文档库 最新最全的文档下载
当前位置:文档库 › 生姜-Food Chemistry

生姜-Food Chemistry

生姜-Food Chemistry
生姜-Food Chemistry

Analytical Methods

Preparative separation of gingerols from Zingiber of?cinale by high-speed counter-current chromatography using stepwise elution

Xiao Wang a ,?,Zhenjia Zheng b ,Xingfeng Guo b ,Jinpeng Yuan a ,Chengchao Zheng c ,?

a

Shandong Analysis and Test Centre,Shandong Academy of Sciences,19Keyuan Street,Jinan,Shandong 250014,China

b

College of Food Science and Engineering,Shandong Agricultural University,61Daizong Street,Taian,Shandong 271018,China c

State Key Laboratory of Crop Biology,College of Life Science,Shandong Agricultural University,61Daizong Street,Taian,Shandong 271018,China

a r t i c l e i n f o Article history:

Received 18February 2009

Received in revised form 10October 2010Accepted 13October 2010

Keywords:

Zingiber of?cinale Gingerol HSCCC

Preparative chromatography

a b s t r a c t

Following an initial clean-up step on silica column,high-speed counter-current chromatography (HSCCC)was used to purify gingerols from an extract of the dried rhizome of Zingiber of?cinale.The sample was separated with petroleum ether–ethyl acetate–methanol–water (1:0.2:0.5:0.7,v/v)and petroleum ether–ethyl acetate–methanol–water (1:0.2:0.7:0.5,v/v)in a stepwise elution and yielded 132mg of 6-gingerol,31mg of 8-gingerol and 61mg of 10-gingerol from 360mg of pre-puri?ed sample.The purity of each compound was over 98%as determined by HPLC.The structures of the three compounds have been identi?ed by LC-ESI-MS,1H NMR and 13C NMR.

ó2010Elsevier Ltd.All rights reserved.

1.Introduction

Ginger (Zingiber of?cinale ),a member of the tropical and sub-tropical Zingiberaceae,is consumed worldwide as spice and ?a-vouring agent which are used extensively in food,beverage,and confectionary industries in the products such as marmalade,pick-les,chutney,ginger beer,ginger wine,liquors,and other bakery products (Tapsell et al.,2006;Zhao,Yang,Gai,&Yang,2009).Ginger is also widely used in traditional oriental medicine against symptoms such as in?ammation,rheumatic disorders,arthritis,muscular discomfort,nervous diseases,gingivitis and gastrointes-tinal discomforts (EI-Abhar,Hammad,&Gawad,2008;Tapsell et al.,2006;Wang &Wang,2005;White,2007).Reports showed that gingerols,including 6-gingerol,8-gingerol and 10-gingerol (Fig.1),were the predominant bioactive constituents in ginger (Jolad,Lantz,Chen,Bates,&Timmermann,2005;Park,Chun,Lee,Lee,&Surh,1998;Schwertner &Rios,2007).These compounds dis-play diverse biological activities such as antioxidant (Masuda,Kikuzaki,Hisamoto,&Nakatani,2004),anti-in?ammatory (Lantz et al.,2007;Young et al.,2005)and anticarcinogenic properties (Shukla &Singh,2007).Especially,6-gingerol has been shown to have protective effects in both in vivo and in vitro prostate cancer models by modulation of proteins involved in apoptosis pathway

(Shukla et al.,2007)and signi?cant inhibitory effect on cell adhe-sion,invasion,motility and activities of MMP-2and MMP-9in MDA-MB-231human breast cancer cell lines (Lee,Seo,Kang,&Kim,2008).

In view of the above signi?cant bioactivities,large quantities of the pure compounds are urgently needed for further pharmacolog-ical studies.However,to obtain the pure compounds by conven-tional column chromatography separation methods is very dif?cult because of their structure similarity and unstable chemical properties (Grzanna,Lindmark,&Frondoza,2005;Policegoudra,Abiraj,Gowda,&Aradhya,2007;Schwertner &Rios,2007).High-speed counter-current chromatography (HSCCC)is a support-free liquid–liquid partition chromatographic technology,which elimi-nates the irreversible adsorption of the sample onto solid support and has an excellent sample recovery (Ito,1981).So it is gaining increasing interest recently,and is used more and more frequently in the isolation of bioactive components from crude materials (Chu,Sun,&Liu,2005;Frighetto,Welendorf,Nigro,Frighetto,&Siani,2008;Peng,Fan,&Wu,2005;Shi,Huang,Zhang,Zhao,&Du,2007;Shi,Zhang,Huang,Liu,&Zhao,2008;Wu et al.,2004).In the present paper,an ef?cient method for the preparative isolation and puri?cation of gingerols from crude extract of ginger was established by HSCCC.Characterisation and analysis of the three individual gingerols were accomplished by use of LC coupled with electrospray ionisation mass spectrometry (LC-ESI-MS),1H and 13C nuclear magnetic resonance (NMR).To the best of our knowledge,the preparative separation of gingerols by HSCCC is now reported for the ?rst time.

0308-8146/$-see front matter ó2010Elsevier Ltd.All rights reserved.doi:10.1016/j.foodchem.2010.10.066

?Corresponding authors.Fax:+8653182964889(X.Wang).

E-mail addresses:wangx@https://www.wendangku.net/doc/a516856349.html, (X.Wang),cczheng@https://www.wendangku.net/doc/a516856349.html, (C.Zheng).

2.Experimental

2.1.Reagents and materials

Organic solvents including ether,ethanol,petroleum ether(60–90°C),ethyl acetate,and methanol were all of analytical grade (Juye Chemical Factory,Jinan,China).Methanol used for HPLC analysis was of chromatographic grade(Yuwang Chemical Factory, Yucheng,China).Reverse osmosis Milli-Q water(Millipore,Bille-rica,USA)was used for all solutions and dilutions.

The dry ginger was purchased from a local drug store.The spe-cies was identi?ed by Dr.Jia Li,Shandong University of Traditional Chinese Medicine,China.

2.2.Apparatus

Preparative HSCCC was carried out using a Model GS10A-2(Bei-jing Institute of New Technology Application,Beijing,China),with a multilayer coil of1.6mm I.D.and110m in length with a total capacity of230mL.The b values of this preparative column range from0.5at internal to0.8at the external(b=r/R,where r is the rotation radius or the distance from the coil to the holder shaft, and R(R=8cm)is the revolution radius or the distances between the holder axis and central axis of the centrifuge).The solvent was pumped into the column with a Model NS-1007constant-?ow pump(Beijing Institute of New Technology Application,Beijing, China).Continuous monitoring of the ef?uent was achieved with a Model8823A-UV Monitor(Beijing Institute of New Technology Application,Beijing,China)at254nm.A manual sample injection valve with10mL loop(Tianjin High New Science Technology Company,Tianjin,China)was used to introduce the sample into the column.A portable recorder(Yokogawa Model3057,Sichuan Instrument Factory,Chongqing,China)was used to draw the chromatogram.

HPLC analysis was carried out on a Waters Millennium32system model600(Milford,MA,USA)including a photodiode array detec-tor(DAD model996),and a system composed by a multisolvent delivery system,system controller,pump,and workstation.

2.3.Sample preparation

Roots of died ginger(300g),were milled to powder(ca.60 mesh)by a disintegrator.It was extracted three times(3?60min),each with1800mL of ether by sonication using a KT-300Y ultrasonic cleaning instrument(25MHZ,250W)(Kete Ultrasonic Instrument Co.,Jining,China)at room temperature.The combined ether extract was evaporated to dryness under reduced pressure with a rotary evaporator EYELA model N-1001(Rikakikai Co.,To-kyo,Japan).The residue was further subjected to silica chromatog-raphy(300g of silica,200–300mesh,Qingdao,China)by eluting stepwise with petroleum ether–ethyl acetate mixtures(10:0,8:2 and7:3,v/v)to obtain3fractions.Fraction two(petroleum ether–ethyl acetate8:2,v/v)was evaporated to dryness under re-duced pressure and yielded1.7g of crude sample.A portion of this partially puri?ed sample was subjected to HSCCC for further isola-tion and separation.

2.4.Measurement of partition coef?cient(K)values

The K values of the target components were determined accord-ing to the literature(Wang et al.,2005)by HPLC analysis as fol-lows:1mg of the crude sample was weighed into a10mL test tube followed by2mL of each phase of a pre-equilibrated two-phase solvent system.Then the test tube was stoppered and sha-ken vigorously for1min to thoroughly equilibrate the sample be-tween the two-phases.Equal volumes(about100l L)of the upper and lower phases were evaporated to dryness separately.The res-idues were diluted with methanol to1mL and analysed by HPLC to determine the K value of each component.The K value was de?ned as the ratio between the peaks areas referring to the presence of the compound in the upper/lower phase.

2.5.Preparation of the two-phase solvent system and sample solution

The selected solvent system was thoroughly equilibrated in a separation funnel by repeated vigorous shaking at room tempera-ture.The two phases were separated shortly prior to use.The lower phase was used as the mobile phase,while the upper phase was used as the stationary phase.The sample solution was prepared by dissolving the crude extract in a solution composed of the upper and lower phases(1:1,v/v)of the solvent system used for the HSCCC separation.

2.6.Separation procedure

Preparative HSCCC was performed as follows:the multilayer coiled column was?rst entirely?lled with the upper phase as sta-tionary phase.Then the lower phase was pumped into the head end of the inlet column at a?ow-rate of2mL/min,while the appa-ratus was rotated at800rpm.After reaching the hydrodynamic equilibrium,as indicated by a clear mobile phase eluting at the tail outlet,the sample solution(360mg in6mL of a mixture1:1of both phases)was injected through the injection valve.The ef?uent from the outlet of the column was continuously monitored with a UV detector at280nm.Each peak fraction was collected according to the visual chromatogram.After the separation was completed, the stationary phase was pumped out of the column with pressur-ised nitrogen and collected in a graduated cylinder to measure the retention volume.

2.7.Analysis and characterisation of HSCCC fractions

The crude sample which was pre-puri?ed by silica column and puri?ed fractions isolated from the HSCCC were analysed by HPLC on a Shim-pack(Shimadzu,Japan)VP-ODS column(250?4.6mm, i.d.,5l m)with the column temperature at25°C.The mobile phase,a solution of methanol and water(70:30,v/v),was delivered at a?ow-rate of1mL/min.The ef?uent was monitored by a DAD at 280nm.

