犬猫的采血方法

犬猫的采血方法通常是在其前肢的前臂头静脉和后肢的阴静脉进行采血。对于一些静脉采血比较苦难的犬猫或采血量比较大时，可以考虑心脏采血。

2.1.采血前的准备

采血前的准备主要是保定，见前面。另外采血前的准备还包括准备好消毒棉球、合适的止血带、剪毛剪、干燥无菌的注射器和头皮针头等等。

2.2.采血的操作

在做好采血前的准备后，采血者选择一个合适的腿，然后在近心端用合适的止血绷带（小型犬猫可以用橡皮筋代替）扎紧，前肢扎在肘关节后面，后肢扎在踝关节上面。然后在前肢的臂部或后肢的掌部要采血的部位用酒精棉球消毒，用拇指的掌面部感受怒张的血管，必要的时候可以沿者怒张的血管进行剪毛（如果血管怒张不明显，可以沿者前肢中间的一根明显的韧带或后肢掌面的正中部）。如果血管不太清楚时，可以用酒精棉球上的酒精将采血的局部打湿，以促进血管怒张，有时还可以先松开止血带，轻柔一下采血部位，然后在扎上止血带。

找到血管后开始进针。将头皮针接在注射上，固定牢结合处。第一次的进针点选择在血管的远心端。当血管怒张不是太明显，动物挣扎不是太厉害时，可以正对着血管进针；血管怒张比较明显，动物挣扎比较厉害时，可以从血管的侧面进针，使动物适应后，再进入血管。开始进针时，左手握在其掌部（前肢），使腕关节弯曲，右手拿针，使针与皮肤呈45度，进针后见到血将针放平，沿着血管的走向往前进针，在运针时会有一种比较轻松的感觉。然后用左手的拇指压住头皮针的针柄，右手松开止血带后用用手抽动注射器进行采血，或者有助手来抽动注射器采血，操作者用右手挤压进针点的近心端或调整头皮针以利于采血。采足够的血后，放松注射器，使其呈自然状态，然后用右手快速的抽出头皮针，并及时的用棉球压迫。

2.3.采血后的处理

抽出头皮针后，用酒精棉球及时按压。按压点在扎针点上靠后一点，直到不在出血为止。然后，将采血用的器具收拾干净。

动脉采血操作流程及注意事项

动脉采血操作流程及注意 事项 Prepared on 21 November 2021

温州市人民医院温州市妇幼保健院 新生儿血标本采集操作流程 一、目的： 1.采集动脉血，进行血气分析，从而了解患者的内环境。 2.指导氧疗，机械通气治疗等各种参数的调节。 二、用物准备：治疗车、治疗盘、消毒用品（碘伏棉签、酒精棉签），注射 器5ml、消毒干棉签、标本袋、采血条码。 三、操作流程： (一)操作前： 1.两人核对医嘱，打印采血条码。 2.核对患者姓名，住院号。 3.输入审核工号 (二)操作： 1.洗手，戴口罩。 2.核对患者姓名，住院号。核对采血条码与手腕识别带上的信息。 3.选择动脉，首先桡动脉。 4.在腕横纹上两横指搏动最强处（定位手法：一按一放）。 5.消毒，以穿刺点为中心，环行消毒，直径大于5cm。 6.准备动脉采血器。 7.再次消毒。 8.准备干棉签，消毒定位（左手）食指、中指。 9.再次核对。 10.穿刺：向患者解释，右手持针，进针角度45-90度，破皮后缓慢 进针，注意回血。 11.拔针，用干棉签按压5-10分钟。 (三)操作后 1.将动脉采血器颠倒5-6次，搓滚5-6次。 2.再次核对采血条码与患者手腕识别带，将条码贴在动脉采血器上，放 于标本袋内。 3.整理用物，洗手，宣教。 4.输入审核、采血工号，标本及时送检。 四、注意事项： 1.严格无菌操作，消毒面积直径大于5cm，预防感染。

2.采血前向患者说明目的和要求，以取得配合。患者应保持平静，情绪稳 定，体位舒适。 3.患者如洗澡，运动后需休息30min后再取血；清理呼吸道患者应休息 30min后再采血。 4.进行氧疗和呼吸机治疗的患者至少要治疗20min后再采血。 5.穿刺部位要按压5-10分钟，直到不出血为止。 6.标本应隔绝空气，采集后应立即送检，以免影响检验结果。 7.有出血倾向的患者慎抽，适当的观察针刺部位是否有出血，肿胀和疼痛等 情况。

实验动物采血指南

实验动物采血指南 采血方法的选择，决定于实验的目的所需血量以及动物种类。凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时可作静脉采血。静脉采血时，若需反复多次，应自远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。例如，研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱，需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度，必须采取动脉血液。采血时要注意：⑴采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25-28℃，冬季，15-20℃为宜；⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒；⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；⑷若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂. 不同动物采血部位与采血量的关系

(一)小鼠、大鼠采血法 1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。 2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套)，应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm)，使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度，小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm。当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出约0.1-0.5mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。活体

