脲酶Km值测定
实验十脲酶Km值测定
一、目的
脲酶是氮素循环的一种关键性酶，它催化尿素与水作用生成碳酸铵，在促进土壤和植物体内尿素的利用上起有重要作用。对其进行多方面研究，早已引起人们重视。通过本实验，学习脲酶Km值的测定方法。
二、原理
脲酶催化下列反应：
在碱性条件下，碳酸铵与奈氏试剂作用产生橙黄色的碘化双汞铵。在一定范围内，呈色深浅与碳酸铵量成正比。故可用比色法测定单位时间内酶促反应所产生的碳酸铵量，从而求得酶促反应速度。
在保持恒定的最适条件下，用相同浓度的脲酶催化不同浓度的尿素发生水合反应。在一定限度内，酶促反应速度与脲浓度成正比。用双倒数作图法可求得脲酶的Km值。
三、仪器、试剂和材料
1．仪器
（1）试管16 ×160mm 21支
（2）吸管0.5ml×15，lml×1，Zml×1，10ml×1
（3）漏斗5个
（4）721型分光光度计
（5）电热恒温水浴
（6）离心机
（7）康氏振荡机
2．试剂
（1）1／10 mol／L脲15.015g，水溶后定容至250ml。
（2）不同浓度脲液用1／10 mol／L 脲稀释成1／20、1／30、1／
40、l／50 mol／L的脲液。
（3）1 ／15 mo／L pH7．0磷酸盐缓冲液Na2HPO4 5.969g，水溶后定容至250ml。NaH2PO4 2.268g，水溶后定容至250ml。取Na2HPO4溶液60ml，NaH2PO4溶液40ml混匀，即为1／15 mol／L pH7.0磷酸盐缓冲液。
（4）10％硫酸锌20g ZnSO4溶于200ml蒸馏水中。
（5）0.5 mol／L氢氧化钠5g NaOH，水溶后定容至250ml。
（6）10％酒石酸钾钠20g酒石酸钾钠溶于200ml蒸馏水中。
（7）0.005 mol／L硫酸铵标准液准确称取0.6610g硫酸铵，水溶后定客至1000ml。
（8）30％乙醇60ml 95％乙醇，加水130ml，摇匀。
（9）奈氏试剂
①甲8.75g KI溶于50ml水中。
②乙8.75g KI溶于50ml水中。
③丙7.5g HgC12溶于150ml水中。
④丁 2.5g HgC12溶于50ml水中。
⑤甲与丙混合，生成朱红色沉淀。用蒸馏水以倾泻法洗沉淀几次，洗好
后将乙液倒入，令沉淀溶解。然后将丁液逐滴加入，至红色沉淀出现摇动也不消失为止。定容至250ml。
⑤称NaOH 52.5g，溶于200ml蒸馏水中，放冷。
①混合（5）、（6），并定容至500ml。上清液转入棕色瓶中。存暗处备用。
3．材料
大豆粉
四、操作步骤
（1）脲酶提取称大豆粉1g，加30％乙醇25ml，振荡提取lh。4000r／min 离心10min，取上清液备用。
（2
在旋涡振荡器上混匀各管，静置5min后过滤。
（3
迅速混匀各管，然后在460urn比色，光径1cm。
（4）标准曲线的制作，按下表进行。
五、结果处理
在标准曲线上查出脲酶作用于不同浓度脲液生成碳酸胺的量，然后取单位时间生成碳酸铵量的倒数即1／V为纵坐标，以对应的脲液浓度的倒数即1/〔S〕为横坐标作双倒数图，求出Km值。
六、注意事项
（1）准确控制各管酶反应时间尽量一致。
（2）按表中顺序加入各种试剂。
（3）奈氏试剂腐蚀性强，勿洒在试管架和实验台面上。
七、思考题
除了双倒数作图法，还有哪些方法可求得Km值？
参考文献
陈破垄，生物化学研究技术。北京：中国农业出版社，1995
郑洪元，张德生。土壤动态生物化学研究法。北京：科学出版社，1982
脲酶活力测定(纳氏试剂比色法)
实验四 脲酶活力测定（纳氏试剂比色法） 一、实验原理 脲酶催化尿素水解成氨和二氧化碳，最适反应pH 7.0 。反应式： (NH 2)2CO+ H 2 O 脲酶 2NH 3 + CO 2 氨与纳氏试剂反应生成黄色配合物，其吸光度与氨浓度成正比，故可用以测定服酶的活力大小。反应式： NH 3·H 2O ＋2K 2HgI 4 + 3KOH HgO ·HgNH 2I ＋7KI + 3H 20 （纳氏试剂） （碘化氨氧合汞） 二、实验步骤 将待测酶液用磷酸盐缓冲液适当稀释后，按下述顺序操作： 取3 支干净干燥试管，编号：1、空白；2、标准；3、样品。按下表步骤加入实（7）从样品管加尿素开始计时，准确反应5min ，立即向样品管（3号管）加1 mol ·L -1 H 2SO 4 1.00mL ，终止反应。 三、结果计算 脲酶活力（U · mL -1) = ( A 3 - A 1 ）* 标准管中的NH 3微摩尔数 ( A 2 - A 1 ) * min * 酶样品毫升数 式中：n 为酶样品的稀释倍数 四、仪器和试剂 1 、分光光度计、恒温水浴器、试管等。 2 、“有机溶剂沉淀法制备大豆脲酶”实验中制备的脲酶提取液和粗酶液，用磷