X.Wang et al./Food Chemistry125(2011)1476–14801477

The HSCCC fractions were characterised by HPLC–ESI-MS on an Agilent 1100/MS-G1946(Agilent,California,USA)and by NMR spectra on a Varian-600NMR spectrometer (Varian,Palo Alto,USA)with chloroform (CDCl 3)as solvent and tetramethylsilane (TMS)as internal standard.3.Results and discussion

3.1.Preparation of the crude gingerols

Despite the fact that many Chinese Traditional Medicine prepa-rations consist of crude plant extracts and are not further puri?ed prior to use,isolation and structure elucidation of the main consti-tutes are fundamental to provide a better understanding of their bioactivity.However,separation and puri?cation of chemical com-pounds from natural products is still a key step,because most of the extracts are composed of complex mixtures.

Ginger is used both as spice and traditional herbal medicine and contains mainly gingerols,shogaols,zingerones,zingiberene,ses-quiphellandrene,and curcumene,etc.(Zhan,Yin,Zhang,&Xu,2009).Considering the physicochemical properties of gingerols,such as their low polarity and unstable chemical property,ether was selected to extract the crude gingerols from ginger at room temperature using the ultrasound-assisted extraction method.Fig.2a shows the HPLC chromatogram of the crude extract of gin-ger.The result indicated that the crude extract contained several compounds including 6-gingerol,8-gingerol,10-gingerol and some unknown compounds.After the previous silica gel partitioning,the gingerols could be well enriched as it is shown in Fig.2b.The en-riched sample was subjected to the HSCCC for further separation.3.2.Selection of two-phase solvent system

Successful separation by HSCCC largely depends upon the selec-tion of a suitable two-phase solvent system,which provides an ideal range of the K values for the target compounds (Foucault &Chevolot,1998;Ito &Conway,1996).The most suitable K value of the target compound is close to 1.If it is much smaller than 1,the solutes will be eluted close to each other near the solvent front,which may result in loss of peak resolution;if the K value is much greater than 1,the solutes will be eluted in excessively broad peaks,and may lead to extended elution time.

According to the properties of gingerols and previous studies on HSCCC,a series of low-polar solvent systems composed of petro-leum ether,ethyl acetate,methanol and water by changing the vol-ume ratios were designed to achieve an ef?cient resolution of the target compounds.The K values of the different solvent systems were measured and summarised in Table 1.

It can be seen from Table 1that the use of petroleum ether–ethyl acetate–methanol–water at the volume ratios of 1:0.2:1:0.2and 1:0.2:0.8:0.4as solvent systems afforded small K values that are unsuitable for the separation of the gingerols.The use of of petro-

leum ether–ethyl acetate–methanol–water (1:0.2:0.5:0.7)afforded a suitable K value for separating 6-gingerol but unsuitable (too long)for 8-gingerol and 10-gingerol.On the other hand,both of these latter compounds have achieve good K values in the system by petroleum ether–ethyl acetate–methanol–water (1:0.2:0.7:0.5),which led to a small and inadequate K value for 6-gingerol instead.So,taking together,these results were integrated in a single process,by using a stepwise elution mode as a strategy for the HSCCC.It was than assayed the HSCCC separation with petroleum ether–ethyl acetate–methanol–water (1:0.2:0.5:0.7)and (1:0.2:0.7:0.5).The upper phase of petroleum ether–ethyl acetate–methanol–water (1:0.2:0.5:0.7)was used as the stationary phase.The lower phase of petroleum ether–ethyl acetate–methanol–water (1:0.2:0.5:0.7)and (1:0.2:0.7:0.5)were used as mobile phase in gradient elution mode (0–170min,the lower phase of 1:0.2:0.5:0.7as mobile phase;170–360min,the lower phase of 1:0.2:0.7:0.5as mobile phase),good separation results could be obtained.

Based on the HPLC analysis and the elution curve of the pre-parative HSCCC shown in Fig 3,all the collected fractions were pooled according to their similar pro?les.They were then lyophi-lised to furnish,from 360mg of the pre-puri?ed sample,132mg of 6-gingerol,31mg of 8-gingerol and 61mg of 10-gingerol were obtained.The purities of 6-gingerol,8-gingerol and 10-gingerol were 98.7%,99.3%and 98.5%,respectively,as indicated by the rel-ative peak area in HPLC-DAD at 280nm.

3.3.Structural characterisation of isolated compounds

The structures of all the compounds corresponding to the HSCCC peak 1–3fractions were identi?ed by LC-ESI-MS (operated both in the negative and positive ion mode in the range of m/z 100–1000),1

H NMR and 13C NMR spectra with TMS as internal standard.

Compound 1(peak 1in Fig.3):Positive ESI-MS (m/z ):317[M +Na]+,611[2M +Na]+.1H NMR (CDCl 3,600MHz):0.88(3H,t ,J =7.2Hz,CH 3),1.22$1.50(4H,m ,H-2,H-3),1.50$1.68(4H,m ,H-4,H-5), 2.47(2H,t ,J =7.2Hz,H-10), 2.57(2H,m ,H-9),2.71$2.82(2H,m ,H-7),3.83(3H,s ,OCH 3),4.02(1H,m ,CHOH),6.05(1H,brs,phenol H),6.62$6.80(3H,m ,arom H).13C NMR (CDCl 3,125MHz):13.9(C-1),31.5(C-2),22.5(C-3),24.9(C-3),31.5(C-5),36.3(C-9),45.2(C-10),49.2(C-7),55.7(OCH 3),67.6

Table 1

The K values of gingerols in different solvent systems.Petroleum ether–ethyl acetate–methanol–water K values 6-gingerol 8-gingerol 10-gingerol 1:0.2:1:0.20.040.120.201:0.2:0.8:0.40.080.150.411:0.2:0.5:0.70.88 4.2812.831:0.2:0.6:0.60.36 1.64 6.741:0.2:0.7:0.5

0.20

0.51

1.46

1478X.Wang et al./Food Chemistry 125(2011)1476–1480

(CHOH),111.0$120.5(3arom CH),132.5(arom CCH2),143.8 (arom COH),146.5(arom COCH3),212.4(C-8).Comparing the above data with the literature(Guy&Chewki,1993),the com-pound1was identi?ed as6-gingerol.

Compound2(peak2in Fig.3):Positive ESI-MS(m/z):322 [M+Na]+,667[2M+Na]+.Negative ESI-MS:321[MàH]à.1H NMR(CDCl3,600MHz):d0.86(3H,t,J=7.2Hz,CH3),1.27$1.50 (12H,m,6CH2),1.45$1.50(2H,m,H-9),2.46(2H,t,J=7.2Hz, H-11),2.81(2H,t,J=7.2,benzolic CH2),3.01(1H,brs,OH),3.86 (3H,s,OCH3), 4.01(1H,m,CHOH),5.64(1H,brs,phenolic H), 6.64-6.83(3H,m,arom H).13C NMR(CDCl3,125MHz):d13.9(C-1),22.5$49.2(9CH2),55.7(OCH3),67.5(CHOH),110.8$120.5 (3arom CH),132.5(arom CCH2),143.8(arom COH),146.3(arom COCH3),211.4(C-8).Comparing the above data with the literature (Guy&Chewki,1993),the compound2was identi?ed as8-gingerol.

Compound3(peak3in Fig.3):Positive ESI-MS(m/z):373 [M+Na]+,723[2M+Na]+.Negative ESI-MS:349[MàH]à.1H NMR(CDCl3,600MHz):d0.88(3H,t,J=7.2Hz,CH3),1.25$1.49 (16H,m,8CH2),2.57(2H,t,J=7.2Hz,H-11),2.81(4H,m,H-13,

14),3.84(3H,s,OCH3),4.02(1H,m,CHOH),5.64(1H,s,phenolic

H),6.64$6.82(3H,m,arom H).13C NMR(CDCl3,125MHz):d

13.9(C-1),22.5$49.2(11CH2),55.7(OCH3),67.5(CHOH), 110.9$120.5(3arom CH),132.5(arom CH2),143.8(arom COH), 146.5(arom COCH3),211.4(C-12).Comparing the above data with the literature(Guy&Chewki,1993),the compound3was identi-?ed as10-gingerol.

4.Conclusion

Followed by a suitable extraction and clean-up partitioning in silica gel,6-gingerol,8-gingerol and10-gingerol were obtained from the extract of ginger by HSCCC successfully for the?rst time. Using a stepwise elution with two solvent systems,HSCCC can yield hundreds of milligrams of the three compounds with high purity in a single run.The gingerols obtained can be used as refer-ence substances for chromatographic purposes as well as for fur-ther physiological studies.The results of the present study clearly demonstrated that HSCCC coupling with suitable extraction and pre-puri?cation method is an ef?cient way for separation and puri?cation of bioactive compounds from natural sources. Acknowledgements

Financial supports from the Natural Science Foundation of Chi-na(20872083),the Key Science and Technology Program of Shan-dong Province and the State Key Laboratory of Crop Biology (2008KF05)are gratefully acknowledged.

References

Chu,X.,Sun,A.,&Liu,R.(2005).Preparative isolation and puri?cation of?ve compounds from the Chinese medicinal herb Polygonum cuspidatum Sieb.Et Zucc by high-speed counter-current chromatography.Journal of Chromatography.A,1097,33–39.

EI-Abhar,H.S.,Hammad,L.N.,&Gawad,H.S.(2008).Modulating effect of ginger extract on rats with ulcerative colitis.Journal of Ethnopharmacology,118, 367–372.

Foucault, A.P.,&Chevolot,L.(1998).Counter-current chromatography: Instrumentation,solvent selection and some recent applications to natural product puri?cation.Journal of Chromatography.A,808,3–22.

Frighetto,R.,Welendorf,R.,Nigro,E.,Frighetto,N.,&Siani,A.(2008).Isolation of ursolic acid from apple peels by high speed counter-current chromatography.

Food Chemistry,106,767–771.

Grzanna,R.,Lindmark,L.,&Frondoza,C.G.(2005).Ginger-an herbal medicinal product with broad anti-in?ammatory actions.Journal of Medicinal Food,8, 125–132.

Guy,S.,&Chewki,Z.C.(1993).Total synthesis of natural gingerols,the three active principles of ginger.Journal of Organic Chemistry,58,2181–2185.

Ito,Y.(1981).Ef?cient preparative counter-current chromatography with a coil planet centrifuge.Journal of Chromatography,214,122–125.

Ito,Y.,&Conway,W. D.(1996).High-Speed Countercurrent Chromatography, Chemical Analysis,vol.132(pp.34–36).New York:Wiley/Interscience.

Jolad,S.D.,Lantz,R.C.,Chen,G.J.,Bates,R.B.,&Timmermann,B.N.(2005).

Commercially processed dry ginger(Zingiber of?cinale):Composition and effects on LPS-stimulated PGE2production.Phytochemistry,66,1614–1635.