手指采血的学问

手指采血的学问 检验科徐红革 到医院做血常规检查，凡用血量少于0.1ml的检验项目，如血常规、血型等单项血液检查都可采取末梢血。末梢血又经常选用手指指尖（耳垂血多不使用）。当然不是所有手指都可以随意采用，而是多选用无名指指尖的尺侧采血，为什么呢？原来，这是从方便采血和对手部功能及生理结构能多方面综合应用的选择。其理由如下： 1.功能不受限：手指采血虽属微小的人为创伤，但小创口仍需经过数天后才能完全愈合。日常生活中，大多数人都为右利手，即精细的复杂动作大都需要右手来完成，如写字，绣花等。而左手则相对空闲时间较多，这样，选用左手取血，对手部功能的影响也相对较小，活动也不受限。拇指、食指和小拇指是人手的主要功能指，准确精细的动作要靠它们协同配合才能完成。中指在各项劳动中所承担的力量要大于无名指，所以化验采血的职责便理所应当的落到了左手无名指上。 2.简便且安全：手是人体体表裸露部位中运动最自如，最灵活的器官。手部取血便于医生操作。此外，由于手指尖部具有十分丰富的毛细血管网，血液循环较好，结果相对稳定，且无较大的动脉和静脉。因此选用手指部位取血，即能满足临床需求，又可以避免大量出血。 3.疼痛感觉轻：手指部位神经末梢分布丰富，不同手指所受神经的支配不同，其疼痛阀值也不尽一致。小指的掌心面由尺神经支配，拇指、食指和中指的掌心面由正中神经支配。无名指的尺侧由尺神经支配，桡侧则面由正中神经支配，如果在无名指指尖的中部取血，会是尺神经和正中神经的神经末梢同时受到刺激，那样引起的疼痛感较强。而取无名指指尖的尺侧取血，只会牵涉尺神经末梢，因影响范围较小，疼痛也较轻微。

4.创伤感染少：在解剖生理上，每个手指的屈指腱都有滑膜囊包裹，以起到润滑，抗震的作用。不同手指滑膜囊的大小深浅及解剖结构各不相同。其中拇指和小拇指的滑膜囊可直接通向掌心深部。这样，如果一个拇指或小拇指发生感染，就有可能继发整个手掌深部感染，还有可能殃及其他手指。而食指、中指和无名指的滑膜囊则相对独立，而且无名指的滑膜囊又位于手掌浅部，因此受到创伤后，即便有感染也不会引起手掌的深部病变，也不会累及其他手指。 综上所述：末梢采血以左手（左利手者则取右手）无名指指尖尺侧为最佳采血部位。当然，若患者为半岁以内的婴幼儿，因其手指太小不利于采血，则在其足部拇指或足跟采血。对于严重烧伤的病人，应选择皮肤完整的部位采血。

各动物采血方法

各种动物采血方法及注意事项 1牛的静脉采血 1.1牛颈外静脉采血颈外静脉位于颈部肩骨乳突肌与胸头肌间凹窝处的颈静脉沟内。牛站立，助手保定好头部，使头部稍前伸上仰并稍偏向对侧，颈部稍有弯曲，颈静脉暴露出来，局部剪毛，消毒，术者稍弓腰蹲于颈静脉暴露的一侧，用左手拇指或食指与中指在颈静脉沟稍下方（近心端）压迫静脉管，使颈静脉充盈怒张，部分牛由于膘肥看不清，此时就要用左手食指和中指点击颈静脉沟，有跳动，再按压，用右手食指和中指探摸跳动的部位，有波动和弹性的管状物，颈为颈外静脉。右手拇指、食指、中指夹住16号针头，对准颈外静脉，并使针头与皮肤接近垂直（75°角），用腕力迅速将针头扎进皮肤，穿入血管，血液会喷射出来，即可采血，停止采血后先松左手，后拔针头，用消毒棉球压迫采血部位1min。 1.2牛尾静脉采血牛自然站立保定，术者站于牛的正后方，左手抓住牛尾中段用力抬起，使之与地面平行，右手触摸尾椎前段腹侧凹陷沟（大约在尾后下方4-5cm处），消毒后持12号针头与尾椎纵轴成垂直方向，依靠腕力快进针0.5-1cm后血液即喷射出来。 2马的静脉采血 马的颈静脉比较浅显，位于静脉沟内，术者用左手拇指或食指和中指横压颈下1/3与颈中1/3处的颈静脉沟，使脉管充盈怒张，右手持16号针头沿颈静脉在压迫点前方与皮肤成45°角用腕力迅速刺入皮肤血管内，感到空虚无阻力即见回血后，再沿脉管向前进针使针头

靠近皮肤靠近皮肤以减小其间的角度，近似平行地将针头再伸入血管内1-2cm，血液流出，即可采血。停止采血后，先松左手，后拔出针头，并用消毒棉球压迫采血点2min止血消毒。 3猪静脉采血 3.1耳静脉采血用捕猪器将猪站立保定，耳静脉局部常规消毒处理，助手用手指捏压耳根部静脉管处或用胶带于耳根部结扎，使静脉充盈，怒张，也可用酒精棉球反复擦静脉血管使之充血，血管怒张，或用手指弹叩引起血管充盈。术者用左手拇指和食指把持耳尖，将耳拉直托平，用中指、无名指和小指在耳下面向上托，使采血进针部位稍高，右手持一次性血样采集针沿静脉管使针头与皮肤呈30°角，向远心端刺入血管，有空虚感无阻力时即进入血管。回血，立即插入负压管采血。采血结束后，先松开握耳根的手，再拔针头，干棉球压迫采血处1min，伤口不出血为止。 3.2前腔静脉采血：前腔静脉由左右两侧的颈静脉与腋静脉在第一对肋骨的胸腔入口的气管腹侧面汇合而成。采血部位在第一肋骨与胸骨柄结合处的前方，由于左侧靠近膈神经，易损伤，故多于右侧进行采血，针头刺入方向呈近似垂直稍向中央及胸腔倾斜，刺入深度依猪体大小2-6cm，针头7-12号。站立保定时进针部位在右侧，于耳根至胸骨柄的连线上，距胸骨端1-3cm处，术者拿连接针头的注射器，稍斜向中央刺向第1肋骨间胸腔入口处，边刺边抽动注射器活塞，见回血即可采血，仰卧保定时胸骨柄向前突出，并于两侧第1肋骨结合处的直前侧方呈两个明显的凹陷窝称为前腔窝：是第1肋骨与胸骨柄