酸盐缓冲液适当稀释。 3 、3 ％尿素底物溶液：3g 高纯尿素用磷酸盐缓冲液溶解，并定容至100mL 。 4 、磷酸盐缓冲液（pH7.0）：6.70 g Na2HPO4 ·2 H2O , 3.2 5 g KH2PO4 ，溶于蒸馏水并定容至100 mL 。 5 、1 mol·L -1 H 2SO 4 溶液：56mL 浓硫酸，缓慢加入盛有约600 mL 蒸馏水的容 量瓶中，冷却后加水定容至1000mL。 6 、硫酸铵标准溶液：称取在60°C干燥至恒重的分析纯硫酸铵1.322g，蒸馏水溶解，并定容至100mL 。此溶液含NH3为40μmol·mL-1。 7 、纳氏试剂：分别溶解3 . 5g 氯化高汞（HgCl2）于20mL热蒸馏水，10g碘化钾于5 mL水中，再将前者慢慢倒入碘化钾溶液中，不断搅拌，直至出现微红色的少量沉淀为止。向此液中加70 mL30% KOH ，不断搅拌，再滴HgCl2溶液至出现红色沉淀为止。混匀，静置过夜，倾出清液贮于棕色试剂瓶（用橡皮塞）中放置暗处保存。 在有碘化汞情况下，可溶10 g HgI2和7 g KI于少量蒸馏水中，另溶16 gNaOH 于50mL 水中，待冷却后，将前者慢慢倒入其中，边加边搅拌，最后用水定容至100 mL 。过夜澄清后，倾出上清液存于棕色试剂瓶中。（配置方法之二）
实验五 固定化脲酶活力的测定
实验五固定化脲酶活力的测定 一、实验原理 固定化酶的活力测定方法，有振荡测定法、酶柱测定法和连续测定法等多种方法。常用的振荡测定法，是将一定质量的固定化酶放在一定形状和大小的容器中，加入一定量的底物溶液，在固定化酶的最适反应条件下，振荡或搅拌反应系统，反应一定的时间后，取出一定量的反应液，进行酶活力测定。酶活力测定的反应原理和方法与溶液酶活力的测定方法相同：脲酶催化尿素水解生成氨和二氧化碳，最适反应pH 7.0。氨与纳氏试剂反应生成黄色配合物，其吸光度与氨浓度成正比。故可测定脲酶活力的大小。 二、仪器和试剂 1、水浴锅，分光光度计，移液管，比色皿及其他常规仪器 2、实验四制备的固定化脲酶 3、磷酸缓冲液（pH 7.0）：6.7 g Na2HPO4.2H2O，3.25 g KH2PO4，溶于蒸馏 水并定容至100 ml 4、3%尿素溶液：3 g尿素溶于磷酸缓冲液中，并定容至100 ml 5、标准氨溶液：称取在60℃干燥至恒重的分析纯硫酸铵1.322 g，蒸馏水溶 解并定容至100 ml。此溶液含NH3为40 μM 6、1 M H2SO4溶液：56 ml浓硫酸，缓慢加入盛有600 ml蒸馏水容量瓶中， 冷却后加水定容至1000 ml 7、纳氏试剂：称取16 g氢氧化纳，溶于50 mL水中，充分冷却至室温。另 称取7 g碘化钾和10 g碘化汞(HgI2)溶于水，然后将此溶液在搅拌下徐徐 注入氢氧化纳溶液中，用水稀释至100 mL，过夜澄清后，倒出上清液贮 于棕色瓶中，密塞保存。 三、实验步骤 1、将实验四中得到的凝胶包埋脲酶重新称重（m1）。取0.3-0.5 g，切碎。 2、取两支试管编号（1号空白管，3号样品管），分别称取凝胶包埋脲酶100 mg（m2）置于两管中，各加入蒸馏水9 ml，磷酸缓冲液1 ml，于30℃水 浴中保温5 min。
脲酶的测定方法
一、脲酶测定(比色法) 脲酶是对尿素转化起关键作用的酶，它的酶促反应产物是可供植物利用的氮源，它的活性可以用来表示土壤供氮能力。 1、试剂配制： （1）pH6.7柠檬酸盐溶液：取368g柠檬酸溶于600mL蒸馏水中，另取295g 氢氧化钾溶于水，再将两种溶液合并，用1N氢氧化钠将pH调至6.7， 并用水稀释至2L。 （2）苯酚钠溶液：称取62.5g苯酚溶于少量乙醇中，加2mL甲醇和18.5mL 丙酮，后用乙醇稀释至100mL（A液），保存再冰箱中。称取27g氢 氧化钠溶于100mL水中（B液），保存于冰箱中。使用前，取A、B 两液各20mL混和，并用蒸馏水稀释至100mL备用。 （3）次氯酸钠溶液：用水稀释制剂至活性氯的浓度为0.9％，（1.9g次氯酸钠溶于1L水中）溶液稳定。 （4）10％尿素溶液：10g尿素溶于100mL水中。 （5）N的标准溶液：精确称取0.4717g硫酸铵溶于水稀释至1L，则得1mL 含0.1mgN的标液，再将此液稀释10倍制成氮工作液（0.01mg/mL）。 2、操作步骤 称取5ｇ土置于50mL容量瓶中,加1mL甲苯处理,加塞塞紧轻摇15ｍｉｎ; 往瓶中加入5mL10%尿素液和10mL的柠檬酸盐缓冲液(ｐＨ6.7),仔细混匀。在37℃恒温箱中培养24ｈ。然后用热至38℃的蒸馏水稀释至刻度(甲苯应浮在刻度以上),摇荡,将悬液过滤。取滤液1mL置于50mL容量瓶中,用蒸馏水稀释至10mL,然后加入4mL苯酚钠溶液,并立即加入3mL次氯酸钠溶液，加入每一试剂后,立 即将混合物摇匀,20ｍｉｎ后,将混合物稀释至刻度,在波长578ｎｍ处测定吸光值。脲酶活性以样品所得的吸光值减去对照样品吸光值之差,根据标准曲线求出氨态 氮量。
两种脲酶活性定性测定方法及比较