1

2

3

X.Wang et al./Food Chemistry125(2011)1476–14801479

Lantz,R.C.,Chen,G.J.,Sarihan,M.,Solyom,A.M.,Jolad,S.D.,&Timmermann,B.N.

(2007).The effect of extracts from ginger rhizome on in?ammatory mediator production.Phytomedicine,14,123–128.

Lee,H.S.,Seo,E.Y.,Kang,N.E.,&Kim,W.K.(2008).[6]-Gingerol inhibits metastasis of MDA-MB-231human breast cancer cells.Journal of Nutritional Biochemistry, 19,313–319.

Masuda,Y.,Kikuzaki,H.,Hisamoto,M.,&Nakatani,N.(2004).Antioxidant properties of gingerol related compounds from ginger.BioFactors,21,293–296. Park,K.K.,Chun,K.S.,Lee,J.M.,Lee,S.S.,&Surh,Y.J.(1998).Inhibitory effects of

[6]-gingerol,a major pungent principle of ginger,on phorbol ester-induced

in?ammation,epidermal ornithine decarboxylase activity and skin tumor promotion in ICR mice.Cancer Letters,129,139–144.

Peng,J.,Fan,G.,&Wu,Y.(2005).Supercritical?uid extraction of aurentiamide acetate from Patrinia villosa Juss and subsequent isolation by silica gel and high-speed counter-current chromatography.Journal of Chromatography.A,1083, 52–57.

Policegoudra,R.S.,Abiraj,K.,Gowda,D.C.,&Aradhya,S.M.(2007).Isolation and characterization of antioxidant and antibacterial compound from mango ginger (Curcuma amada Roxb.)rhizome.Journal of Chromatography B,852,40–48. Schwertner,H.A.,&Rios,D.C.(2007).High-performance liquid chromatographic analysis of6-gingerol,8-gingerol,10-gingerol,and6-shogaol in ginger-containing dietary supplements,spices,teas,and beverages.Journal of Chromatography B,856,41–47.

Shi,S.,Huang,K.,Zhang,Y.,Zhao,Y.,&Du,Q.(2007).Puri?cation and identi?cation of antiviral components from Laggera pterodonta by high-speed counter-current chromatography.Journal of Chromatography B,859,119–124.

Shi,S.,Zhang,Y.,Huang,K.,Liu,S.,&Zhao,Y.(2008).Application of preparative high-speed counter-current chromatography for separation and puri?cation of lignans from Taraxacum mongolicum.Food Chemistry,108,402–406.Shukla,Y.,Prasad,S.,Tripathi,C.,Singh,M.,George,J.,&Kalra,N.(2007).In vitro and in vivo modulation of testosterone mediated alterations in apoptosis related proteins by[6]-gingerol.Molecular Nutrition&Food Research,51,1492–1502. Shukla,Y.,&Singh,M.(2007).Cancer preventive properties of ginger:A brief review.Food and Chemical Toxicology,45,683–690.

Tapsell,L.C.,Hemphill,I.,Cobiac,L.,Patch,C.S.,Sullivan,D.R.,Fenech,M.,et al.

(2006).Health bene?ts of herbs and spices:The past,the present,the future.

Medical Journal of Australia,185(Suppl.4),S4–S24.

Wang,X.,Cheng, C.,Sun,Q.,Li, F.,Liu,J.,&Zheng, C.(2005).Isolation and puri?cation of four?avonoid constituents from the?owers of Paeonia suffruticosa by high-speed counter-current chromatography.Journal of Chromatography.A,1075,127–131.

Wang,W.H.,&Wang,Z.M.(2005).Studies of commonly used traditional medicine-ginger.Zhong Guo Zhong Yao Za Zhi,30,1569–1573.

White, B.(2007).Ginger:An overview.American Family Physician,75, 1689–1691.

Wu,S.,Sun,C.,Cao,X.,Zhou,H.,Zhang,H.,&Pan,Y.(2004).Preparative counter-current chromatography isolation of liensinine and its analogues from embryo of the seed of Nelumbo nucifera https://www.wendangku.net/doc/a516856349.html,ing upright coil planet centrifuge with four multilayer coils connected in series.Journal of Chromatography.A, 1041,153–162.

Young,H.Y.,Luo,Y.L.,Cheng,H.Y.,Hsieh,W.C.,Liao,J.C.,&Peng,W.H.(2005).

Analgesic and anti-in?ammatory activities of[6]-gingerol.Journal of Ethnopharmacology,96,207–210.

Zhan,K.Y.,Yin,H.Z.,Zhang,X.Z.,&Xu,K.(2009).Chemical composition analysis on SEF-CO2extracts of seed ginger and fresh ginger.Shi Pin Ke Xue,30, 33–35.

Zhao,X.Y.,Yang,Z.B.,Gai,G.S.,&Yang,Y.F.(2009).Effect of super?ne grinding on properties of ginger powder.Journal of Food Engineering,91,217–222.

1480X.Wang et al./Food Chemistry125(2011)1476–1480

生姜种植之施肥管理

生姜种植之施肥管理 生姜在种植管理中除施足基肥外一般进行三次追肥。第一次追“壮苗肥”:幼苗期植株生长量小,需肥不多,但幼苗生长期长,为促进幼苗生长健壮,通常在苗高30厘米左右,具有1~2个分枝时进行第一次追肥。这次追肥以氮肥为主,每亩可施硫酸铵或磷酸二铵20公斤。若播期过早,苗期较长,可随浇水进行2~3次施肥,施肥数量同上。 生姜种植第二次追“转折肥”:在立秋前后,此时是生姜生长的转折时期,也是 吸收养分的转折期,自此以后,植株生长加快,并大量积累养分形成产品器 官。因此,对肥水需求量增大,为确保生姜高产,于立秋前后结合姜田除草, 进行第二次追肥。这次追肥对促进发棵和根茎膨大有着重要作用。这次追肥一 般将饼肥或肥效持久的农家肥与速效化肥结合施用。每亩用粉碎的饼肥70~80 公斤,腐熟的鸡粪3~4方,复合肥50~100公斤或尿素20公斤、磷酸二铵30 公斤、硫酸钾50公斤,在姜苗的一侧距植株基部15厘米处开一条施肥沟,将 肥料撒入沟中、并与土壤混匀,然后覆土封沟、培土,最后浇透水。 生姜种植第三次追“壮姜肥”:在9月上旬,当姜苗具有6~8个分枝时,也正是 根茎迅速膨大时期,可根据植株长势进行第三次追肥,称“壮姜肥”。对于长势 弱或长势一般的姜田及土壤肥力低的姜田,此期可追施速效化肥,尤其是钾肥 和氮肥,以保证根茎所需的养分。一般每亩施复合肥25~30公斤或硫酸铵、 硫酸钾各2.5公斤。对土壤肥力高,植株生长旺盛的姜田,则应少施或不施氮 肥,防止茎叶徒长而影响养分累积。 锌肥和硼肥通常可作基肥或根外追肥。在缺锌缺硼姜田作基肥时,一般每亩施 用1~2公斤硫酸锌、硼砂0.5~1公斤,与细土或有机肥均匀混合,播种时施 在播种沟内与土混匀:如作追肥和叶面喷施,可用0.05%~0.1%硼砂每亩 50~70升,分别于幼苗期、发棵期,根茎膨大期喷施三次。一语二言冉保杰, 山东安丘市凌河镇人,河北农业大学名誉教授,一语二言是他的论坛名,种姜

25种治疗脱发的偏方1

脱发的主要症状是头发油腻,如同擦油一样,亦有焦枯发蓬,缺乏光泽,有淡黄色鳞屑固着难脱,或灰白色鳞屑飞扬,自觉瘙痒。若是男性脱发,主要是前头与头顶部,前额的发际与鬓角往上移,前头与顶部的头发稀疏、变黄、变软,终使额顶部一片光秃或有些茸毛;女性脱发在头顶部,头发变成稀疏,但不会完全成片的脱落。 中医学认为本病有两种原因:一是血热风燥,血热偏胜,耗伤阴血,血虎生风,更伤阴血,阴血不能上至巅顶濡养毛根,毛根干涸,或发虚脱落;二是脾胃湿热,脾虚运化无力,加之恣食肥甘厚味,伤胃损脾,致使湿热上蒸巅顶,侵蚀发根,发根渐被腐蚀,头发则表现粘腻而脱落。 有关治疗脱发的偏方、秘方主要如下: [方一] 柏枝(干药)、椒仁、半夏各90克。将药加水500毫升,煎至250毫升,入蜜少许,再煎1--2沸。用时人生姜汁少许,调匀,擦无发处,每日2次。 [方二] 白矾、郁金各等分。将白矾、郁金制成丸,每次4--5克,每日2次。 [方三] 食盐15克。将食盐加入1500毫升温开水,搅拌均匀,洗头,每周1--2次。 此法长期应用,可防止脱发。 [方四] 榧子3枚,胡桃2个,侧柏叶30克。将药共捣浸雪水梳头,其发水不脱落,而且光润。 本方尤适用于肾虚型脱发。 [方五] 侧柏叶若干。将柏叶阴干研细,以春油浸之。每戟蘸刷头,头发长出后,用猪胆汁人汤洗头。

本方尤适用于妇女脱发。 [方六] 车前草200克,米酷适量。将车前草全草焙成炭,浸入米醋,一周后用该药醋外涂患处,每日2--3次。[方七] 黑牛胆1个,槐豆适量。将槐豆装入有胆汁的牛胆内装满,浸透槐豆即可,内服。每次9克,每日3次。[方八] 侧柏叶240克(焙干),当归(全身)120克。将药共研为末(忌铁器),水糊为丸,如梧桐子大。每服50--70丸,早、晚各1服,用黄酒或盐汤送下。 [方九] 芝麻花、鸡冠花各60克,樟脑1.5克,白酒500克。将芝麻花,鸡冠花撕碎。然后浸泡人酒内密封,15日后过滤、再将樟脑人药酒中,使之溶化,备用。以药棉蘸药酒,涂搽脱发区,每日搽3--4次。 本方尤适用于神经性脱发。 [方十] 芝麻梗、清明柳(清明节采的柳枝嫩叶)各90--120克。煎汤洗发,并摩擦头皮,连用1--7日。 本方尤适用于脂溢性脱发。 [方十一] 猪苦胆1个。将猪苦胆汁倒入半面盆温水中,搅拌后洗头或洗患处,把油脂状鳞屑清除干净,再用清水冲洗,每日1次。 本方尤适用于脂溢性脱发。 [方十二] 活蜈蚣3条。将活蜈蚣用菜油浸3--4日,先取生木片汤洗发,洗后,以蜈蚣油涂头至愈止。 [方十三] 代赭石。将代赭石研为细面,每日早、晚各服3克,白天水送服,连服2--3个月。 [方十四] 枸杞子15克,大米50克。将枸杞子、大米洗净,放砂锅中煮成粥,食用。 [方十五] 何首乌30克,大米50克,冰糖适量。将何首乌放人砂锅中煎取浓汁后去药渣,然后放人大米和冰糖,将米煮成粥即成,食用。 本方尤适用于脱发久不愈。 [方十六] 野蔷薇嫩枝100克。猢狲姜50克。将药水煎百沸,取汁刷头。 本方尤适用于病后脱发。