犬猫的采血方法

犬猫的采血方法通常是在其前肢的前臂头静脉和后肢的阴静脉进行采血。对于一些静脉采血比较苦难的犬猫或采血量比较大时，可以考虑心脏采血。 2.1.采血前的准备 采血前的准备主要是保定，见前面。另外采血前的准备还包括准备好消毒棉球、合适的止血带、剪毛剪、干燥无菌的注射器和头皮针头等等。 2.2.采血的操作 在做好采血前的准备后，采血者选择一个合适的腿，然后在近心端用合适的止血绷带（小型犬猫可以用橡皮筋代替）扎紧，前肢扎在肘关节后面，后肢扎在踝关节上面。然后在前肢的臂部或后肢的掌部要采血的部位用酒精棉球消毒，用拇指的掌面部感受怒张的血管，必要的时候可以沿者怒张的血管进行剪毛（如果血管怒张不明显，可以沿者前肢中间的一根明显的韧带或后肢掌面的正中部）。如果血管不太清楚时，可以用酒精棉球上的酒精将采血的局部打湿，以促进血管怒张，有时还可以先松开止血带，轻柔一下采血部位，然后在扎上止血带。 找到血管后开始进针。将头皮针接在注射上，固定牢结合处。第一次的进针点选择在血管的远心端。当血管怒张不是太明显，动物挣扎不是太厉害时，可以正对着血管进针；血管怒张比较明显，动物挣扎比较厉害时，可以从血管的侧面进针，使动物适应后，再进入血管。开始进针时，左手握在其掌部（前肢），使腕关节弯曲，右手拿针，使针与皮肤呈45度，进针后见到血将针放平，沿着血管的走向往前进针，在运针时会有一种比较轻松的感觉。然后用左手的拇指压住头皮针的针柄，右手松开止血带后用用手抽动注射器进行采血，或者有助手来抽动注射器采血，操作者用右手挤压进针点的近心端或调整头皮针以利于采血。采足够的血后，放松注射器，使其呈自然状态，然后用右手快速的抽出头皮针，并及时的用棉球压迫。 2.3.采血后的处理 抽出头皮针后，用酒精棉球及时按压。按压点在扎针点上靠后一点，直到不在出血为止。然后，将采血用的器具收拾干净。

动脉采血操作流程及注意事项

温州市人民医院温州市妇幼保健院 新生儿血标本采集操作流程 一、目的： 1.采集动脉血，进行血气分析，从而了解患者的内环境。 2.指导氧疗，机械通气治疗等各种参数的调节。 二、用物准备：治疗车、治疗盘、消毒用品（碘伏棉签、酒精棉签），注射器 5ml、消毒干棉签、标本袋、采血条码。 三、操作流程： (一)操作前： 1.两人核对医嘱，打印采血条码。 2.核对患者姓名，住院号。 3.输入审核工号 (二)操作： 1.洗手，戴口罩。 2.核对患者姓名，住院号。核对采血条码与手腕识别带上的信息。 3.选择动脉，首先桡动脉。 4.在腕横纹上两横指搏动最强处（定位手法：一按一放）。 5.消毒，以穿刺点为中心，环行消毒，直径大于5cm。 6.准备动脉采血器。 7.再次消毒。 8.准备干棉签，消毒定位（左手）食指、中指。 9.再次核对。 10.穿刺：向患者解释，右手持针，进针角度45-90度，破皮后缓慢进 针，注意回血。 11.拔针，用干棉签按压5-10分钟。 (三)操作后 1.将动脉采血器颠倒5-6次，搓滚5-6次。 2.再次核对采血条码与患者手腕识别带，将条码贴在动脉采血器上，放 于标本袋内。 3.整理用物，洗手，宣教。 4.输入审核、采血工号，标本及时送检。 四、注意事项： 1.严格无菌操作，消毒面积直径大于5cm，预防感染。 2.采血前向患者说明目的和要求，以取得配合。患者应保持平静，情绪稳定，

体位舒适。 3.患者如洗澡，运动后需休息30min后再取血；清理呼吸道患者应休息30min 后再采血。 4.进行氧疗和呼吸机治疗的患者至少要治疗20min后再采血。 5.穿刺部位要按压5-10分钟，直到不出血为止。 6.标本应隔绝空气，采集后应立即送检，以免影响检验结果。 7.有出血倾向的患者慎抽，适当的观察针刺部位是否有出血，肿胀和疼痛等 情况。

正确的指尖采血方法

采血方法 二采血方法 血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。 一）、静脉采血法 采血部位：肘静脉；手背部手腕部等体表静脉；幼儿可采用颈外静脉采血。 采血器材：一次性注射器，真空定量采血装置 注意事项： （ 1 ）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。 （ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。 （ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。 （ 4 ）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高 5 ％～ 15 ％。因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。 （ 5 ）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。 （ 6 ）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。 （7）采血过程中晕厥：拔出针头，嘱其平卧，必要时可给患者嗅芳香氨酊、针刺（或拇指压掐）人中、合谷，静点葡萄糖或口服糖水 二）、皮肤采血法（毛细血管采血法） 部位：中指或无名指尖内侧，半岁以下拇指或足部，特殊伤员。 器材：采血针、吸管。 步骤：消毒、穿刺、采血。 采血为何选用左手无名指?