两种脲酶活性定性测定方法及比较 随着膨化技术在饲料工业中推广普及，越来越多的饲料生产商在配方中使用膨化大豆粉，与其它蛋白资源一样，大豆的适度熟化非常重要，熟化程度低会含抗胰蛋白酶等营养抑制因子，熟化度过高又会导致氨基酸利用率低。判断膨化大豆粉是否合格的主要指标是脲酶活性。脲酶活性是指：在30±5℃和PH值等于7的条件下，每分钟每克膨化大豆分解尿素所释放的氨态氮的毫克数。脲酶本身无营养意义，但它与抗胰蛋白酶的含量接近，并且遇热变性失活的程度与抗胰蛋白酶相似，因此，尿酶活性用来作为膨化大豆加热是否合适的间接估测指标。脲酶活性没有负值，最低为0。在我国现行的国标推荐值为0.3，在美国一般认为以不超过0.2为宜，并且针对日粮中有尿素的反刍动物而言不得超过0.12，当然对于家禽和猪0.3或稍高都可以接受。国内很多大企业一般均采用0.2。 实验室定量测定脲酶活性的方法较复杂，有滴定法和pH增值法两种，已有研究表明两者对同一样品测得的数值也不相等。目前国内绝大部分企业都采用快速而简单的简易判定方法定性地估测脲酶活性，一般来说，主要有如下两种方法。 一.液态法 1.原理：大豆制品中的脲酶可使尿素分解成氨，会使酚红指示剂改变颜色。 2.试剂 2.1尿素:GB696，分析纯。 2.2酚红指示剂 2.2.1称取0.1g酚红，加1.43mL0.1mol/L氢氧化钠溶液，在研钵中研磨以促溶解； 2.2.2转移至250mL定量瓶中，加蒸馏水至刻度，摇匀备用。 3.操作方法 3.1取0.2g粉末样品，置于25mL比色管中。 3.2加0.02g尿素，加酚红指示剂2滴，再加水20mL，充分摇匀15s。 3.3记录粉红色出现时间，并根据时间判断尿酶活性，颜色出现时间应少于15min。 颜色出现时间脲酶活性 1min 极强 1～5min 强 5～15min 稍有 15min 无
土壤脲酶的测定方法
土壤脲酶的测定方法 脲酶试验原理：存在于大多数细菌、真菌和高等植物里。它是一种酰胺酶、能酶促有机物质分子中酶键的水解。脲酶的作用是极为专性的，它仅能水解尿素，水解的最终产物是氨和碳酸。土壤脲酶活性，与土壤的微生物数量、有机物质含量、全氮和速效磷含量呈正相关。根际土壤脲酶活性较高，中性土壤脲酶活性大于碱性土壤。人们常用土壤脲酶活性表征土壤的氮素状况。土壤中脲酶活性的测定是以脲素为基质经酶促反应后测定生成的氨量，也可以通过测定未水解的尿素量来求得。本方法是测定生成的氨量。 试剂： 1）甲苯 2）10%尿素：称取10g尿素，用水溶至100ml。 3）柠檬酸盐缓冲液（PH6.7）：184克柠檬酸和147.5克氢氧化钾溶于蒸馏水。将两溶液合并，用1mol/LNaOH将PH调至6.7，用水稀释至1000毫升。 4）苯酚钠溶液（1.35mol/L）：62.5克苯酚溶于少量乙醇，加2毫升甲醇和18.5毫升丙酮，用乙醇稀释至100毫升（A），存于冰箱中；27克NaOH溶于100毫升水（B）。将AB溶液保存在冰箱中。使用前将2溶液各20毫升混合，用蒸馏水稀释至100毫升。 5）次氯酸钠溶液：用水稀释试剂，至活性氯的浓度为0.9%，溶液稳定。 6）氮的标准溶液：a 精确称取0.4717克硫酸铵溶于水并稀释至
1000ml，得到1ml含有0.1mg氮的标准液 标准曲线绘制：吸取配置好的氮溶液10ml，定容至100ml，即稀释了10倍，吸取1，3，5，7，9，11，13ml移至50ml容量瓶，加水至20ml，再加入4ml苯酚钠，仔细混合，加入3ml次氯酸钠，充分摇荡，放置20分钟,用水稀释至刻度。将着色液在紫外分光光度计上于578nm处进行比色测定，以标准溶液浓度为横坐标，以光密度值为纵坐标绘制曲线图。取新鲜土壤7份，每份30g，装于棕色广口瓶中，先将1，3－二氯丙烯溶于丙酮（定量），6份分别加入不同浓度均为1.5ml的1，3－二氯丙烯，使之在土壤中的浓度分别为1、10、50、100、200、500μg/g，另1份相应加入1.5ml的丙酮作为对照，然后调节土壤的含水量至最大田间持水量的60%（记录此时重量，以便补充水分）。放置于25℃恒温培养箱，培养后第0d、1d，5d，10d（前10d密封，后来测定的敞口）、20d，30d，40d，50d分别取土样检测脲酶的活性。取样前，反复旋转广口瓶，混匀土样，一个处理随机取3个重复。 1) 称取5g过1mm筛的风干土样于100ml容量瓶中 2)向容量瓶中加入1ml甲苯（以能全部使土样湿润为度）并放置15分钟 3)之后加入10ml 10％尿素溶液和20ml柠檬酸缓冲液（PH6.7），并仔细混合 4)将容量瓶放入37摄氏度恒温箱中，培养24h 5)培养结束后，用热至38摄氏度水稀释至刻度，仔细摇荡，并将悬液用致密滤纸过滤于三角瓶中。
脲酶活性的测定
大豆制品中脲酶活性的测定 定性法： 酚红法 一、原理： 酚红指示剂在pH 6.4-8.2时由黄变红，大豆制品中所含的尿素酶在pH=7.0，T=30℃时可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红的时间长短来判断脲酶活性的大小。 二、仪器和试剂： 粉碎机：粉碎时不产生强烈发热； 分析天平； 25ml纳式比色管； 恒温水浴锅； 0.1%酚红指示剂：0.1g苯酚红溶于100ml 95%乙醇溶液； 结晶尿素； 三、方法： 将试样粉碎，准确称取0.05±0.001g试样于25ml纳式比色管，加入0.2g结晶尿素及5滴酚红指示剂，加入25ml蒸馏水，摇动10s，立即置于30±0.5℃水浴锅中，开始计时，观察溶液颜色变化，5min 后，取出比色管，摇匀，观察溶液颜色。 空白试验：不加尿素，其他同上。 品质判定：如果溶液为明显的粉红色，则认为该大豆制品脲酶活性超标，为不合格产品。