生姜烧水治------大量掉头发有奇效

生姜烧水治------大量掉头发有奇效 1 看到一篇帖子说头发稀少或者掉头发的姐妹有什么办法因为我的秘方太有效就另开帖子说明首先,我老婆以前就头发稀少,头上成块的没头发,还掉头发。后来在湖南遇见一个老中医,开了一个方子,吃了后头发开始长,也不咋掉了,而且开始长新头发,非常有效,后来把这方子告诉身边掉头发,头发少的朋友,用了都说有效。关键是这个方子非常便宜,呵呵!开始公布,一共是3种药:鱼肝油,胱氨酸,维生素B6。都是一块多一瓶,都是一天3次,按着瓶上说明吃几片去吃,记住,3瓶一块吃,不要断。效果绝对好,比可贵的其他药有效得多。 2-煮生姜水洗头治疗脱发。我洗了两次,效果非常好。不但治疗了脱发,连头皮屑都治好了~ 本人被头皮屑困扰多年,曾用了,采乐,什么霸王洗发水。。根本不管用,想不到被2块生姜给治好了就是把生姜切小,放在锅里加水小火煮,煮到汤汁变得黄黄的有浓烈姜味溢出就可以使用了..用姜水抹在头皮上就可以了~ 等它自然干掉,可洗可不洗,一周一两次。还有就是可以喝红枣黄芪汤。也是生发的。电热壶烧开水的

时候把姜切好放进去。 3-我就是看了那个生姜水洗头发的帖子后试了一下,到现在已经洗过3次了,头发多没多我没看不出来,但是控制脱发的效果是很明显,以前每次洗头头发都掉一大把,现在好了很多。头发也有点光泽了,而且蓬松了,哈哈。具体方法:大润发买的生姜(嫩的),切了大约20~30片,放大半锅水一起煮,煮啊煮,一直煮直到水的颜色很黄,并且整个屋子弥漫着姜的味道,我用的电磁炉,160度火,半小时左右。然后,我用买豆浆机时赠的那个滤网把姜水过滤,等姜水冷却成温水就可以洗啦,我是直接就把自己脑袋泡进去了,不是说一定要泡到头皮么,不过TZ们千万别把姜水弄到脸尤其是眼睛上,很疼。我是每隔1天洗1次。 4-我的头发三大症状:症状一:头皮屑很多,多到什么地步?刚洗完头,一下午时间久又长出来了,很且很大块~ 我都有心理疾病了,比如有人站在我身后,我就很紧张,恐怕被人看到我有头皮屑。每次出门之前,必问我老公,让他看看我有没有头皮。症状二:我头发很容易油,但是又很干!是真的,又油又干。症状三:最近1,2年开始掉头发,本来我头发很多,很且很粗的。最近一两年,我洗头的时候,发现头发掉的很多~~ 然后,我一照镜子发现,

大姜种植栽培技术详解

大姜种植栽培技术详解(莱州) 2010年02月20日星期六 17:23 几年来,大姜亩产量不断提高,从先前的亩产三、四千斤,发展到现在的亩产上万斤,但是,大姜生产获高产,品种虽然关键,种植技术的高超才是大姜获高产可靠保证。 准备工作 通常按3个步骤进行,即晒姜困姜、选种、催芽。 1、晒姜困姜:于适期播种前20~30天(昌邑地区姜农以温度保证在0度以上时即可进行),从贮藏窖内取出姜种,用清水洗去姜块上的泥土,平铺在草席或干净的地上晾晒1~2天,傍晚收进室内,以防夜间受冻。据姜农们介绍,晒种主要有以下几方面的作用: 第一,提高姜块温度,促进内部养分分解,从而加快发芽速度。 一般姜窖内的温度为13~14度,生姜在此温度条件下,基本处于休眠状态,经晒姜后,种姜体温明显提高。据测定,在室温22度条件下,堆放室内而未经晾晒的姜块表面温度为21度,内部温度为20度。在阳光下晾晒的姜块表面温度为29.5度,内部温度为28度。 第二,减少姜块水分,防止姜块腐烂。由于贮姜窖内空气湿度大,姜块含水量极高,经适当晾晒后,可降低姜块水分尤其是自由水含量,防止催芽过程中发生霉烂。 第三,有利于选择健康无病姜种。带病姜块未经晾晒时,病症不甚明显,经晾晒之后,则往往表现为干瘪皱缩,色泽灰暗,病症十分明显,因而便于淘汰病姜。 姜种晾晒1~2天后,即将其置于室内堆放2~3,姜堆上覆以草帘,促进养分分解,称“困姜”。一般经2~3次晒姜、困姜,便可开始催芽了。 必须注意,晒姜时要注意适度,切不可晒得过度,以免姜块干缩,出芽细弱。 2、选种:晒姜困姜过程中及催芽前须进行严格选种。选种时应选择姜块肥大、丰满,皮色光亮,肉质新鲜,不干缩、不腐烂、未受冻、质地硬,无病虫为害的健康姜块做种,严格淘汰瘦弱瘪、肉质变褐及发软的姜块。 3、消毒催芽:消毒催芽可促使种姜幼芽快速萌发,使种植后出苗快而整齐,病害减少,因而是一项很重要的技术措施。选择姜块充分成熟、肥大、具有1~2个壮芽、无病害的、健壮的金昌大姜做姜种。消毒用1:1.5:120的波尔多液浸种20分钟即可杀死种姜表面的病菌。种姜消毒后,先晒2~3天,待姜块表面水分消失时,即可堆放,用稻草或麻包覆盖进行保温催芽,要求保持湿润和20~25℃温度条件。催芽时培育粗短整齐的姜芽,保证苗齐苗壮。当姜芽长到1厘米时即可播种。 高产栽培六大措施 1、严格选地,避免连作。 生姜遇高温高湿的环境,容易发生腐烂病,俗称姜瘟。姜瘟是一种细菌性的土传病害,连作发病严重,造成大量减产。由于生姜有这种毁灭性病害,所以生姜不宜连作,应与十字花科作物、豆科作物等进行3~4年的轮作。种植生姜以选择土质肥沃、土层深厚,有机质多的壤土或砂壤土为好。要求田块排灌方便,不易积水。 2、适时播种,合理密植。

生姜种植技术

生姜种植技术/方法/管理-山东平度生姜基地 http://hi.baidu .com/sdmmw 2007-11-06 19:17 生姜种植与管理 一、选地 选择土层深厚、疏松肥沃、排灌方便的沙质土地种植,忌连作。 二、整地和施基肥 播种前亩施农家肥1000-1500公斤、钙镁磷肥50公斤、复合肥20公斤作基肥,施后要充分犁翻耙匀。分畦开沟,每畦宽1米,畦高20公分,并在畦面横开播种沟。 三、种姜处理和播种 播种前先将姜种置于阳光下晒2天,然后用2%福尔马林浸种消毒6-8小时(注意消毒后要用清水洗干净),或用农用链霉素浸种消毒6-7个小时。播种适期为3月初至4月中旬,播种规格一般为株行距0.25米×0.4米,每亩播种姜块3500-4000个。 四、田间管理 1、适时追肥。苗期追肥以轻、淡肥为主;以后重追肥两次,第一次是在6月上旬至7月上旬,此时是孙姜旺长期,是生姜的吸肥高峰期,亩追施复合肥20公斤、尿素10公斤;第二次是在9月上旬-10月上旬,此时是生姜块茎迅速膨大期,亩追施复合肥30公斤、氯化钾10公斤。 2、适当遮荫覆盖。夏季气温高、日照强,对生姜越夏极为不利,做好遮荫覆盖十分必要。可在畦边间套种玉米、大豆等作物或搭棚遮荫。同时在姜行间覆盖稻草,减少地面辐射,增加土壤湿度。 3、水分管理。生姜整个生长期间必须保持土壤湿润,干旱时要求灌“跑马水”,畦沟渍水时要及时排清。 五、病虫害防治 (1)防治姜瘟:播种前选用无病种姜,做好种姜消毒。发病初期喷施农用链霉素或叶青双或波尔多液,每隔15天喷一次,共喷3-4次。重病株要及时挖除烧毁,并在姜穴撒石灰消毒。 (2)防治炭疽病:炭伏(苯醚.咪鲜胺)。 (3)防治条螟:在发生期用敌百虫+杀虫威防治。 生姜种植月历表 4月气温稳定在15℃以上,地温16℃以上即可露地播种,最好根据各地情况播种,一般适期为清明至谷雨,在这段时间内,以早播较好。每块姜重50~80克,具1~2个壮芽,用250~500毫克/升的乙烯利浸种15分钟后,采用平摆法播种,单行栽植,株距18~24厘米,每亩2500~4000株,亩用种量150~250公斤。播后盖一层薄土,然后用堆肥、厩肥等盖姜种,最后覆草保温。幼苗期一般不施肥水。 5月从5月上旬开始,即可为姜苗遮荫,可采用搭架遮阴,或地面覆草遮阴,或间作遮阴或盖黑色地膜遮阴等多种形式。姜地要随时清沟沥水,严防渍水烂姜。 加强中耕除草,化学除草可用25%的除草醚可湿性粉剂,采用喷雾法,每667平方米用1公斤左右,加入100公斤左右清水配成药液,于姜播种后,趁土壤湿润将药液均匀地喷在姜沟及周围地面上,倒退操作。也可用杜尔、拉索等药剂。 6月从6月初开始注意钻心虫的危害,每隔7~10天喷1次溴氰菊脂类杀螟

