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兔子的尿生成实验报告

兔子的尿生成实验报告
兔子的尿生成实验报告

【实验目的】

1、了解家兔泌尿实验方法,掌握动物麻醉、膀胱插管实验技术。

2、观察静脉注射生理盐水、静脉注射高渗葡萄糖和速尿对尿量的影响,并探讨利尿机制。

3、观察静脉注射去甲肾上腺素、垂体后叶素对尿生成的影响,并探讨抗利尿机制。

【实验原理】

尿生成的过程包括肾小球的滤过及肾小管的转运,凡影响上述过程的因素,均可影响尿的生成并引起尿量的改变。本实验通过以家兔为对象的急性实验、采用膀胱插管术收集并记录尿流量,从而观察在不同因素或药物的作用下尿量的变化。

【实验材料】

1.动物家兔

2.试剂和药品生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、100单位/毫升肝素生理盐水(或5%枸橼酸钠)、1/10,000去甲肾上腺素、垂体后叶素、速尿、20%甘露醇、班氏(Benedict)尿糖定性试剂。

3.器材兔手术台和手术器械、膀胱漏斗、注射器及针头、培养皿。

【实验方法】

1. 称重

2. 麻醉:20%乌拉坦5ml/kg

3. 固定

4. 腹部手术:从耻骨联合向上沿中线作长约4cm 的切口,用圆头手术剪沿腹白线切开腹腔,将膀胱轻轻地拉到腹壁外,用止血钳提起膀胱前壁(靠近顶端部分),选择血管较少处,切一纵行小口,插入膀胱插管,用粗棉线将切口处的膀胱壁结扎固定于插管。插管前应先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,用线结扎膀胱颈部以阻断它同尿道的通路。

5、实验:待尿流量稳定后,即可进行下列操作并观察。

⑴自耳缘静脉快速注射38O C生理盐水10ml/kg,观察尿量的变化。

⑵自耳缘静脉注射垂体后叶素2单位,观察尿量的变化。

⑶自耳缘静脉注射速尿0.5ml/kg,观察血压和尿量的变化。

⑷自耳缘静脉注射1/10,000去甲肾上素0.2ml/kg,观察血压和尿量的变化。

⑸先收集尿液2滴进行尿糖定性实验* 作为对照,然后自耳缘静脉注射20%

葡萄糖溶液2.5ml/kg,观察尿量的变化,再收集尿液2滴作尿糖定性实验。

【注意事项】

1.实验中需多次静脉注射,应注意保护兔的耳缘静脉。注射时,先从耳梢端开始,逐渐向耳根端移近;或选用小儿头皮针刺入耳缘静脉,用胶布固定,以便于多次注射使用。

2.各项实验顺序的安排是:在尿量增多的基础上进行减少尿生成的实验,在尿量少的基础上进行促进尿生成的实验。

3. 实验中不能结扎输尿管。

【讨论思考】

分析尿生成调节实验中,分别静脉注射生理盐水、抗利尿激素、速尿、去甲肾上腺素和葡萄糖后尿量变化的作用机制。

【讨论思考题答案】

①静脉快速注射生理盐水后,尿量增加。

机制:静脉快速注入大量生理盐水,血浆蛋白被稀释,血浆胶体渗透压下降,肾小球有效滤过压增加,加之肾小球血浆流量也增加,滤过率增加,尿液生成增加。

②静脉注射抗利尿激素,尿量减少。

机制:抗利尿激素的主要作用是提高远曲小管和集合管上皮细胞对水的通透性,从而增加对水的重吸收,使尿液浓缩,尿量减少。此外,抗利尿激素也能增加髓袢升支粗段对氯化钠的主动重吸收和内髓部集合管对尿素的通透性,从而增加髓质组织间液的溶质浓度,提高髓质组织间液的渗透浓度,有利于尿液浓缩。

③静脉注射速尿,尿量增加。

机制:速尿可与髓袢升支粗段的Na+-2CL—K+同向转运体结合,;由于氯化钠的重吸收被抑制,降低了肾髓质的高渗梯度,从而使肾脏浓缩尿液的能力下降,导致水重吸收减少,尿量增加,产生利尿效果。

④静脉注射去甲肾上腺素,尿量减少。

机制:去甲肾上腺素能使肾血管收缩,肾血流量减少,从而使肾小球毛细血管血压降低,有效滤过压降低,肾小球滤过率减小,尿的生成减少,尿量减少。

⑤静脉注射葡萄糖,尿量增加。

机制:近球小管对葡萄糖的重吸收有一定限度,称为肾糖阈(160~180mg/ml)。实验中葡萄糖的注射量已经超过肾小管的吸收极限,小管液中就会有葡萄糖,进而小管液的溶质浓度增加,渗透压增加,妨碍了肾小管特别是近球小管对水的重吸收,小管液中的Na+浓度被稀释而降低,故Na+的重吸收也减少,氯化钠及水的排出均增加,尿量增加。