?0-1min变红，活性非常强（＞1.0）； ?1-2min变红，活性大概0.5-1.0； ?2-5min变红，活性大概0.3-0.5。 四、注意事项： 1.粉碎样品时，不应产生大量热，否则会影响结果判定； 2.称量样品时，一定要将样品混合均匀，否则会造成试验误差； 3.试样和空白试验同时操作，过程要迅速，防止时间影响。尿素-酚红法 一、原理： 酚红指示剂在pH 6.4-8.2时由黄变红，大豆制品中所含的尿素酶可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红样品占所有样品的比例来判断脲酶活性的大小。 二、仪器和试剂： 表面皿； 0.2N氢氧化钠溶液：称取0.8g氢氧化钠溶于100ml蒸馏水； 1.0N硫酸溶液：移取7.0ml浓硫酸溶于500ml蒸馏水； 尿素-酚红试剂：用500ml烧杯将0.8g酚红溶于20ml 0.2N氢氧化钠溶液，用蒸馏水稀释至约300ml，加入60g尿素，并溶解之，转移至2L容量瓶，冲洗烧杯数次,加蒸馏水至约1.5L，加入9.4ml 1.0N 硫酸溶液，用蒸馏水定容至2L；此时溶液应具有明亮的琥珀色；（过段时间溶液会变为深橘红色，可滴入稀硫酸溶液搅拌之，直至溶液再次变为琥珀色）
脲酶活性
随着膨化技术在饲料工业中推广普及，越来越多的饲料生产商在配方中使用膨化大豆粉，与其它蛋白资源一样，大豆的适度熟化非常重要，熟化程度低会含抗胰蛋白酶等营养抑制因子，熟化度过高又会导致氨基酸利用率低。判断膨化大豆粉是否合格的主要指标是脲酶活性。脲酶活性是指：在30±5℃和PH值等于7的条件下，每分钟每克膨化大豆分解尿素所释放的氨态氮的毫克数。脲酶本身无营养意义，但它与抗胰蛋白酶的含量接近，并且遇热变性失活的程度与抗胰蛋白酶相似，因此，尿酶活性用来作为膨化大豆加热是否合适的间接估测指标。脲酶活性没有负值，最低为0。在我国现行的国标推荐值为0.3，在美国一般认为以不超过0.2为宜，并且针对日粮中有尿素的反刍动物而言不得超过0.12，当然对于家禽和猪0.3或稍高都可以接受。国内很多大企业一般均采用0.2。 实验室定量测定脲酶活性的方法较复杂，有滴定法和pH增值法两种，已有研究表明两者对同一样品测得的数值也不相等。目前国内绝大部分企业都采用快速而简单的简易判定方法定性地估测脲酶活性，一般来说，主要有如下两种方法。 一.液态法 1.原理：大豆制品中的脲酶可使尿素分解成氨，会使酚红指示剂改变颜色。 2.试剂 2.1尿素:GB696，分析纯。 2.2酚红指示剂 2.2.1称取0.1g酚红，加1.43mL0.1mol/L氢氧化钠溶液，在研钵中研磨以促溶解； 2.2.2转移至250mL定量瓶中，加蒸馏水至刻度，摇匀备用。 3.操作方法 3.1取0.2g粉末样品，置于25mL比色管中。 3.2加0.02g尿素，加酚红指示剂2滴，再加水20mL，充分摇匀15s。 3.3记录粉红色出现时间，并根据时间判断尿酶活性，颜色出现时间应少于 15min。 颜色出现时间脲酶活性 1min 极强
生化实验六脲酶测定参考
实验六脲酶测定 一、实验原理 有些生物化学反应中指示反应完成，经常使用直观的指示剂指示，如氧化还原指示剂和酸碱指示剂。氧化还原指示剂是氧化状态下和还原状态下各有不同颜色；酸碱指示剂是指示生物化学反应前后溶液的酸碱度变化，不同酸碱度各有不同颜色。 这里进行一次酶促反应试验，人的血液中和尿液中都含有尿素，尿素的含量变化是许多病变的重要指标。尿酶可作用于尿素，它的反应如下： (NH2)2C=O + H2O 尿酶2NH3 +CO2 尿酶可以定量测定尿素含量，尿酶通常可从大豆粉中提取，本试验用大豆粉和玉米粉提取尿酶，通过上述反应观察两种植物种子中尿酶的含量。在与底物尿素的作用反应中，分别加入三种指示剂A、B、C，但在制备指示剂的过程中忘记了瓶号，只知道三种是中性红、百里香酚兰和亚甲兰，其中有酸碱指示剂和氧化还原指示剂。 二、实验目的 1、确定两种植物种子中谁含大量的脲酶； 2、分出谁是氧化还原指示剂，谁是酸碱指示剂。 三、实验器材及试剂 1、仪器设备 电子天平，4只100ml三角瓶，14支试管，试管架，2个三角漏斗，50ml量筒，玻璃棒，移液器及吸头，脱脂棉 2、试剂 30%乙醇溶液，2%尿素溶液，指示剂A,B,C(中性红，亚甲蓝，百里香酚蓝） 3、材料 大豆粉，玉米粉 四、实验准备 仪器设备：电子天平（每五组一个，共5个/班），4只100ml三角瓶（共需要100个/班），14支试管（共需要350支/班），试管架（25个/班），2个三角漏斗（共需要50个/班），50ml量筒（25个/班），玻璃棒（25根/班），移液器及吸头（蓝，黄吸头各一盒，每种各25盒/班），脱脂棉（若干每组，尽量多一些） 试剂：30%乙醇溶液（80ml/组，共2L/班），2%尿素溶液（12ml/组，共300ml/班），指示剂A,B,C(中性红，亚甲蓝，百里香酚蓝）（各需2滴或3滴，适合即可）
脲酶Km值测定