生姜种植管理方法

生姜种植管理方法 生姜是姜科多年生草本植物姜的新鲜根茎,别名有姜根、百辣云、勾装指、因地辛、炎凉小子、鲜生姜、蜜炙姜。姜的根茎(干姜)、栓皮(姜皮)、叶(姜叶)均可入药。生姜在中医药学里具有发散、止呕、止咳等功效。 一、种植前期的准备 1、精细整地,施足底肥。选择土质肥沃、水浇条件好的地块,在4月上旬进行精细整地。结合整地撒施优质腐熟鸡粪4方或优质圈肥1OOOO千克做基肥。在高肥水地块按6O——65公分行距开沟备播,沟施豆饼1OO千克、三元复合肥5O千克、硫酸钾5O千克,锌肥2千克,硼肥1千克做种肥。 2、精选姜种,培育壮芽。在播种前3O天左右,将姜种取出,去掉姜块上的泥土,选用肥大、丰满、皮色光亮、不干缩、不腐烂、不受冻、无病虫的健康姜块作种。要求单株种姜块重达6O克以上,每亩地-般用种姜5OO千克。 3、晒姜困姜。3月上旬选晴天,中午八九点钟,将精选好的姜种放在阳光充足的地上晾晒,晚上收进屋内,盖上草帘,以促进姜块营养的分解。晒姜3——4天,困种1O天,保持温度在13——15摄氏度,以促进养分分解和芽的分化。

4、浸种催芽。对精选、晒后的姜种,用姜瘟散、生姜宝、绿霸等农药2OO倍液进行浸种,-般1O分钟,可起到杀菌、灭菌的作用,浸种后晾干催芽。以筐盛姜块,在棚室或阳畦等处催芽,保持空气湿度75——85%,温度25摄氏度,2O天后,等姜芽长出O.5公分时,按姜芽大小分批播种。 二、播种和苗期管理 1、覆膜、提早播种。在4月15日播种。盖膜前用专用除草剂每亩15O克,对水喷施,清除膜下杂草。地膜可选用厚度O.OO5——O.OO6毫米、宽度12O毫米的地膜。 2、稀植、增大姜块。高产地块适宜种植密度为7OOO 株/亩,行距5O-55公分,株距25公分。用种量-般每亩5OO千克左右。 3、遮阴、促进生长。生姜出苗达5O%以上,及时进行姜田遮阴,以促进姜苗健壮生长。具体方法如下:将遮阳网作成条幅式拉于生姜行间,两头用竹竿固定,幅宽6O——65公分,可选择遮光率为4O%的遮阳网。 三、生长期的肥水管理 生姜在精细整地、足施底肥,精选姜种、科学播种的基础上,要想获得高产还必须抓好中后期管理,其主要技术要点如下: 1、轻施提苗肥,重施合枝肥。于6月上中旬结合浇水,

最新生发秘方大全

生发秘方大全 1-看到一篇帖子说头发稀少或者掉头发的姐妹有什么办法因为我的秘方太有效就另开帖子说明首先,我老婆以前就头发稀少,头上成块的没头发,还掉头发。后来在湖南遇见一个老中医,开了一个方子,吃了后头发开始长,也不咋掉了,而且开始长新头发,非常有效,后来把这方子告诉身边掉头发,头发少的朋友,用了都说有效。关键是这个方子非常便宜,呵呵!开始公布,一共是3种药:鱼肝油,胱氨酸,维生素B6。都是一块多一瓶,都是一天3次,按着瓶上说明吃几片去吃,记住,3瓶一块吃,不要断。效果绝对好,比可贵的其他药有效得多。 2-煮生姜水洗头治疗脱发。我洗了两次,效果非常好。不但治疗了脱发,连头皮屑都治好了~ 本人被头皮屑困扰多年,曾用名贵牌子洗发水根本不管用,想不到被2块生姜给治好了就是把生姜切小,放在锅里加水小火煮,煮到汤汁变得黄黄的有浓烈姜味溢出就可以使用了..用姜水抹在头皮上就可以了~ 等它自然干掉,可洗可不洗,一周一两次。还有就是可以喝红枣黄芪汤。也是生发的。电热壶烧开水的时候把姜切好放进去。 3-我就是看了那个生姜水洗头发的帖子后试了一下,到现在已经洗过3次了,头发多没多我没看不出来,但是控制脱发的效果是很明显,以前每次洗头头发都掉一大把,现在好了很多。头发也有点光泽了,而且蓬松了,哈哈。具体方法:大润发买的生姜(嫩的),切了大约20~30片,放大半锅水一起煮,煮啊煮,一直煮直到水的颜色很黄, 并且整个屋子弥漫着姜的味道,我用的电磁炉,160度火,半小时左右。然后,我用买豆浆机时赠的那个滤网把姜水过滤,等姜水冷却成温水就可以洗啦,我是直接就把自己脑袋泡进去了,不是说一定要泡到头皮么,不过你们千万别把姜水弄到脸尤其是眼睛上,很疼。我是每隔1天洗1次。 4-我的头发三大症状:症状一:头皮屑很多,多到什么地步?刚洗完头,一下午时间久又长出来了,很且很大块~ 我都有心理

最适宜四川生姜种植技术及条件

最适宜四川生姜种植技术及条件 一、适期播种 生姜起源于南方热带森林地区,长期的系统发育形成了喜温暖、不耐寒、不耐霜的特性,因而要将生姜的整个生长期安排在温暖无 霜的季节。具体确定生姜的播种期应考虑以下3个条件: 第一,需在终霜后地温稳定在16℃以上时播种。 第二,从出苗至初霜适于生姜生长的天数应在135天以上,生长期间有效积温达1200-1300℃以上。 二、培育壮芽 培育壮芽是获得生姜丰产的首要环节,因为只有健壮的幼芽才可能长出茁壮的幼苗,也才能为生姜的旺盛生长奠定好的基础,所以 各姜区均对种姜进行必要处理,以培育壮芽。 1、壮芽的形态及其影响因素 生姜种芽有壮有弱,从其外部形态看,壮芽芽身粗壮,顶部钝圆;弱芽则芽身细瘦,芽顶尖细。生姜种芽强弱与以下几个因素有关: 俗话说母壮子肥,在一般情况下,凡是种姜肥胖而鲜亮的,因其营养状况好,其上所生幼芽多数较为肥壮;而种姜瘦弱干瘪者,由于 营养较差,其上所生幼芽多数比较瘦弱。 (2)种芽着生位置由于顶端优势现象的存在,种姜的上部芽及外 侧芽多较为肥壮,而基部芽及内侧芽则往往细弱。 (3)催芽温度与湿度在22-25℃适温条件下催芽,所生幼芽健壮,若催芽温度过高,长时间处在28℃以上,则所长的幼芽瘦弱细长。 若催芽期间湿度过低(主要是晒姜种过度引起姜种失水过多所致), 种芽往往细弱。

2、培育壮芽的方法 培育壮芽通常按3个步骤进行,即晒姜困姜、选种、催芽。 第一,提高姜块温度,促进内部养分分解,从而加快发芽速度。一般姜窖内的温度为13-14℃,生姜在此温度条件下,基本处于休 眠状态,经晒姜后,种姜体温明显提高。据测定,在室温22℃条件下,堆放室内而未经晾晒的姜块表面温度为21℃,内部温度为20℃,在阳光下晾晒的姜块表面温度为29.5℃,内部温度为28℃。 第二,减少姜块水分,防止姜块腐烂。由于贮姜窖内空气湿度大,姜块含水量极高,经适当晾晒后,可降低姜块水分尤其是自由水含量,防止催芽过程中发生霉烂现象。 姜种晾晒1-2天后,即将其置于室内堆放2-3天,姜堆上覆以草帘,促进养分分解,称困姜。一般经2-3次晒姜、因姜,便可开始 催芽了。 必须注意,晒姜时要注意适度,切不可晒得过度,尤其是铰嫩的姜种,不可曝晒。中午若阳光强烈,可用席子遮荫,以免姜种失水 过多,姜块干缩,出芽细弱。 (2)选种晒姜困姜过程中及催芽前须进行严格选种。选种时应选 择姜块肥大、丰满,皮色光亮,肉质新鲜,不干缩、不腐烂、未受冻、质地硬,无病虫危害的健康姜块做种,严格淘汰瘦弱干瘪、肉 质变褐及发软的姜块。 ①山东莱芜姜区室内催芽池催芽法: 在室内一角用土坯或砖建一长方形催芽池,池墙高80厘米,长、宽依姜种多少而定。放姜种前,先在池底及四周铺一层10厘米厚的、事先晒过的麦穰,再铺上3-4层草纸。选晴暖天气在最后一次晒后,趁姜体温度高,将种姜层层平放池内,堆放厚度以50-60厘米为宜。若姜堆太厚,往往温度不匀,发芽不够整齐。姜种排好之后,经1 小时散热,于第二天盖池。盖池时先在姜堆上部铺10厘米厚的麦穰,再盖上棉被或棉毯保温。保持池内20-25℃的温度,经10-12天幼

关于头发稀疏和掉头发的超级秘密(我的秘方太有效)

1-看到一篇帖子说头发稀少或者掉头发的姐妹有什么办法因为我的秘方太有 效就另开帖子说明首先,我老婆以前就头发稀少,头上成块的没头发,还掉头发。后来在湖南遇见一个老中医,开了一个方子,吃了后头发开始长,也不咋掉了,而且开始长新头发,非常有效,后来把这方子告诉身边掉头发,头发少的朋友,用了都说有效。关键是这个方子非常便宜,呵呵!开始公布,一共是3种药:鱼肝油,胱氨酸,维生素B6。都是一块多一瓶,都是一天3次,按着瓶上说明吃几片去吃,记住,3瓶一块吃,不要断。效果绝对好,比可贵的其他药有效得多。 2-煮生姜水洗头治疗脱发。我洗了两次,效果非常好。不但治疗了脱发,连头皮屑都治好了~ 本人被头皮屑困扰多年,曾用了,采乐,什么霸王洗发水。。根本不管用,想不到被2块生姜给治好了就是把生姜切小,放在锅里加水小火煮,煮到汤汁变得黄黄的有浓烈姜味溢出就可以使用了..用姜水抹在头皮上就可以了~ 等它自然干掉,可洗可不洗,一周一两次。还有就是可以喝红枣黄芪汤。也是生发的。电热壶烧开水的时候把姜切好放进去。 3-我就是看了那个生姜水洗头发的帖子后试了一下,到现在已经洗过3次了,头发多没多我没看不出来,但是控制脱发的效果是很明显,以前每次洗头头发都掉一大把,现在好了很多。头发也有点光泽了,而且蓬松了,哈哈。具体方法:大润发买的生姜(嫩的),切了大约20~30片,放大半锅水一起煮,煮啊煮,一直煮直到水的颜色很黄,并且整个屋子弥漫着姜的味道,我用的电磁炉,160度火,半小时左右。然后,我用买豆浆机时赠的那个滤网把姜水过滤,等姜水冷却成温水就可以洗啦,我是直接就把自己脑袋泡进去了,不是说一定要泡到头皮么,不过TZ们千万别把姜水弄到脸尤其是眼睛上,很疼。我是每隔1天洗1次。4-我的头发三大症状:症状一:头皮屑很多,多到什么地步?刚洗完头,一下午时间久又长出来了,很且很大块~ 我都有心理疾病了,比如有人站在我身后,我就很紧张,恐怕被人看到我有头皮屑。每次出门之前,必问我老公,让他看看我有没有头皮。症状二:我头发很容易油,但是又很干!是真的,又油又干。症状三:最近1,2年开始掉头发,本来我头发很多,很且很粗的。最近一两年,我洗头的时候,发现头发掉的很多~~ 然后,我一照镜子发现,原来很粗的头发变的很细的~~ 也许变的过程是漫长的,但是我的发现是突然的和惊人的。看了原来天涯的那个贴之后,我本来没当真,这些年来,希望太多,失望太多了~~ 。我也就是那么姑且一试而已,想不到效果是惊人的!! 程序一,切姜块煮水,把大拇指那么大的生姜,切成四,五块。煮到水变少,变成黄色,就可以了。稍微凉会儿,否则一会烫脑袋。 程序二,我先用洗发水把头发洗一遍,我没用护发素,就把姜水倒在洗头的盆里。把脑袋放进去泡着,沾不到水的地方,用手来淋水,直到很烫的姜水变凉就可以了。(原帖是按摩,我人比较懒,我宁愿直接泡,呵呵)。别用水冲。就等干就行了。没任何味道的。到现在为止,共用了两次。第一次用完,我就立刻