项目二十七 常用实验动物的接种和采血方法

项目二十七常用实验动物的接种和采血方法 一、接种方法 (一) 皮下注射 皮下组织疏松的部位都可皮下注射。一般小鼠在腹部两侧，豚鼠在腹部或大腿内侧，家兔取背部，大腿内侧或耳根部皮下注射。注射部位消毒后，左手提起皮肤，右手持注射器将针头水平刺入皮下，针头摆动无阻力，说明已进入皮下，慢慢注入，注射部位随即隆起。注射完毕，用棉球压住针刺处，再拔出针头。小鼠注入量一般为0.2～0.5ml。家兔或豚鼠注入量为0.5～1.0ml． (二) 皮内注射 先将动物注射部位的毛剪去，消毒，然后左手绷紧皮肢，针头斜面向上，紧贴皮肤表层刺入，然后向上挑起再稍刺入，缓慢注射。若注入皮内，注射部位马上有小泡隆起。皮内注射量一般为0.1～0.2ml。 (三) 肌内注射 应选择肌肉发达、无大血管通过的部位。一般多选臀部、大腿内侧或外侧。针头直接刺入肌肉，回抽针栓如无回血即可注射。家兔等大动物注射量不超过2ml。 (四) 腹腔注射 小白鼠腹腔注射时，用右手拉鼠尾，左手食指和拇指捏住脑背部皮肤，翻转鼠体，把鼠尾和一侧的后腿夹于小指和无名指之间，使动物处于头低位，使内脏移向上腹，右手持注射器在下腹部左侧或右侧刺入皮下，沿皮下朝头部方向进针0.5～1.0cm，再以45°角刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液，尿液或血液即可缓缓注入。家兔等较大动物注射，应先固定，于腹部腹中线旁侧1cm处进针。小鼠注射量一般为0.5～1.0ml，家兔或豚鼠为5ml。 (五) 静脉注射 1．家兔将家兔固定，用酒精棉球轻轻按摩耳翼，压迫耳根部静脉，使耳缘静脉扩张。用左手拇指与中、食指抓住耳尖部，从耳尖部边缘静脉平行进针，试推进少量注射液，如果觉得没有阻力，局部也没有隆起，表示已进入静脉，将注射液缓缓注入。若失败，再逐步向耳根部移位重新注射。注射完毕，用棉球压住针眼处，拔出针头。注射部位一般选用耳外缘静脉，易固定，表浅；耳内缘静脉深，不易固定，故不常用。 2．小鼠于尾部两侧静脉注射。固定小鼠使尾巴露出，置45℃～50℃温水浸泡1～2min，使尾部静脉扩张。取出尾巴，擦干消毒，在末端1/3或1/4处用左手捏住尾巴，右手持注射器，针头与静脉平行缓慢进针，试注入少许注射液，如无阻力，皮肤不发白，表示针头刺入静脉，否则应更换部位重扎。注射时多选用4 1/2# 针头。最大注射量为0.5ml。 二、采血方法 (一) 小鼠采血方法 1．断尾采血将小鼠固定，露出尾巴，用手轻揉或浸泡于45℃温水中数分钟或用酒精棉球涂擦，使尾血管充血。将鼠尾擦干，用剪刀剪去尾尖1～2mm。然后用手指从尾根部向尾尖捋，血即从断端流出。采血结束后消毒止血。此法采血每只小鼠可采十余次，每次可采血约0.1ml。 2．眼眶后静脉丛采血左手抓注鼠耳间头部皮肤，将头按在桌面或鼠笼上，轻压颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分突出，眶后静脉丛充血。右手持长为7～10cm 玻璃滴管(毛细管端内径1～1.5mm，长约1cm)或7# 针头的1ml 注射器，在内眼角与眼球之

正确的指尖采血方法

正确的指尖采血方法 Document serial number【UU89WT-UU98YT-UU8CB-UUUT-UUT108】

采血方法 二采血方法 血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。 一）、静脉采血法 采血部位：肘静脉；手背部手腕部等体表静脉；幼儿可采用颈外静脉采血。 采血器材：一次性注射器，真空定量采血装置 注意事项： （ 1 ）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。 （ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。 （ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。

（ 4 ）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高 5 ％～ 15 ％。因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。 （ 5 ）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。 （ 6 ）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。 （7）采血过程中晕厥：拔出针头，嘱其平卧，必要时可给患者嗅芳香氨酊、针刺（或拇指压掐）人中、合谷，静点葡萄糖或口服糖水二）、皮肤采血法（毛细血管采血法） 部位：中指或无名指尖内侧，半岁以下拇指或足部，特殊伤员。 器材：采血针、吸管。 步骤：消毒、穿刺、采血。 采血为何选用左手无名指 拇指与小指肌腱活动的滑液囊较多，并向手掌中间延伸，而且相互流通。发生感染时，炎症就可能向掌心蔓延，引起手掌和另一个手指的感染，导致严重后果。食指和中指是人的功能手指，使用的机会较多，也不宜采血。在五个手指中，只有食指和无名指的滑液囊不向手掌部位延伸，是“独立循环”，互不相连，所以一般都在无名指上采血。 （三）真空采血法