实验十脲酶Km值测定 一、目的 脲酶是氮素循环的一种关键性酶，它催化尿素与水作用生成碳酸铵，在促进土壤和植物体内尿素的利用上起有重要作用。对其进行多方面研究，早已引起人们重视。通过本实验，学习脲酶Km值的测定方法。 二、原理 脲酶催化下列反应： 在碱性条件下，碳酸铵与奈氏试剂作用产生橙黄色的碘化双汞铵。在一定范围内，呈色深浅与碳酸铵量成正比。故可用比色法测定单位时间内酶促反应所产生的碳酸铵量，从而求得酶促反应速度。 在保持恒定的最适条件下，用相同浓度的脲酶催化不同浓度的尿素发生水合反应。在一定限度内，酶促反应速度与脲浓度成正比。用双倒数作图法可求得脲酶的Km值。 三、仪器、试剂和材料 1．仪器 （1）试管16 ×160mm 21支 （2）吸管0.5ml×15，lml×1，Zml×1，10ml×1 （3）漏斗5个 （4）721型分光光度计 （5）电热恒温水浴 （6）离心机 （7）康氏振荡机 2．试剂 （1）1／10 mol／L脲15.015g，水溶后定容至250ml。 （2）不同浓度脲液用1／10 mol／L 脲稀释成1／20、1／30、1／ 40、l／50 mol／L的脲液。 （3）1 ／15 mo／L pH7．0磷酸盐缓冲液Na2HPO4 5.969g，水溶后定容至250ml。NaH2PO4 2.268g，水溶后定容至250ml。取Na2HPO4溶液60ml，NaH2PO4溶液40ml混匀，即为1／15 mol／L pH7.0磷酸盐缓冲液。 （4）10％硫酸锌20g ZnSO4溶于200ml蒸馏水中。 （5）0.5 mol／L氢氧化钠5g NaOH，水溶后定容至250ml。 （6）10％酒石酸钾钠20g酒石酸钾钠溶于200ml蒸馏水中。
脲酶定性的实验
脲酶定性的实验 随着膨化技术在饲料工业中推广普及,越来越多的饲料生产商在配方中使用膨化大豆粉,与其它蛋白资源一样,大豆的适度熟化非常重要,熟化程度低会含抗胰蛋白酶等营养抑制因子,熟化度过高又会导致氨基酸利用率低. 判断膨化大豆粉是否合格的主要指标是脲酶活性.脲酶活性是指：在30±5℃和PH值等于7的条件下,每分钟每克膨化大豆分解尿素所释放的氨态氮的毫克数.脲酶本身无营养意义,但它与抗胰蛋白酶的含量接近,并且遇热变性失活的程度与抗胰蛋白酶相似,因此,尿酶活性用来作为膨化大豆加热是否合适的间接估测指标.脲酶活性没有负值,最低为0.在我国现行的国标推荐值为0.3,在美国一般认为以不超过0.2为宜,并且针对日粮中有尿素的反刍动物而言不得超过0.12,当然对于家禽和猪0.3或稍高都可以接受.国内很多大企业一般均采用0.2. 实验室定量测定脲酶活性的方法较复杂,有滴定法和pH增值法两种,已有研究表明两者对同一样品测得的数值也不相等.目前国内绝大部分企业都采用快速而简单的简易判定方法定性地估测脲酶活性,一般来说,主要有如下两种方法. 一.液态法 1.原理：大豆制品中的脲酶可使尿素分解成氨,会使酚红指示剂改变颜色. 2.试剂 2.1尿素:GB696,分析纯. 2.2酚红指示剂 2.2.1称取0.1g酚红,加1.43mL0.1mol/L氢氧化钠溶液,在研钵中研磨以促溶解； 2.2.2转移至250mL定量瓶中,加蒸馏水至刻度,摇匀备用. 3.操作方法 3.1取0.2g粉末样品,置于25mL比色管中. 3.2加0.02g尿素,加酚红指示剂2滴,再加水20mL,充分摇匀15s. 3.3记录粉红色出现时间,并根据时间判断尿酶活性,颜色出现时间应少于15min. 颜色出现时间脲酶活性 1min 极强 1～5min 强 5～15min 稍有 15min 无 同时作空白对照试验. 样品空白(不加尿素)及试剂空白(不加样品),只有上述空白正常时,即酚红指示剂不改变颜色,试验结果才是可靠的. 一般企业认为7、8分钟变色较为合适. 二、半固态法 1.原理：大豆制品中的脲酶可使尿素分解成氨,会使酚红指示剂改变颜色. 2.试剂 2.1稀硫酸（H2SO4）0.2N.
脲酶测定方法
这是测得的水稻土壤的几种酶的方法，应该说许多作物酶的方法应该大同小异，我就把几种酶的测定集中在一块了。若有雷同，也是不可避免的。 脲酶urease（水解酶）： 脲酶试验原理： 存在于大多数细菌、真菌和高等植物里。它是一种酰胺酶、能酶促有机物质分子中酶键的水解。脲酶的作用是极为专性的，它仅能水解尿素，水解的最终产物是氨和碳酸。土壤脲酶活性，与土壤的微生物数量、有机物质含量、全氮和速效磷含量呈正相关。根际土壤脲酶活性较高，中性土壤脲酶活性大于碱性土壤。人们常用土壤脲酶活性表征土壤的氮素状况。 土壤中脲酶活性的测定是以脲素为基质经酶促反应后测定生成的氨量，也可以通过测定未水解的尿素量来求得。本方法是测定生成的氨量。 试剂：1）甲苯 2）10%尿素：称取10g尿素，用水溶至100ml。 3）柠檬酸盐缓冲液（PH6.7）：184克柠檬酸和147.5克氢氧化钾溶于蒸馏水。将两溶液合并，用1mol/LNaOH将PH调至6.7，用水稀释至1000毫升。 4）苯酚钠溶液（1.35mol/L）：62.5克苯酚溶于少量乙醇，加2毫升甲醇和18.5毫升丙酮，用乙醇稀释至100毫升（A），存于冰箱中；27克NaOH溶于100毫升水（B）。将AB溶液保存在冰箱中。使用前将2溶液各20毫升混合，用蒸馏水稀释至100毫升。 5）次氯酸钠溶液：用水稀释试剂，至活性氯的浓度为0.9%，溶液稳定。 6）氮的标准溶液：a 精确称取0.4717克硫酸铵溶于水并稀释至1000ml，得到1ml含有0.1mg氮的标准液 标准曲线绘制：吸取配置好的氮溶液10ml，定容至100ml，即稀释了10倍，吸取1，3，5，7，9，11，13ml移至50ml容量瓶，加水至20ml，再加入4ml苯酚钠，仔细混合，加入3ml次氯酸钠，充分摇荡，放置20分钟,用水稀释至刻度。将着色液在紫外分光光度计上于578nm处进行比色测定，以标准溶液浓度为横坐标，以光密度值为纵坐标绘制曲线图。 取新鲜土壤7份，每份30g，装于棕色广口瓶中，先将1，3－二氯丙烯溶于丙酮（定量），6份分别加入不同浓度均为1.5ml的1，3－二氯丙烯，使之在土壤中的浓度分别为1、10、50、100、200、500μg/g，另1份相应加入1.5ml 的丙酮作为对照，然后调节土壤的含水量至最大田间持水量的60%（记录此时重量，以便补充水分）。放置于25℃恒温培养箱，培养后第0d、1d，5d，10d （前10d密封，后来测定的敞口）、20d，30d，40d，50d分别取土样检测脲酶的活性。取样前，反复旋转广口瓶，混匀土样，一个处理随机取3个重复。