生姜高产栽培技术(一)

生姜高产栽培技术(一) 摘要介绍了生姜高产栽培技术,主要包括选地整地、种姜处理、合理密植、田间管理、病虫害防治、采收等内容,以供种植户参考。 关键词生姜;种姜处理;合理密植;田间管理 生姜的食用部分为根茎,除了用作调味外,还有很好的药用价值1]。梅州市旅游业的兴旺,带动了客家特产“姜糖”的热销,对原料生姜的需求量也日益增加。生姜是喜温暖、耐阴湿、怕高热的作物,五华县气候非常适合姜的生长,生姜产量高,种植成本低,经济效益好。一般产量45.0~52.5t/hm2,产值4.5万元/hm2左右。最高姜田产量超过67.5t/hm2,产值达6.00~6.75万元/hm2以上。为使农民了解生姜的特性,正确掌握种植生姜的方法,确保获得高产,笔者经过多年实践研究,总结出一套高产栽培技术,现将其介绍如下。 1选地整地 生姜要求阴湿而温暖,较弱光照,适宜温度为25~32℃,田间土壤湿度以70%~80%为宜,常积水,排水不良,易感病枯死。根据这些特性,种姜时应选择地势较高、荫蔽、土层深厚、土壤疏松肥沃、水源方便、排水良好的地块。以中性或弱酸性为佳,生姜不宜连作,选地时注意避免选择前作是姜、烟草等作物的地块,以防止姜瘟病的发生2]。需轮作3年以上,可与水稻或与芋头、瓜类、豆类等轮作、间作。由于生姜的根系不发达、分布土层较浅,既不耐旱也不耐涝,为此地块要深翻、晒白,开好排水沟,起高畦种植3]。畦宽80cm,高30cm,沟宽30cm,并施足基肥,施优质农家肥30t/hm2加过磷酸钙750kg/hm2。 2种姜处理 生姜发芽适宜温度为15~18℃。10℃以下低温和湿度较大时根茎易腐烂,地上部遇霜冻即枯死,在强光下叶片易凋萎。选择无病虫害、色泽金黄、无机械损伤、有1~2个壮芽的姜块作种姜,选后用20%的草木灰液浸种30min或用1.0∶1.5∶120.0的波尔多液浸种20min进行消毒,以防治姜腐病。然后催芽,把已消毒的种姜晒2~3d,以减少水分,杀死病菌,提早发芽4]。待姜块表面水分消失和附着的泥土脱落后进行堆放,用稻草或麻袋覆盖保湿催芽,也可放进温床催芽,当姜芽长1cm或已出了3~4cm的须根时即可种植。 3合理密植 谷雨后,立夏前,当地温达到16℃时即可种植。种植时要做好合理密植,适当密植能提高生姜产量,将经催芽后的种姜掰成小块,每块重50~100g,每块留1~2个壮芽。若收老姜为主,用种量1500~2250kg/hm2,若收种姜为主,用种量多至5250~6000kg/hm2。种植时,开9~11cm深的种植沟,施入腐熟的猪牛粪混火烧泥15.0~22.5t/hm2、草木灰1500~2250kg/hm2或钾肥150~225kg/hm2。每畦种2行,要求行距10~15cm,株距20~25cm。放种时,姜芽应朝同一方向排列,便于以后回收种姜。种植以后,用细土压紧姜芽,然后覆盖稻草或芒萁草,最后再覆上1层细土,以利遮荫、保温、保湿、防草、防冻。

大姜种植管理技术

一、生姜生物学特性 1.生姜属姜科,根系属肉质根,不发达,一般每个姜块只能生7~9 条根,入土浅,对肥水吸收能力弱,根系分布 在土壤0~30 厘米,深度超过30 厘米无吸收能力。 2.大姜对环境条件的要求 (1)温度大姜喜温但怕高温,不耐霜,5℃以下受冻害,15~16℃以上开始萌发,生长适温在20~23℃,26℃以上生长受阻,超过35℃时可造成死亡,昼夜温差在12~15℃时茎块膨大最快。 (2)光照姜喜阴凉,不耐强光,光照强度在3~5 万雷克斯,幼苗期间需中等光照,否则易伤苗,发芽及茎块膨大 需在黑暗环境中进行。 (3)水分大姜根系浅,吸收能力弱,对水分要求严格;前期苗小吸收水份较少,湿度大,不利提高地温,易造成姜种腐烂;地面干旱,地表温度过高易造成伤苗,生产上以小水勤浇,不干地表为准;后期,地上苗生长过旺需水量大,应每隔7~10 天浇水一次。 (4)土壤大姜对土壤要求不严格,无论沙壤, 壤土,粘土均可种植大姜;土壤PH5.5~7之间均可种植。大姜根系吸收能力较弱,生产上主要收获姜块,姜块膨大对产量影响较大。对肥吸收,每生产1000 公斤姜块需 氮 4.44 公斤,五氧化二磷 1.21 公斤,氧化钾 6.96 公斤,前期需氮量较大,后期需钾量大。除此之外需钙,硼,锌量较大。 二。种植大姜栽培技术 1/品种大姜作为地理标志产品以它生长旺盛/分芽多/块茎鲜黄/肉质细嫩/辛辣味浓/产量高/深加工价值高而具称,适合我市大姜生产。 2/ 栽培时间及催芽(1)晒种根据我市气候条件,露天地膜栽培可于4 月上中旬播种,小拱棚栽培可于3 月底4 月初进行播种,大拱棚栽培可在3月20 日前后播种。中午气温达到15℃以上时(二月下旬)即可从储存窖中取出姜种晾晒。注意:时间要掌握在好天的上午10 点至下午 3 点前高温时进行,早晾晚收,晚上堆放室内,连晒2~3 天,将姜块表皮湿度晾干为止。在晒种过程中可结合喷施20%噻菌铜300 倍液消菌。 (2)困姜结合晒姜进行,每天晾晒完毕将将种姜堆放困种。 (3)选种上炕催芽前进行,选择姜块肥大/色泽鲜艳/皮色有光/质地硬/不软化/无病虫的姜块作种用。将选好的姜种进行掰分,掰后的姜块以80 克为宜(一斤姜块掰六块左右)。 (4)催芽因地制宜,我市在火炕上催芽,先在火炕上铺垫10 厘米左右麦草并压平,然后铺放姜种,铺放姜种高度以60 厘米为宜,上覆草毡或棉毡密封保温避光。温度保持在20~23℃,经25~35 天当姜芽在0.5~1.0 厘米时 (胖而壮,仅见根突起为宜)既可保护地播种。 (5)分芽将姜芽按大小分开,一般情况下按0.5 厘米以下/0.5~1.5 厘米/1.5 厘米以上尽心分级,超过 2.0 厘米幼根已长出的尽量不作种用(试验表明:0.5~1.5 厘米的姜芽种植后能使产量1000 公斤的话,0.5 以下的芽能产700公斤, 2.0 厘米以上幼根已长出的芽只能产300 公斤。)。按姜芽大小分播。 3/ 播种 (1)整地施肥前茬作物收获后,及时清除田园植株残体,带出田外集中处理,以压低病(虫)源基数。年前使用机械深翻,深 度在25cm以上。第二年 3 月上旬耙实,达到深、平、细、净、实,并按行距65~70 厘米,深度15cm.开沟。 (2)基肥施用 根据土壤肥力状况,整地前每亩撒施有机肥2500~5000kg 作基肥。开沟后每亩施生物有机肥80kg(N P K25%以 上、有机质25%以上),蓝得土壤调理剂75-100kg 、硼肥 1 kg 、锌肥 2 kg,5%丁硫克百威颗粒剂10kg, 顺沟撒施,划锄混匀待播。 (3)播种将开好姜沟的地块灌透水水,待水渗下后按株距22~25 厘米播种,播种时姜芽朝上,姜种西南向排列 (与行向成45度角),播后覆土2~3 厘米。干旱年份播后再次浇水。 (4)喷施除草剂选择40%新姜蒜草克(乙氧氟草醚加二甲戊乐灵)乳油120~150 ml/667m 2或33%施田补(二甲戊乐灵)乳油100~125 ml/667m 2兑水50~75kg 均匀喷雾。

