模型 5．具有标准实验材料特性 6. 遗传背景清楚 通过实验手段将新的遗传物质(外源性的基因片段)导入到动物的胚细胞中，并能稳定的遗传，由此获得的动物称为转基因动物。常用的方法有显微注射法、逆转录病毒载体法、胚胎干细胞介导法、精子载体法、电转移法、基因直接导入法等。 屏障环境：与外界隔离，是饲养清洁级动物和SPF级动物的设施。进入实验动物生存环境的空气须经过滤净化处理，其洁净度相对于10000级，进入屏障内的人、动物和物品如饲料、水、垫料
及实验用品等均需有严格的微生物控制。 二、实验动物环境设施分类 实验动物设施是指实验动物和动物实验设施的总和。一个设施可以大到动物中心或生产繁殖机构，小至某一实验动物室。总体的原则是提供实验动物最适宜的环境，保障实验动物的质量和为动物实验的准确性提供可靠保障。 （一）、按其功能分类 1．动物生产设施（Animal Production Facility）指用于实验动物的饲育繁殖、生产的建筑物、设备以及运营管理在内的总和。 2．动物实验设施（Animal Experimental Facility）指用于研究、试验、教学、生物制品、药品生产、检定等为目的进行实验动物饲育、试验的建筑物、设备以及运营管理在内的总和。 3．特殊动物实验设施（Special Animal Experimental Facility）指用于感染、毒理动物实验、病原微生物和细胞培养、重组DNA、转基因动物实验、克隆和胚胎干细胞、细胞实验和应用特殊化学物质等进行实验的建筑物、设备以及包括运营管理在内的总和。 （二）按微生物控制程度分类 1．普通环境（Open System） 直接与外界大气相通，是饲养普通级实验动物的场所。饲料、饮水要符合卫生要求，垫料要消毒，饲养室内要有防鼠、防昆虫等措施。 2．屏障环境（Barrier System） 与外界隔离，是饲养清洁级动物和SPF级动物的设施。进入实验动物生存环境的空气须经过滤净化处理，其洁净度相对于10000级，进入屏障内的人、动物和物品如饲料、水、垫料及实验用品等均需有严格的微生物控制。 3．隔离环境(Isolation System) 与外界环境完全隔离的环境内。工作人员通过隔离器上组装的无菌手套进行操作，不直接接触动
实验动物学基本概念
基本概念： 实验动物：指经人工培育，对其携带的微生物实行控制，遗传背景明确，来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定及其他科学实验的动物。 实验用动物：指一切用于科学实验的动物。 动物实验：为科研、教学、药物检定等目的，对实验动物进行物理、化学、生物等因素处理，观察其反应，获得实验数据，解决科研中问题的过程。 实验动物学：研究动物实验和实验动物的科学。 近交系及特点；经至少连续20代的全同胞兄妹交配或亲代与子代交配培育而成，品系内所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先。 比较医学：对实验动物与人类基本生命现象的异同，进行比较研究。通过研究实验动物与人类的共性探讨人类相应疾病的发生、发展规律。通过研究实验动物与人类的差异寻找治病的方法和手段。 动物福利：就是让动物在康乐的状态下生存,在无痛苦的状态下死亡。即动物无任何疾病、无行为异常、无心理紧张压抑和痛苦等。基本原则包括:让动物享有不受饥渴的自由、生活舒适的自由、不受痛苦伤害的自由、生活无恐惧感和悲伤感的自由以及表达天性的自由。实验动物学在生物医学研究中的意义：AEIR——实验动物、设备、信息、试剂。 实验动物的营养需要包括：维持需要（即维持动物正常体温、呼吸、心跳、基础代谢等各项基本生命活动及满足动物随意活动的需要）；生产需要（就是供给动物生长、妊娠、泌乳、产肉、产蛋等生产活动的需要。） 封闭群及特点；以非近亲交配方式繁殖生产的一个实验动物种群，在不从其外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖4代以上，称为一个封闭群，或叫远交群。 品种与品系；指具有相似的外貌特征，独特的生物学特性以及稳定的遗传性能，共同遗传来源和一定遗传结构的动物群体。 近交系数；指群体中某个个体通过遗传携带两个同源等位基因的概率。Fn=〔1-(1-△F)n 〕×100%（越亲越高） 全同胞△F=19.1% 同父异母△F=11.0% 堂兄妹△F=8% 亲子交配△F=19.1% 近交衰退；指在近交过程中动物群体由于基因分离和纯合而产生的不利于个体和群体发育的现象。包括： 1.由于有害隐性基因的纯合，出现遗传缺陷或某种疾病发生率的提高。 2.影响繁育如产子数下降、母性不良。 3.个体发育不良，对环境的适应性差。