脲酶测定方法
脲酶urease（水解酶）： 脲酶试验原理： 存在于大多数细菌、真菌和高等植物里。它是一种酰胺酶、能酶促有机物质分子中酶键的水解。脲酶的作用是极为专性的，它仅能水解尿素，水解的最终产物是氨和碳酸。土壤脲酶活性，与土壤的微生物数量、有机物质含量、全氮和速效磷含量呈正相关。根际土壤脲酶活性较高，中性土壤脲酶活性大于碱性土壤。人们常用土壤脲酶活性表征土壤的氮素状况。 土壤中脲酶活性的测定是以脲素为基质经酶促反应后测定生成的氨量，也可以通过测定未水解的尿素量来求得。本方法是测定生成的氨量。 试剂：1）甲苯 2）10%尿素：称取10g尿素，用水溶至100ml。 3）柠檬酸盐缓冲液（PH6.7）：184克柠檬酸和147.5克氢氧化钾溶于蒸馏水。将两溶液合并，用1mol/LNaOH将PH调至6.7，用水稀释至1000毫升。 4）苯酚钠溶液（1.35mol/L）：62.5克苯酚溶于少量乙醇，加2毫升甲醇和18.5毫升丙酮，用乙醇稀释至100毫升（A），存于冰箱中；27克NaOH溶于100毫升水（B）。将AB溶液保存在冰箱中。使用前将2溶液各20毫升混合，用蒸馏水稀释至100毫升。 5）次氯酸钠溶液：用水稀释试剂，至活性氯的浓度为0.9%，溶液稳定。 6）氮的标准溶液：a 精确称取0.4717克硫酸铵溶于水并稀释至1000ml，得到1ml含有0.1mg氮的标准液 标准曲线绘制：吸取配置好的氮溶液10ml，定容至100ml，即稀释了10倍，吸取1，3，5，7，9，11，13ml移至50ml容量瓶，加水至20ml，再加入4ml苯酚钠，仔细混合，加入3ml次氯酸钠，充分摇荡，放置20分钟,用水稀释至刻度。将着色液在紫外分光光度计上于578nm处进行比色测定，以标准溶液浓度为横坐标，以光密度值为纵坐标绘制曲线图。 取新鲜土壤7份，每份30g，装于棕色广口瓶中，先将1，3－二氯丙烯溶于丙酮（定量），6份分别加入不同浓度均为1.5ml的1，3－二氯丙烯，使之在土壤中的浓度分别为1、10、50、100、200、500μg/g，另1份相应加入1.5ml 的丙酮作为对照，然后调节土壤的含水量至最大田间持水量的60%（记录此时重量，以便补充水分）。放置于25℃恒温培养箱，培养后第0d、1d，5d，10d （前10d密封，后来测定的敞口）、20d，30d，40d，50d分别取土样检测脲酶的活性。取样前，反复旋转广口瓶，混匀土样，一个处理随机取3个重复。 1) 称取5g过1mm筛的风干土样于100ml容量瓶中。 2) 向容量瓶中加入1ml甲苯（以能全部使土样湿润为度）并放置15分钟 3) 之后加入10ml 10％尿素溶液和20ml柠檬酸缓冲液（PH6.7），并仔细混合 4) 将容量瓶放入37摄氏度恒温箱中，培养24h 5) 培养结束后，用热至38摄氏度水稀释至刻度，仔细摇荡，并将悬液用致密滤纸过滤于三角瓶中。
土壤过氧化氢酶、过氧化物酶、磷酸酶、蔗糖酶、脲酶测定方法
土壤酶活性测定方法 土壤脲酶的测定方法（苯酚钠—次氯酸钠比色法） 一、原理 脲酶存在于大多数细菌、真菌和高等植物里。它是一种酰胺酶作用是极为专性的，它仅能水解尿素，水解的最终产物是氨和二氧化碳、水。土壤脲酶活性与土壤的微生物数量、有机物质含量、全氮和速效磷含量呈正相关。根际土壤脲酶活性较高，中性土壤脲酶活性大于碱性土壤。人们常用土壤脲酶活性表征土壤的氮素状况。 土壤中脲酶活性的测定是以脲素为基质经酶促反应后测定生成的氨量，也可以通过测定未水解的尿素量来求得。本方法以尿素为基质，根据酶促产物氨与苯酚-次氯酸钠作用生成蓝色的靛酚，来分析脲酶活性。 二、试剂 1）甲苯 2）10%尿素：称取10g尿素，用水溶至100ml。 3）PH6.7柠檬酸盐缓冲液：184g柠檬酸和147.5g氢氧化钾（KOH）溶于蒸馏水。将两溶液合并，用1mol/LNaOH将PH调至6.7，用水稀释定容至1000ml。4）苯酚钠溶液（1.35mol/L）：62.5g苯酚溶于少量乙醇，加2ml甲醇和18.5ml 丙酮，用乙醇稀释至100ml（A液），存于冰箱中；27gNaOH溶于100ml水（B 液）。将A、B溶液保存在冰箱中。使用前将A液、B液各20ml混合，用蒸馏水稀释至100ml。 5）次氯酸钠溶液：用水稀释试剂，至活性氯的浓度为0.9%，溶液稳定。 6）氮的标准溶液：精确称取0.4717g硫酸铵溶于水并稀释至1000ml，得到1ml含有0.1mg氮的标准液。绘制标准曲线时，再将此溶液稀释10倍供用。 三、操作步骤 标准曲线制作：分别吸取稀释后的标准液0、1、3、5、7、9、11、13ml，移于50ml容量瓶中，然后补加蒸馏水至20ml。再加入4ml苯酚钠溶液和3ml 次氯酸钠溶液，随加随摇匀。20min后显色，定容。1h内在分光光度计上于578nm 波长处比色。然后以氮工作液浓度为横坐标，吸光值为纵坐标，绘制标准曲线。 称取5g土样于50ml三角瓶中，加1ml甲苯。 15min后加10ml 10%尿素