最佳答案.治脱发

最佳答案 人为什么会掉头发 掉头发人人都有,不过有的人掉得多,有的人掉得少。而有些人还会一片一片地掉,最后成了秃子。这是怎么回事呢? 头发有它自己的寿命,长到一定长度,寿命到头了,它自己就老死,自然会脱落下来,这是一种正常现象。属于这种情况的掉头发,任何人都有,而且是经常的。不正常的掉头发,是因为头发的生长受到了影响的缘故。头发的生长需要营养,而营养是靠血液运送的,如果一个人长期多病,身体软弱,血气不足,身体营养很差,头发就会因缺少营养、生长不好而短命脱落。这样的人就容易掉头发,掉的也比较多。有人生过一场大病以后,头发掉得稀稀拉拉的,可能就是这个原因。人用脑过度,或者经常心事重重,烦闷,或者遇到了什么事儿,精神过于紧张,使脑子受到了很大的刺激,有时候也会影响到头发营养的供应和生长。因为人体的一切活动都是属大脑管的,大脑受了刺激,活动乱了脚步,不能正常地发挥作用,势必要使身体的营养受到刺激,出现掉头发的情况。有的人遇到什么过于激动的事,大脑受了强烈的刺激,精神很不正常,有时一夜之间头上的头发就脱掉一大片,人们说是“鬼剃头”、实际上就是这样脱掉的。 头发生长原本就有一个生长与衰老的周期,自然生理性的落发其实每天都在发生。但是也有一些掉发是病态性因素所导致。以年轻人来说,比较常见的是圆形秃,也就是俗称的“鬼剃头”,这是一种因为压力、情绪,导致一个头皮一个区块的毛发突然进入生长末期,突然掉光。这类的情况下毛发在经过治疗后,三到五个月内可以恢复生长。 掉头发的原因与营养有关,与精神紧张或突然的精神刺激也有很大关系,可查血微量元素,平时不要经常处于精神紧张状态。可在掉头发的地方经常用生姜擦一擦,可促进头发生长,饮食营养要全面,适当多吃些硬壳类食物,适当吃些黑芝麻! 充足的睡眠 充足的睡眠可以促进皮肤及毛发正常的新陈代谢,而代谢期主要在晚上特别是晚上10时到凌晨2时之间,这一段时间睡眠充足,就可以使得毛发正常新陈代谢。反之,毛发的代谢及营养失去平衡就会脱发。 建议:尽量做到每天睡眠不少于6个小时,养成定时睡眠的习惯。注意饮食营养,常吃富含蛋白质及微量元素丰富的食品,多吃青菜、水果,少吃油腻及含糖高的食品。 避免过多的损害 染发、烫发和吹风等对头发都会造成一定的损害;染发液、烫发液对头发的影响也较大,次数多了会使头发失去光泽和弹性,甚至变黄变枯;日光中的紫外线会对头发造成损害,使头发干枯变黄;空调的暖湿风和冷风都可成为脱发和白发的原因,空气过于干燥或湿度过大对保护头发都不利。 建议:染发、烫发间隔时间至少3—6个月。夏季要避免日光的暴晒,游泳、日光浴更要注意防护。 洗头及梳头 夏季可以每周3至7次,冬季可以每周1至3次,洗头时水温不要超过40℃,与体温37℃接近。不要用脱脂性强或碱性洗发剂,因这类洗发剂的脱脂性和脱水均很强,易使头发干燥、头皮坏死。

生姜的栽培技术

高邮市菱塘民族职业中学备课纸 课题生姜栽培技术课型 授课授课总课 ~教学 日期时数时数使用 教学 掌握生姜栽培技术和管理方法 } 目标 , 教学 重点 难点" 教学过程备注> 生姜栽培技术 一、生姜播前准备及方法 / 1.播前的准备: (1)掰姜种:种姜催芽时,姜块较大,虽有的姜区催芽前已将大块掰开, 但出芽后仍需挑选,因此,在姜种下地前多进行掰姜。掰姜的过程实质上是进 行块选和芽选的过程。 掰姜时一般要求每块姜上只保留 1 个短壮芽,少数姜块可根据幼芽情况保留 2 个壮芽, 其余幼芽全部去除,以便使养分能集中供应主芽,保证苗全苗旺。掰姜时若发现幼芽基 部发黑或掰开姜块断面褐变,应严格剔除。 掰姜除应选留壮芽外,还应考虑姜块的大小。经笔者多年试验证明,种块以 75 克左 右为宜。 @ 掰姜时还应注意,为了以后便于管理,可按种块大小及幼芽强弱进行分级, 即瘦小的姜块和瘦弱芽姜块放在一起,肥胖姜块和具壮芽的姜块放在一起。种 植时分区,分别视生长情况进行管理。

(2)浇底水:因生姜发芽慢,出苗时间长,若土壤水分不足,会影响幼芽的出

土与生长。为保证幼芽顺利出土,必须在播前浇透底水。浇底水一般在沟内施肥后, 于播种前 1~ 2 小时进行,浇水量不宜太大,否则姜垄湿透,不便下地操作。 2.播种方法:底水渗下后,即可按一定株距将事先准备好的姜种摆放沟内。摆 放姜的方法,各姜区也不一致。一是平播法,即将姜块水平放在沟内,使幼苗 方向保持一致。若东西向沟,姜芽一律向南;南北向沟,则幼芽一律向西。入 好姜块后,用手轻轻按入泥中,使姜芽与土面相平即可。而后随手扒下部分湿 土,盖住幼芽,以防强光灼伤幼芽。这种播种方法,种姜与新株姜母垂直相连, 便于以后扒老姜。二是竖播法,即将姜块竖直插入泥中,姜芽一律向上。这种 播种方法,种姜与新株上的姜母上下相连,扒老姜时易伤根,操作也不方便。 南方有的姜区为便于扒老姜,将姜种倒放,该法虽便于收获老姜,但影响 幼芽出土,生产上不宜采用。 二、生姜要合理密植 合理密植是实现丰产的重要措施,但确定合理的种植密度是很复杂的,它受土壤、 肥水条件、播种期、播种量以及田间管理水平等多种因素的影响。比如,在高肥水条 件下,每亩种植7000 株,植株生长健壮,群体可得到较好的发展,每亩产量可在千克;而在中肥水条件下,同样每亩种植7000 株,植株生长健壮,群体偏小,每亩 产量为千克。上述现象表明,合理的种植密度不是固定不变的,应因地制宜, 根据具体条件来确定。通常在土质肥沃、肥水足的条件下,往往茎叶茂盛,植株高 大,因而行、株距亦适当加大;相反,在山岭薄地及肥水不足的条件下,往往植株矮小, 因而营养面积也应适当缩小。 在北方,种植生姜多采用沟种扶垄的栽培方式,根据一般姜田的土壤肥力状况及 管理水平,可将生姜的适宜种植密度大致分为 3 种类型,供生产者参考。 第一,高肥水田:指水源充足,有机质含量在2%以上,含碱解氮100ppm 以上,

掉头发和生发的偏方

掉头发和生发的偏方 工作紧张,压力大,很多人还没进入中年就有脱发的现象。那么,该怎么才能长保秀发浓密呢?二十五条药方子,帮助你解决脱发困扰,效果很不错哦! 【方一】柏枝(干药)、椒仁、半夏,各90克。将药加水500毫升煎至250 毫升,入蜜少许,再煎1--2min,沸用时入生姜汁少许调匀,擦无发处每日2次。 【方二】白矾、郁金各等分,将白矾、郁金制成丸,每次4--5克,每日2次。 【方三】食盐15克,将食盐加入1500毫升温开水,搅拌均匀,洗头每周1--2次。此法长期应用可防止脱发。 【方四】榧子3枚,胡桃2个,侧柏叶30克,将药共捣浸雪水梳头,其 发水不脱落而且光润。本方尤适用于肾虚型脱发。 【方五】侧柏叶若干,将柏叶阴干研细,以春油浸之,每戟蘸刷头头发长出后用猪胆汁人汤洗头。本方尤适用于妇女脱发。 【方六】车前草200克,米酷适量,将车前草全草焙成炭,浸入米醋,一周后,用该药醋外涂患处每日2--3次。 【方七】黑牛胆1个,槐豆适量,将槐豆装入有胆汁的牛胆内,装满浸透槐豆即可,内服每次9克,每日3次。 【方八】侧柏叶240克(焙干),当归(全身)120克,将药共研为末(忌铁器),水糊为丸,如梧桐子大,每服50--70丸,早晚各1,服用黄酒或盐汤送下。 【方九】芝麻花、鸡冠花各60克,樟脑1.5克,白酒500克,将芝麻花、 鸡冠花撕碎,然后浸泡人酒内,密封15日后,过滤再将樟脑人药酒中,使之溶化备用,以药棉蘸药酒涂搽脱发区,每日搽3--4次。本方尤适用于神经性脱发。 【方十】芝麻梗、清明柳(清明节采的柳枝嫩叶)各90--120克,煎汤洗发,并摩擦头皮连用1--7日。本方尤适用于脂溢性脱发。 【方十一】猪苦胆1个,将猪苦胆汁倒入半面盆温水中搅拌后,洗头或洗 患处,把油脂状鳞屑清除干净,再用清水冲洗,每日1次。本方尤适用于脂溢 性脱发。 【方十二】活蜈蚣3条,将活蜈蚣用菜油浸3--4日,先取生木片汤洗发,

大姜高产栽培标准流程

大姜高产栽培标准流程 一、土壤消毒 在大姜收获后、种植前,将地里残存的姜苗、姜块、姜叶等全部清除干净,并用旋耕机深翻整平,调成姜沟。根据不同情况选择不同厚度、不同质量的塑料薄膜覆盖。随水冲入斯美地(35%威百亩水剂)30—50公斤,7—30天后(视不同地温而定),除掉地膜,松土放气7天以上。 二、姜种处理 1、选种晒种:晴天摊晒2天后,剔除病、破伤姜和过于瘦小的姜块,收回室内放1天,使它回暖,然后再晒1天即可。 2、消毒: 方法一:用微生物冲施菌肥800倍液浸种10分钟后捞起平地堆放,并用稻草或旧麻袋覆盖,闷6至12小时再进行催芽栽培。 方法二:用微生物冲施菌肥800倍液,将姜种摊平后打在表面,要求喷洒均匀,两面都要喷上药液。 三、基质置换 将生物有机肥300公斤,微生物冲施菌肥3公斤,土壤多菌宝1000毫升,以上肥、药充分混合后均匀的洒在姜沟底部,并用二齿钩与土壤混匀,避免与姜种直接接触。 四、第一次防护:等姜苗出齐后,用喷雾器在姜的茎基部位洒微生物冲施菌肥800倍液,大土壤多菌宝800倍液,以促进生根; 五、幼苗期用肥:姜苗出齐后,随浇水,每亩冲施高氮型冲肥肥5-10公斤;分数次使用,共用50公斤。 六、除掉小拱棚前的防护:每喷雾器兑土壤多菌宝200,均匀喷洒在每株姜苗上。 七、放土追肥:出齐三支姜芽以后,随放土施肥,即每15天左右,给姜茎基部上土前,先在附近撒施部分肥料。每亩用生物有机肥50公斤;微生物冲施菌肥1公斤,高钾型冲施肥5公斤,将各种肥料充分混匀后,均匀的洒在姜茎基附近,然后覆土,肥料施用量随姜的生长而增加。 八、大背沟:大培土前,每亩使用微生物冲施菌肥1公斤、土壤多菌宝1000ml,高钾型冲施肥随水冲施,等土壤湿度适合培土时随培土使用生物有机肥80公斤,高钾型冲施肥5公斤,以上肥药要混合均匀。 九、沟底施肥:培姜后20天左右沟底撒施第一次肥料,每亩用生物有机肥50公斤,微生物冲施菌肥2-3公斤;先将各种肥料充分混匀,后均匀的洒在姜沟底部。培姜后40天左右沟底撒施第二次肥料,肥料施用量及使用方法同上。 十、病虫害管理:姜常见的病害有:线虫病(癞皮)、系统性病害(青枯病、结群腐烂病、枯萎病)、叶斑类病害(炭疽、白星、眼斑);常见的虫害有钻心虫(玉米螟)、青虫子(夜蛾)。 1、线虫病(癞皮)的防治:以上管理方案已包含 2、系统性病害 加强田间管理。重视姜田排水,严格控制姜田灌水,一般采取人工浇灌,严禁大田浸灌。深沟高厢,雨后及时排除积水,重施底肥,轻施、巧施追肥,避免过多施用氮素化肥,增施磷、钾肥及粗渣肥。发现中心病株后,立即联系本社技术人员。