动脉血气分析的操作步骤

动脉血气分析的操作步骤 Prepared on 22 November 2020

动脉血气分析的操作步骤： 1.评估患者一般情况：诊断、病情、年龄、意识状态、肢体活动、局部情 况、心理状态、合作程度等 2.准备用物：输液车、治疗盘、动脉采血器、复合碘、干棉签、擦手液、利 器盒、化验标签（注明体温、氧流量、血红蛋白、） 3.核对身份 4.动脉的选择，首选桡动脉，做艾伦试验：受检者握紧拳头，检查者同时紧 压其腕部的桡动脉、尺动脉，这时受检者松开拳头，其手掌部由于血供被阻断变得苍白，然后继续压迫桡动脉．松开尺动脉恢复其血供，这时手掌应迅速（5s内）恢复红润，说明受检者的桡动脉、尺动脉间有完善的侧支循环，在桡动脉血供消失的条件下不影响手部血供，为艾伦试验阴性； 反之，如果在5s内不能恢复红润，则为该试验阳性。 5.护士站在穿刺侧，取站立位，视线保持在采血部位区域内。上肢伸直略外 展，腕部背曲30°。 6.一指定位——桡动脉：距掌纹线2-3cm，动脉搏动最强处，通过“一按一 提”，仔细感觉动脉的搏动。 7.检查动脉采血器的有效期，密封性等，拆开包装。 8.核对身份，消毒穿刺部位，直径大于5cm，操作者食指也要消毒2遍。将 动脉采血器推至底部，再拉至预设位置，除去针头护套。 9.采血者用左手食指，沿动脉走向，固定住桡动脉，并感受到他的搏动；右 手以执笔式的方法把持住注射器，手的小鱼际贴在患者的大鱼际处，便于

固定，针头斜面向上向心，沿食指边缘45-90°刺入皮肤。缓慢进针，边穿刺边注意回血。 10.见回血后，固定注射器，血液会自动涌入采血器，空气经孔石装置排出。 血液液面达到达到预设位置孔石会自动封闭。 11.拔出针头，按压穿刺点5分钟。将动脉采血器针头垂直插入蓝色橡皮塞 中。如血液未达到预设位置，则将采血器缓缓推动针栓将气泡融入孔石排气。丢弃针头和针塞，螺旋拧上安全针座帽。 12.青楼颠倒混匀5次，手搓5秒，包证血液与抗凝剂完全混合。 13.再次核对身份，贴上标签。立即送检，>15分需冰浴。

小鼠取血方法

1.割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。 2.鼠尾刺血法大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套)，应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm)，使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度，小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm。当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出约0.1-0.5mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约0.5-0.6ml；大鼠约0.8-1.2ml。 6.颈动静脉采血先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。 7.腹主动脉采血最好先将动物麻醉，仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液，防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀，剪断动脉，使血液喷入盛器。 8.股动(静)脉采血先由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈。或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。体重15-20g 小鼠采血约0.2-0.8ml，大鼠约0.4-0.6ml。

动脉采血操作流程

动脉采血的操作流程 查看医嘱，二人核对无误 评估：患者的病情、凝血四项及有无吸氧、吸氧的浓度、穿刺处动脉搏动情况，桡动脉采血需做Allen实验，穿刺处皮肤情况。测量患者的体温。 患者准备：解释动脉采血的目的、方法，了解病人的心理、取得合作（急诊抢救例外）。 环境准备：环境清洁，光线明亮，符合操作要求，必要时使用屏风。 护士准备：护士服装整洁、符合要求，洗手、戴口罩。 用物准备：治疗盘，内备：洁尔碘消毒液，无菌棉签，动脉采血器，一次性垫巾、垫枕、弯盘，小冰盒、化验单。（检查有效期） 操作方法：1、携用物至患者床旁，核对、解释，取得配合。取合适体位：穿刺桡动脉，患者体位不受影响，以患者舒适、采血方便为宜。穿刺肱动脉，患者取坐位或平卧位；穿刺股动脉， 患者取平卧位。 3、垫垫巾和垫枕，触摸（桡）动脉搏动最明显处，快速手消洗手。用洁尔碘消毒液消毒穿 刺部位（以动脉搏动最强点为圆心，直径大于5cm）。 4、打开血气针，二次消毒；消毒操作者左手的食指和中指2遍。 5、拿一干棉签，将血气针预抽至1ml。 6、核对 7、用左手食指和中指触摸桡动脉搏动最明显处，右手持注射器与皮肤呈45～60度角穿刺， （若取股动脉穿刺采血则垂直进针）穿刺成功后抽取动脉血约1～2ml,（一次性动脉采 血专用注射器则血液自动流入针管内）。 8、取血后拔针，将针头斜面刺入橡皮塞内，以免空气进入影响结果。 9、无菌棉签压迫穿刺点至少5～10 分钟，勿揉，根据病情适当延长按压时间。 10、将血气针轻轻转动，使血液与肝素充分混合，防止凝血。放入冰盒。 11、核对，洗手，在化验单上签字，写上患者体温及抽血时间、有无吸氧及吸氧浓度。 12、告知注意事项。告知患者穿刺部位应禁止热敷、不要沾水，当日尽量不洗澡，以免引 起局部感染；穿刺部位同侧肢体避免提重物或剧烈运动，以免引起局部肿胀、疼痛， 如果出现肿胀、疼痛等症状要及时通知医护人员。 13、整理床单位，摆舒适体位，感谢配合。 14、及时送检。终末处理，整理用物。 15、流动水下七步洗手法洗手，做好记录。 16、10分钟后去病房观察患者穿刺部位有无出血、血肿、瘀斑等，收回棉签。 Allen试验方法步骤： ①操作者用双手同时按压患者采血侧的桡动脉和尺动脉； ②嘱患者反复用力握拳和张开手指5～7次至手掌变白； ③松开对尺动脉的压迫，继续压迫桡动脉，观察手掌颜色变化。若手掌颜色10s之内迅速变红或恢复正常，表明尺动脉和桡动脉间存在良好的侧支循环，即Allen试验阴性，可以经桡动脉进行穿刺，一旦桡动脉发生闭塞也不会出现缺血；相反，若10s手掌颜色仍为苍白，Allen试验阳性。这表明手掌侧支循环不良，不应选择桡动脉行穿刺。