MMFSCNJ出口大豆饼粕脲酶活性测定方法pH增值法盐酸中和法
MM_FS_CNJ_0315出口大豆饼粕脲酶活性 pH增值法盐酸中和法 MM_FS_CNJ_0315 出口大豆饼粕脲酶活性测定方法pH增值法、盐酸中和法 1.适用范围 本方法适用于大豆饼粕类脲酶活性的测定。 2.方法一 .术语 脲酶活性：在规定的操作条件下，使试样中的脲酶分解尿素释放出氨基氮，以溶液pH值的变量表示。 .原理概要 将研细的试样与缓冲尿素溶液混合，在30℃作用30min后，测定溶液的pH 值。 .主要试剂和仪器 主要试剂 磷酸缓冲溶液：将 KH 2PO 4 和 K 2 HPO 4 溶解并稀释至1000mL。临用前，以强酸 或强碱调节其pH至，其使用期限不超过90d； 缓冲的尿素溶液：溶15g尿素（NH 2CONH 2 ）于500mL磷酸缓冲溶液中。加入 5mL甲苯，用于防腐和防止霉菌生长。按上法调节其pH至。 仪器 分析天平：感量； 研磨器：易于清理，研磨过程中不发热，并能达到要求的磨粉细度； 恒温水浴：能控制于30±℃； pH计：备有玻璃电极和甘汞电极，灵敏度不低于±单位，同时附有温度补偿； 试管：直径22mm，长150mm，具橡胶塞； 烧杯：容量10mL； 单刻度移液管：10mL； 精密计时器； 标准筛。 .试样的制备 用研磨器将约10g的样品，在不升高温度的条件下尽可能研细，使其通过60目标准筛的量不少于60％。收集全部磨碎物于广口瓶中，小心混合并立即进行分析。 .过程简述 准确称取试样，放入试管内，加10mL缓冲的尿素溶液，塞好橡胶塞，混匀。置于30±℃水浴中，记下时间。隔5min放入第二个与此相同的试管作重复试验。另称试样，放另一试管内，加10mL磷酸缓冲溶液，塞好橡胶塞，混匀，作为空白试验。与上管间隔5min置于同一水浴中。 在消化过程中，每隔5min将试管内容物都摇匀一次。每个试管都在消化30min后，从水浴中取出，倒出上清液于小烧杯中。并在从水浴中取出后恰好5min 时，测定pH值读数。 注意：pH计测定前须预热30min以上，玻璃电极须在蒸馏水中浸泡活化24 h
脲酶活性&蛋白溶解度测定方法
出口大豆饼粕脲酶活性测定方法pH增值法、盐酸中和法 1.适用范围 本方法适用于大豆饼粕类脲酶活性的测定。 2.方法一 2.1.术语 脲酶活性：在规定的操作条件下，使试样中的脲酶分解尿素释放出氨基氮，以溶液pH值的变量表示。 2.2.原理概要 将研细的试样与缓冲尿素溶液混合，在30℃作用30min后，测定溶液的pH值。 2.3.主要试剂和仪器 2.3.1.主要试剂 磷酸缓冲溶液：将3.403g KH 2PO 4 和4.355g K 2 HPO 4 溶解并稀释至1000mL。临用前， 以强酸或强碱调节其pH至7.0，其使用期限不超过90d； 缓冲的尿素溶液：溶15g尿素（NH 2CONH 2 ）于500mL磷酸缓冲溶液中。加入5mL甲 苯，用于防腐和防止霉菌生长。按上法调节其pH至7.0。 2.3.2.仪器 分析天平：感量0.1mg； 研磨器：易于清理，研磨过程中不发热，并能达到要求的磨粉细度； 恒温水浴：能控制于30±0.5℃； pH计：备有玻璃电极和甘汞电极，灵敏度不低于±0.02pH单位，同时附有温度补偿； 试管：直径22mm，长150mm，具橡胶塞； 烧杯：容量10mL； 单刻度移液管：10mL； 精密计时器； 标准筛。 2.4.试样的制备 用研磨器将约10g的样品，在不升高温度的条件下尽可能研细，使其通过60目标准筛的量不少于60％。收集全部磨碎物于广口瓶中，小心混合并立即进行分析。 2.5.过程简述 准确称取试样0.200g，放入试管内，加10mL缓冲的尿素溶液，塞好橡胶塞，混匀。置于30±0.5℃水浴中，记下时间。隔5min放入第二个与此相同的试管作重复试验。另称试样0.200g，放另一试管内，加10mL磷酸缓冲溶液，塞好橡胶塞，混匀，作为空白试验。与上管间隔5min置于同一水浴中。 在消化过程中，每隔5min将试管内容物都摇匀一次。每个试管都在消化30min后，从水浴中取出，倒出上清液于小烧杯中。并在从水浴中取出后恰好5min时，测定pH 值读数。 注意：pH计测定前须预热30min以上，玻璃电极须在蒸馏水中浸泡活化24 h以上，方可使用；防止所有玻璃容器或电极的污染。如果pH计不能迅速给出稳定的读数，即应查清故障。甘汞电极的多孔组织如蒙上了大豆的可溶性成分，常可引起偶然故障。 2.6.结果计算 将主体试验的pH值减去空白试验的pH值，其差值作为脲酶活性。 2.7.允许差 对于蒸熟的或未经蒸熟的产品来说，同一实验室内的双试验结果允许差各自为
脲酶活性的测定
脲酶活性的测定
————————————————————————————————作者：————————————————————————————————日期:
大豆制品中脲酶活性的测定 定性法: 酚红法 一、原理： 酚红指示剂在pH ６.4-８.２时由黄变红，大豆制品中所含的尿素酶在pH=7.0，T=30℃时可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红的时间长短来判断脲酶活性的大小。 二、仪器和试剂： 粉碎机:粉碎时不产生强烈发热; 分析天平; 25ml纳式比色管; 恒温水浴锅； 0.1%酚红指示剂:０.1g苯酚红溶于10０ml 95%乙醇溶液; 结晶尿素; 三、方法: 将试样粉碎,准确称取0.05±0.001g试样于2５mｌ纳式比色管,加入０．2g结晶尿素及5滴酚红指示剂,加入2５ml蒸馏水,摇动10s,立即置于３0±０．5℃水浴锅中,开始计时,观察溶液颜色变化， 5ｍｉn后,取出比色管，摇匀,观察溶液颜色。 空白试验：不加尿素,其他同上。 品质判定：如果溶液为明显的粉红色,则认为该大豆制品脲酶活性超标，为不合格产品。
?0-1mｉn变红,活性非常强（＞1.0); ?１-2min变红,活性大概0.5-1.0； ?2－５ｍin变红，活性大概0.3-0．5。 四、注意事项： 1．粉碎样品时，不应产生大量热，否则会影响结果判定； 2.称量样品时,一定要将样品混合均匀，否则会造成试验误差； 3.试样和空白试验同时操作,过程要迅速,防止时间影响。
尿素-酚红法 一、原理： 酚红指示剂在pH ６.4-８.2时由黄变红,大豆制品中所含的尿素酶可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红样品占所有样品的比例来判断脲酶活性的大小。 二、仪器和试剂： 表面皿; 0.2Ｎ氢氧化钠溶液：称取0．8g氢氧化钠溶于100ｍl蒸馏水； 1.0N硫酸溶液：移取７.０ｍl浓硫酸溶于５00mｌ蒸馏水； 尿素-酚红试剂：用5０0ml烧杯将０.8g酚红溶于20ml ０.2Ｎ氢氧化钠溶液,用蒸馏水稀释至约300ml,加入60g尿素,并溶解之,转移至２Ｌ容量瓶,冲洗烧杯数次,加蒸馏水至约１.5Ｌ,加入9.4ｍl 1．0N硫酸溶液,用蒸馏水定容至2L;此时溶液应具有明亮的琥珀色；（过段时间溶液会变为深橘红色,可滴入稀硫酸溶液搅拌之,直至溶液再次变为琥珀色) 三、方法： 将一满匙样品放入表面皿中，摊平，将以调好的尿素-酚红试剂滴入表面皿中的样品上，直至完全浸湿,停留5min，观察样品的颜色反应。如果红斑面积多于2０%，则认为该样品脲酶活性超标,为不合格产品。 四、注意事项： 1．对于样品较粗、具有大块状的样品，最好将其稍微粉碎，亦
土壤脲酶活性的测定
靛酚蓝比色法测定土壤脲酶的活性 一、实验原理 靛酚蓝比色法的基本原理是：被测物浸提剂中的NH4+，在强碱性介质中与次氯酸盐和苯酚反应，生成水溶性染料靛酚蓝，其深浅与溶液中的NH4+－N含量呈正比，线性范围为0.05~0.5mg/l之间。 靛酚蓝反应原理如下: NH3 + OCl——NH2 Cl +OH- 三、实验试剂 1） 10%尿素：称取10g尿素，用蒸馏水溶至100ml。 2）柠檬酸盐缓冲液（PH=6.7）：184克柠檬酸和147.5克氢氧化钾溶于蒸馏水。将两溶液合并，用1mol/LNaOH将PH调至6.7，用水稀释至1000毫升。 3）苯酚钠溶液（1.35mol/L）：62.5克苯酚溶于少量无水乙醇，加2毫升甲醇和18.5毫升丙酮，用无水乙醇稀释至100毫升（A），存于冰箱中；27克NaOH溶于100毫升水（B）。将AB溶液保存在冰箱中。使用前将2溶液各20毫升混合，用蒸馏水稀释至100毫升。 4）次氯酸钠溶液：用水稀释试剂至活性氯的浓度为0.9%，溶液稳定。（9ml—100ml中）5）氮的标准溶液（0.1mg/ml）：精确称取0.4717克硫酸铵溶于水并稀释至1000ml，得到1ml含有0.1mg氮的标准液。 6）甲苯 四、实验过程 1.标准曲线的测定 吸取10ml氮的标准溶液定容至100ml，摇匀。从其中分别吸取0，1.00，3.00，5.00，7.00，10.00ml 13.00ml移至50ml比色管中，加水至20ml，再加入4ml苯酚钠的溶液，充分混合。紧接着加入3ml次氯酸钠，随加随摇匀，放置20分钟,用水稀释至刻度。将显色液在可见分光光度计上于578nm处，以1cm比色皿进行比色测定，以试剂空白为参比。以标准溶液氮含量为横坐标，以吸光度值为纵坐标绘制标准曲线。 2.土样中脲酶活性的测定 分别称取2g过1mm筛的风干土样于50ml锥形瓶中，向其中加入1ml甲苯，以使土样全部湿润为宜。放置15分钟后，加入10ml 10％尿素溶液和20ml柠檬酸缓冲液（pH=6.7），并摇匀。将锥形瓶放入37℃恒温箱中，培养24h。培养结束后，用热至38℃水稀释至刻度，充分摇荡，并将悬液用滤纸过滤到锥形瓶中。 设置有土无基质对照，即考察各种溶液和土壤中氨氮存在带来的影响。相当于其他实验中所做的空白对照。 分别吸取（1-3ml）滤液于50ml容量瓶中，加蒸馏水至20ml，充分震荡，然后加入4ml 苯酚钠，充分混合，再加入3ml次氯酸钠充分摇荡，放置20分钟，用水稀释至刻度，溶液呈现靛酚的蓝色（在1h内保持稳定）。在分光光度计上用1cm比色杯，于578nm处进行比色测定。