种植姜的方法

种植姜的方法 姜原产东南亚的热带地区,喜欢温暖、湿润的气候,耐寒和抗旱能力较弱,那么姜要怎么种植?下面是为你整理的种植姜的方法,希望对您有用。 种植姜的方法栽培季节 一般春季播种,霜前收获。由于姜喜温暖,不耐寒、不耐霜,所以必须在温暖无霜的季节栽培。确定姜的播种期应考虑以下几个条件: ⒈根据发芽所需的温度,应在10厘米地温稳定在16℃以上时播种; ⒉根据姜的生长习性,要获得较高的产量,需有135-150天的适于姜生长的时间;根据本地的气候条件,生姜一般于惊蛰后至4月中旬播种,播种过早,地温低,发芽慢,播种过晚,则生育期缩短,降低产量。 整地施肥 姜发芽期由种姜供应营养,幼苗期生长缓慢,需肥较少,“三股杈”以后需大量养分,约占全生育期总吸收量的88%。全生育期对肥料的需求以钾肥最多,氮肥次之,磷肥较少,氮(N)、磷(P O )、钾(K O)的吸收比例为1:0.5:2。在中等肥力条件下,生产1000千克生姜产品,需吸收氮(N)5.76千克、磷(P O )2.54千克、钾(K O)11.47

千克。施肥时应根据生姜需肥规律、土壤总养分和肥料效应,按照有机肥与无机肥、基肥与追肥相结合的原则,实行平衡施肥。生姜根系细弱、分布浅,生育期长,必须施足基肥。最好在冬前深翻风化土壤,翌年春耙细耙平。结合翻地,一般每亩施腐熟有机肥3000千克、硫酸钾30千克,或每亩施有机肥复合肥800千克、普钙20千克做基施。基肥施入后进整地,可做成平畦,也可开沟待播。采用沟播,沟距为50-55厘米,沟宽25厘米,沟深10-12厘米。 播种 应选择晴暖天气播种。 优选种姜 应在前一年,从生长健壮、无病、高产的地块上选留种姜。收获后选择肥壮、芽头饱满、个头大小均匀、颜色鲜亮、无病虫、无腐烂、无损伤、未受冻的姜块做姜种贮藏。姜在播种前应先进行催芽。幼芽是幼苗生长的基础,培育壮芽是获得高产的基础。壮芽的形态特征是芽身粗壮,顶部钝圆;弱芽的形态特征是芽身细瘦,芽顶细尖。 培育壮芽 ⑴晒姜困姜 播种前1个月左右,选晴天,将姜种平铺在室外地上晾晒1-2天,夜晚收进室内防霜冻。通过晒种,可提高姜块温度,打破休眠,促进发芽,并减少姜块中的水分,防止腐烂。晒种1-2天后,再把姜块置于室内堆放3-4天,姜堆上盖上草莲,进行困姜,促进种姜内养分分解。经过2-3次反复晒姜困姜后,便可催芽。姜易受姜瘟病、炭

鲁西南生姜高产栽培及简易加工技术

鲁西南生姜高产栽培及简易加工技术 发表时间:2017-11-13T10:32:30.627Z 来源:《基层建设》2017年第22期作者:林卫红 [导读] 摘要:介绍了生姜的高产栽培技术,主要包括精细整地、选种消毒、适时种植、肥水管理、病虫害防治、适时收获等内容,并介绍了其简易加工技术,以供参考。 菏泽市牡丹区大黄集镇农业综合服务中心 摘要:介绍了生姜的高产栽培技术,主要包括精细整地、选种消毒、适时种植、肥水管理、病虫害防治、适时收获等内容,并介绍了其简易加工技术,以供参考。 关键词:生姜;高产栽培;加工技术 生姜既是鲜食蔬菜,又是调味佳品,还是一种常用的中药。以姜为原料制成的食品,不仅营养丰富、风味独特,而且有祛痰、健胃、驱寒、解毒的功效[1,2]。随着人们生活水平的不断提高和对生姜多功能、多用途的不断开发利用,生姜的需求量与日俱增,倍受消费者的青睐。种植生姜一般可收生姜37.5~45.0t/hm2,产值7.5~12.0万元/hm2,经济效益良好[3,4]。论文论文参考网现将生姜高产栽培及其食品简易加工技术介绍如下。 1高产栽培技术 1.1精细整地 选择排水良好、背西或稍荫蔽的砂质土或壤土地块种植。播种前15d左右,先深翻20cm左右,临播种时充分耙碎、整平,东西向起畦,畦宽132~165cm,高19.8~23.1cm,畦沟宽约30cm,四周开通排水沟。 1.2选种消毒 选择双排姜、肉姜等高产品种,留粗壮饱满的姜块作种,严格剔除表皮脱落、姜肉变色的病残姜块。晒种3~5d,晒至姜皮稍皱,再用 1∶1∶150的波尔多液浸种消毒10min。捞起晾干,按姜芽的位置切好姜体,每块保持1~2个粗壮芽,重50g以上。姜体愈大,姜苗愈壮,产量愈高。 1.3适时种植 较暖地区在春分至清明下种为宜。种植规格,坡地行株50cm×26cm,植穴深13~17cm。下种时芽头向上,芽向统一朝南。播后用草木灰1 500kg/hm2拌细土盖约2cm厚,再铺放1层稻草保湿,并抑制杂草生长。 1.4肥水管理 施足基肥,施腐熟猪牛栏粪肥45t/hm2、过磷酸钙225.0~262.5kg/hm2作基肥,拌匀施于种植穴底部,再覆土下种。及时追肥,姜芽出土7~10cm时施淋稀粪水15.0~22.5t/hm2,不宜施用化肥,以免发生烂芽烂种。6月是发芽长苗期,施尿素112.5~150.0kg/hm2,或硫酸铵 225.0~262.5kg/hm2,或粪水22.50~26.25t/hm2。7月是块茎长大期,施复合肥300kg/hm2,并结合除草培土,以利姜块肥大和防止露出地面。播后3~4d浇1次水,苗高10cm左右时,用腐熟粪水淋施,既可促苗又可防旱。生长期内要保持土壤湿润,以表土不发白为原则,遇干旱要浇水或灌跑马水,8~9月是生姜枝叶与姜块生长旺盛期,必须经常浇灌,以黄昏或8时前浇灌为好,如遇大雨要及时排除渍水。 1.5病虫害防治 生姜易得姜瘟病和受钻心虫危害。姜瘟病防治上,严格剔除病姜,实行轮作,防渍水,及时拔除病株,病穴内撒石灰消毒;发病初期用65%代森锌600倍液,或50%代森铵1 000倍液,或石灰3kg、退菌特0.5kg、水100kg,揽匀淋洒,每隔2~3d喷洒1次,连用2~3次。防治钻心虫可用2.5%敌百虫15~30kg/hm2,加细泥粉450~600kg/hm2拌成毒土,在露水未干时撒施。 1.6适时收获 用于加工的生姜可在旺盛生长期收获;用于调味和药用的生姜最佳收获期在大雪至冬至,其肉质根茎老熟,养分充足,产量高。 2简易加工技术 2.1白糖姜片 将新鲜姜洗净去皮后,切成3~5mm的薄片。按生姜50份、白糖32份、白糖粉4份、柠檬酸溶液,同姜片一起加热至沸,捞出姜片漂洗干净,沥去水分。再配制62%~65%的浓糖液,并加入0.15%柠檬酸煮沸使糖全部溶解,滤除杂质后放入姜片再煮,煮至糖液浓厚、滴液成珠时即可停火,把姜片捞出。捞出的姜片,撒上白糖粉拌匀,摊晒1~2d或置烘烤房中,在40~50℃下烘4h左右,即成白糖姜片。 2.2蜜渍生姜 把新鲜饱满的鲜姜洗净去皮后,切成1cm×1cm×1cm的方块。按1份生姜加4份水煮开,捞起沥水。再按1份生姜加2份蜂蜜置于锅内再次煮开,撇去泡沫,即制成甜辣可口的蜜渍生姜。 2.3艳红糟姜 取鲜姜100kg、食盐20kg、红糟13kg,将鲜姜洗净去皮,放入缸中。把食盐加入清水35kg烧沸,冷却后加入红糟汁以淹没姜体为度。密封腌30d后,即可食用。 2.4糖醋嫩姜 将新鲜嫩姜洗净去皮,切成1mm厚的姜片,放入缸中。取1份白糖、1份醋和1份酱油,混合煮沸后即为糖醋液,再次煮沸,冷却后将此液倒入姜缸中,以完全淹没姜片为止。姜面上用竹网盖住,并用石块压好,以免生姜片脱卤。然后密封缸口,腌渍15~25d,即成鲜嫩适口的糖醋姜片成品。 2.5酱制姜片 选用新鲜嫩姜,漂洗干净。然后按100份姜用10份盐, 1层姜1层盐在缸内腌制。隔5d翻缸1次,经过15d左右即可腌制成咸姜坯。将腌好的咸姜切成3mm厚的姜片,装入布袋中,每袋2~3kg。按姜片100份、优质面酱50份,将其投入酱缸,每天打耙2次。经过7~10d的处理,即可制成色泽深褐、咸、辣鲜、嫩、脆的酱制姜片。 2.6甘草姜片 配方为鲜嫩姜6.5kg,白糖5kg,酸梅汁20kg,甘草粉4kg,丁香粉200g,苯甲酸钠100g。鲜嫩姜片先用5%~6%的热碱液浸泡,再放进流动水中搓洗去皮、洗净,依横径切成0.5~0.7cm厚的斜片,加适量食盐拌合腌制3~4h后,投入浓度3%~5%的石灰水中浸泡4~6h。然后取出投入沸水中烫3~5min,捞出沥干待用。按配方量称取原料,混合搅拌均匀后搁置48h,期间翻拌3~4次。然后加热煮沸,微沸8~10min,适当浓缩以提高糖液

相关文档