非指尖采血

非指尖采血的血糖仪 -------------------------------------------------------------------------------- 海门人民医院 确定血糖仪精确性最常用方法就是将该系统与临床生化方法比较。通 常受试病人都经过严格筛选，确保受试病人符合血糖仪的局限要求，在此 最佳条件下，往往很多血糖仪都有很好的检测结果；然而，在更多极端的 条件下，检测技术的差异就显现出来了。 One Touch? Ultra和FreeStyleTM 都属电化学感应器，均能检测手臂 毛细血管血，One Touch? Ultra检测系统采用80年代后期常用的电流计方 法，而FreeStyle则采用库仑检测原理，仪器的设计较原有技术更具优越 性，包括： 用极微量的血样，得到精确而可信的读数。 血球比容范围更大。 对血氧浓度不敏感。 摆脱电化学的干扰。 一系列由TheraSense公司指导的实验验证了这些优点[1]。试验方案详 见附录I。 血量的影响 TNO[2]方案稍作修改用于微量血样检测的研究，采用可通过毛细作用将血 样吸入的试纸。本研究中，血量是用吸管来定容，并移至平整的塑料表 面，不是所有血样均进入毛细管，这是因为有一小部分血会留在塑料表

面，因而，血量超过系统所需求的量对于正确检测是很有必要的。这一研究结果见图1。从重复性测试报告来看，期望值应为平均值的±10%左右。所有用合适血量检测的结果以百分数表示。用0.2~0.3μl血量检测时，FreeStyle每次都显示Er1（6/6），表示血量不够，FreeStyle 所需血量为0.3μl，FreeStyle 只有当血量适当时才能启动，当血量为0.4μl或更多 时，FreeStyle能得到正确结果（43/45），1个Er1（1/45），1个结果超过期望值±10%范围的6%（1/45）。FreeStyleTM血糖仪所需血量仅为0.4μl。 数值在90~110被认为是正确的 血量为0.2~0.9μl，One Touch? Ultra24个血样中12个仪器无反应；2个出 现“Er4”，表示试纸有问题；10个出现“Er5”表示采血不正确。One Touch? Ultra血量要求1.0μl，当血量为1.0~1.3μl时，12个测试中3个显 示“Er4”，5个显示“Er5”，4个显示正确结果。当血量为1.4μl或更多 时，所有测试都显示正确结果（15/15）。One Touch? Ultra测试血量为1.3μl时，3个测试只有2个能得到充分血量，这已远远超出FreeStyleTM所 需血量的3倍。One Touch? Ultra未报告当仪器获得血量不足时的错误报告。这是较原有检测系统明显改进的地方，One Touch?FastTake?有报道当血量不足时结果偏低[3]。 血球比容的影响 血球比容是指血样中红血球体积所占的比例。正常红血球比容为34~51%，但贫血和红细胞增多症其红血球比容可远远超出正常范围，一项来自于FDA 指导文件的测试方案[4]略加改良用于评估血球比容对FreeStyle和One Touch? Ultra检测结果的影响。 图2a~c所示不同血球比容的血糖检测值与正常血球比容（40%）血糖平均值

关于动物取血问题

1、关于小鼠血液量的问题： 小鼠循环血量占体重的6%，或50-70ml/kg，采血占全血量的10%不会对机体造成严重的不良影响。3-4周后可以重新采集一次。特别注意的是：老年小鼠血量降低。疾病会加重不良反应，所以必须考虑这些影响因素。采血后应补充响应体积的液体，如果需要很短时间反复采血，比如每天一次，每次的采血量不应超过全血的1%。 2、关于取血方法的问题： （1）尾尖取血：当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用二甲苯等化学药物涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，剪去尾尖，血自尾尖流出，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需间隔一定时间，多次采取鼠尾尖部血液，每次采血时，将鼠尾剪去很小一段，取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 （2）眼眶后静脉丛取血：当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2～3mm，大鼠4～5mm。当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后，拨出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血0.2～0.3ml，大鼠约可采血0.4～0.6ml。 （3）断头取血：当需要较大量的血液，而又不需继续保存动物生命时采用此法。左手捉持动物，使其头略向下倾，右手持剪刀猛力剪掉鼠头，让血液滴入盛器。小鼠可采血0.8～1.0ml，大鼠可采用5～8ml。 （4）眶动脉和眶静脉取血：此法既能采取较大量的血液，又可避免断头取血法中因组织液的混入导致溶血的现象，现常取代断头取血法。先使动物眼球突出充血后，以弯头眼科镊迅速钳取眼球，并将鼠倒置，头向下，眼眶内很快流出血液，让血液滴入盛器，直至不流为止。此法由于取血过程中动物未死，心脏不断在跳动，因此取血量比断头法多，一般可取鼠体重4～5％的血液量，是一种较好的取血方法。 （5）心脏取血：动物仰卧固定在固定板上，剪去心前区部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3～4肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有4～5号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺，当针刺入心脏时，血液由于心脏跳动的力量自动进人注射器。此法要求实验者掌握以下要点：要迅速而直接插入心脏，否则，心脏将从针尖处滑脱；如第一次没刺准，将针头抽出重刺，不要在心脏周围乱探，以免损伤心、肺；要缓慢而稳定的抽吸，否则，太多的真空反而使心脏塌陷。若不需保留动物生命时，也可麻醉后切开动物胸部，将注射器直接刺人心脏抽吸血液。 （6）大血管取血：大、小鼠还可从颈动、静脉，股动、静脉和腋下动、静脉取血，在这些部位取血均需麻醉后固定动物，然后作动、静脉分离手术，使其暴露清楚后，用注射器沿大血管平行刺入（或直接用剪刀剪断大血管），抽取所需血量。切断动脉时，要防止血液喷溅。

动脉血气分析的操作步骤

动脉血气分析的操作步骤： 1.评估患者一般情况：诊断、病情、年龄、意识状态、肢体活动、局部情况、心理状态、合 作程度等 2.准备用物：输液车、治疗盘、动脉采血器、复合碘、干棉签、擦手液、利器盒、化验标签 （注明体温、氧流量、血红蛋白、） 3.核对身份 动脉的选择，首选桡动脉，做艾伦试验：受检者握紧拳头，检查者同时紧压其腕部的桡动脉、尺动脉，这时受检者松开拳头，其手掌部由于血供被阻断变得苍白，然后继续压迫桡动脉．松开尺动脉恢复其血供，这时手掌应迅速（5s内）恢复红润，说明受检者的桡动脉、尺动脉间有完善的侧支循环，在桡动脉血供消失的条件下不影响手部血供，为艾伦试验阴性；反之，如果在5s 内不能恢复红润，则为该试验阳性。 护士站在穿刺侧，取站立位，视线保持在采血部位区域内。上肢伸直略外展，腕部背曲30°。一指定位——桡动脉：距掌纹线2-3cm，动脉搏动最强处，通过“一按一提”，仔细感觉动脉的搏动。 检查动脉采血器的有效期，密封性等，拆开包装。 核对身份，消毒穿刺部位，直径大于5cm，操作者食指也要消毒2遍。将动脉采血器推至底部，再拉至预设位置，除去针头护套。 采血者用左手食指，沿动脉走向，固定住桡动脉，并感受到他的搏动；右手以执笔式的方法把持住注射器，手的小鱼际贴在患者的大鱼际处，便于固定，针头斜面向上向心，沿食指边缘45-90°刺入皮肤。缓慢进针，边穿刺边注意回血。 见回血后，固定注射器，血液会自动涌入采血器，空气经孔石装置排出。血液液面达到达到预设位置孔石会自动封闭。 拔出针头，按压穿刺点5分钟。将动脉采血器针头垂直插入蓝色橡皮塞中。如血液未达到预设位置，则将采血器缓缓推动针栓将气泡融入孔石排气。丢弃针头和针塞，螺旋拧上安全针座帽。青楼颠倒混匀5次，手搓5秒，包证血液与抗凝剂完全混合。 再次核对身份，贴上标签。立即送检，>15分需冰浴。

畜禽采血方法

畜禽疫情监测中的采血技术 摘要：随着国家动物防疫水平的不断提升，畜禽疫病监测实验室工作在各级动物防疫部门迅速开展起来，监测工作的开展需要大量的血清，采血是目前获取血清的主要技术手段。下面将牛、猪、羊、禽等畜禽的采血技术方法做以详细论述，为动物疫病检测工作顺利完成和重大动物疫病的防控打下基础。 关键词：疫情监测畜禽采血 随着我国的养殖业日益向规模化、集约化方向发展，同时畜禽及其产品流通交易的日益频繁，使我国的畜禽疫病呈现新的发病特点，如病症复杂化和非典型化、混合感染居多等。要对疫病进行正确的诊断分析，实施日常疫病监测和免疫抗体监测，从而为政府决策和疫病的预防、控制、净化提供技术支持，必须进行血清学检测，因此国家逐年加大了对动物疫情和动物免疫监测的力度。熟练掌握一套采血技术是保质、保量完成血清收集必备条件，也是保护采血人员安全的必要保障。现将几种畜禽的血液采集方法做如下介绍： 1.牛血样的采集 按照国标奶牛生产技术规程，奶牛布病检测是畜牧兽医部门一项日常任务，每头奶牛一年必须接受不少于1次的布病检测，再加上其他牛疫病防疫效果的检测，牛血清的需要量就相对较大。一般散养户多采用颈静脉采血法，规模化养殖场多采用尾静脉采血法。 1.1颈静脉采血 牛颈静脉分为颈内静脉和颈外静脉。颈内静脉较小与颈动脉伴行，末端与颈外静脉汇合。颈外静脉较粗，位于颈部肩骨乳突肌与胸头肌间的凹窝内采血前助手要保定好牛头部，使其向一侧上仰，使侧颈静脉暴露出来，采血者蹲于牛颈部颈静脉暴露一侧，取l6号针头，以拇指、食指和中指夹住，依靠腕力，垂直扎进颈静脉上的皮肤，然后调整位置，一旦进入血管，血液即会喷射出。 1.2 尾静脉采血 牛尾静脉位于尾椎腹侧正中的脉管沟内，尾静脉采血具有方便快速的优点，

动物的采血方法

动物的采血方法 一、小鼠、大鼠的采血 1.眼眶后静脉丛采血 左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定，并轻轻压迫颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外凸。右手持玻璃采血管，将其尖端插入内眼角与眼球之间，轻轻向眼底方向刺入，小鼠刺入2~3mm，大鼠刺入4~5mm，当感觉有阻力时即停止刺入，放置取血管以切开静脉丛，血流即流入取血管。采血结束后，拔出取血管，放松左手，出血即停止。本方法在短期内可重复采血。小鼠一次可采血0.2~0.3ml，大鼠一次可采血0.5~1.01ml。为防止血液在取血管中凝固，可将取血管进入1%肝素溶液，干燥后使用。 2.摘眼球采血 此方法用于鼠类大量采血。采血时，用左手固定动物，压迫眼球，尽量使眼球凸出，右手用弯头镊子摘除眼球，眼眶内很快流出血液。 二、兔的采血 1.耳中央动脉、耳沿静脉采血 左手固定兔，并用酒精棉球消毒采血部位，右手持注射器，在兔耳血管的末端，沿着与血管平行的向心方向刺入血管，即可见血液流入针管，注意固定好针头。采血结束后，拔出注射器，用棉球压迫止血2~3min。 2.颈静脉采血 将兔麻醉后，仰卧在固定台上固定，剪去一侧颈部被毛，用碘酒、酒精棉球消毒皮肤，手术刀轻轻划破皮肤，钝性分离静脉，颈静脉暴露后，用注射器针头沿血管平行的远心方向刺入，采血结束后，拔出注射器，缝合切口。 三、狗的采血 1.前、后肢皮下静脉血 此方法一次可取较多的血，操作可参照相应的静脉注射。如需采少量血。则可用5.5号针头直接刺入静脉。如需采一定量的血，最好用静脉滴注针头与注射器连接，以防狗挣扎时针头刺破血管。 2.股动脉采血 将狗仰卧后固定，伸展后肢向外拉直，暴露腹股沟，在腹股沟三角区动脉搏动的部位剪去被毛，用碘酒、酒精消毒。左手中指、食指探摸股动脉搏动部位并固定好血管，右手区静脉滴注针，针头由动脉搏动处慢慢刺入，当血液流入针头后的朔料管时，固定好针头，连接好注射器可抽到大量血液。 3.心脏采血 将狗仰卧固定，前肢向背侧方向固定，暴露胸部，剪去左侧第3~5肋间的被毛，用碘酒、酒精消毒皮肤。左手触摸心脏部位，选择心跳最明显处穿刺。一般在胸骨左缘外1cm第四肋间处，用连有6.5号针头的注射器，从心跳最明显处垂直刺入心脏。当针头正确刺入心脏时，血液即进入注射器，便可抽取大量血液。如采不到血，可调整刺入方向和深度，调整方向时，要将针头上提后再刺入，不能让针头在胸腔内乱晃。

常用实验动物的采血方法简介

常用实验动物的采血方法 一小鼠和大鼠的采血方法 1、剪尾采血:需血量较少时常用此法。先将动物固定，将鼠尾浸在50℃左右温水中浸泡几分钟或用酒精棉球或二甲苯涂擦鼠尾，使尾部血管充盈，剪去尾尖1～2mm(小鼠)或3～5mm(大鼠)，便血液顺血管壁自由流入试管或用血红蛋白吸管吸取。采血结束时，伤口消毒并用棉球压迫止血。此法每只鼠一般可采血 10次以上，小鼠每次可取血0.1mL左右，大鼠可取血0.3～0.5ml。 2、眶后静脉丛采血:操作者一手固定小鼠或大鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏 紧，或轻轻压迫颈部两侧，使鼠眼球突出，眶后静脉丛充血，另一只手持毛细采血管，以45°从内眼角刺入，并向下旋转，感觉刺入静脉丛后，再向外边退边吸，当得到所需血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血。若技术熟练，此方法在短斯内可重复采血，小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠可采血约0.5ml。如只进行一次取血，可采用摘眼球法，右手取一眼科弯镊，在鼠右或左侧眼球根部将眼球摘去，并将鼠倒置；头向下，抽取血液。 3、鼠装进固定器，漏出尾巴，同1，使尾部血管充盈，作好尾部消毒，用1 ml针筒接好4号针头，穿刺尾静脉，抽取血液。 4、腋下采血：将麻醉后的小鼠仰卧固定，剪开腋下皮肤，钝性分离腋下的胸肌等组织，暴露腋下血管，剪断腋下静脉，用注射器或吸管吸血。 5、断头采血：用剪刀迅速剪掉动物头部，立即将动物头朝下，提起动物，血液可流入试管中。 6、心脏采血：切开动物胸膛，直接从见到的心脏内采血，也可剪破心脏直接用注射器或吸管吸血。 7、股动脉采血:大量取血时常用此法。需手术分离股动脉，用注射器套上针头刺入血管取血或剪断股动脉用吸管吸取血样，小鼠的一次采血量可达 0.5ml，大鼠可达2.0ml，操作时防止喷血。 二豚鼠、家兔的采血方法 1、家兔耳缘静脉采血 穿刺采血法：是家兔最常用的采血方法。具体方法同耳缘静脉注射给药。此法一次可采血5～lOml，可多次重复使用。针头不可连接注射器，直接让血液滴在有抗凝剂的试管内。 切割采血法：当兔耳部血管被充分扩张后，可用刀片割破耳缘静脉，或用注射针刺破耳缘静脉，让血液自然流出。采血穿刺和注射穿刺方向不同。采血穿刺逆血流方向行针，采血量越大，越要靠近根部行针。 2、兔耳中央动脉采血：经兔耳中央的一条较粗、颜色鲜红的动脉采血，可采到约15 ml/次血。操作方法基本与静脉采血同。由动脉末端，朝向心方向进针，取血完毕后注意止血。 3、豚鼠耳缘切割采血法:方法同兔相同。 4、心脏采血法:对豚鼠、兔、猫、狗都适用。 采血前，将动物麻醉并仰卧固定置实验台上。心前区皮肤脱毛，常规消毒。于左侧第 3、4肋间心尖博动最强处将针头垂直刺入心脏，由于心脏的搏动，血液可自动迸入注射器。如无血液流出，拔出针头后重新穿刺，不能左右来回斜穿，以免造成气胸而导致动物很快死亡。经6～7天后可重复穿刺采血。 5、体表静脉采血 （1）兔后肢胫部皮下静脉采血 将兔仰卧固定，拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，可在胫部外侧皮下，见到皮下静脉。用左手拇指、食指固定好血管，右手持，与皮下静脉平行进针，抽血有回血即可采血。采血完毕后用棉球压迫止血，因为此处