⑥ 静脉注射乙酰胆碱,尿量减少。

机制:乙酰胆碱能使动脉血压降低,从而使肾小球毛细血管血压降低,有效滤过压降低,肾小球滤过率减小,尿的生成减少,尿量减少。

家兔尿生成的影响因素及与血压的关系(干货)

家兔尿生成的影响因素及与 血压的关系 一、实验目的 1、学习输尿管插管技术. 2、观察血浆胶体渗透压、血糖浓度、肾小球毛细血管压变化对尿生成的影响. 3、观察影响肾小管重吸收药物对尿生成的影响. 二、实验原理 1、尿生成的过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌三个过程.凡能影响上述过程的任何因素,均可影响尿的生成并可引起尿量及尿的性质、成分的改变.本实验以家兔为实验对象,采用膀胱插管术收集并记录尿量,主要观察不同因素或药物对尿量的影响。......感谢聆听 2、肾小球的滤过作用:肾小球毛细血管网内血浆成分向肾小球囊腔滤过,是尿生成过程的第一步.肾小球的滤过作用主要取决于肾血流量和有效滤过压。肾小球滤过膜的通透性很高,所产生的肾小球滤液在小分子溶质的组成上非常接近于血浆,只是几乎不含有蛋白质.肾小管和集合管的重吸收:原尿中的99%在流经集合管和肾小管时被

重吸收。对于尿的浓缩和稀释有重要意义。对各种物质的重吸收有三类:葡萄糖能完全重吸收;电解质和水可被吸收大部分;尿素、肌酐等代谢终产物仅有小部分被重吸收。Cl-、Na+、K+离子在肾小管和集合管中大部分被重吸收。......感谢聆听三、材料、试剂和仪器 1.动物家兔 2。试剂和药品生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、10单位/毫升肝素生理盐水(或6%枸橼酸钠)、1∶10,000去甲肾上腺素、垂体后叶素、速尿、20%甘露醇。 3。装置和器材微型计算机及生物信号采集与处理系统、血压换能器、保护电极、兔手术台和手术器械、动脉插管、动脉夹、膀胱漏斗、注射器(2ml、5ml 、10ml、20ml)及针头、酒精灯、试管架、试管和试管夹、输液装置、手术灯、纱布、丝线等。......感谢聆听 四、实验步骤 1、麻醉→背位固定→剪去颈部与下腹部被毛 2、分离颈部动脉,做动脉插管→分离右侧迷走神经→穿两线备用→用湿纱布覆盖创面。 处穿线结3、下腹部正中线作长约4厘米的切口→

生理实验报告尿生成

影响尿生成的因素和利尿药的作用 实验目的 1.学习膀胱插管 2.分析影响尿生成的因素 实验原理 尿生成包括肾小球的滤过,肾小管和集合管的选择性重吸收和分泌,凡是能影响这些过程的因素都能影响尿生成和尿量的变化。 实验步骤 麻醉 气管插管 分离右侧迷走神经左侧颈总动脉 膀胱插管 实验记录 正常尿量:13d/min 20ml生理盐水:20d/min 2uADH:6d/min 10ml葡萄糖:16d/min NE: 8d/min 速尿:25d/min 剪断并结扎右迷走神经:1d/min 结果分析 快速注射生理盐水时: 1.大量快速输入生理盐水→血浆白蛋白稀释→血浆胶渗压↓→有效滤过压↑→GFR ↑→尿量↑ 2.大量快速输入生理盐水→血容量↑→左心房扩张→心肺感受器(+)→迷走神经传 入↑→抑制ADH的合成与释放→远曲小管、集合管对水的重吸收↓尿量↑ 3.大量快速输入生理盐水→肾血浆流量↑→血浆胶渗压升高的速度减慢→滤过平衡点 靠近出球小A端→产生滤过作用的毛细胞血管长度↑→GFR↑→尿量↑ 注射ADH: 1.主要:ADH与V2受体结合→兴奋性G蛋白→激活腺苷酸环化酶→cAMP↑→激活蛋白激酶A→AQP-2镶嵌在管腔膜上→管腔膜上的水通道↑→对水的通透性↑→渗透浓度梯度→重吸收的水量↑尿量↓ 2.增强髓袢升支粗段对NaCl的重吸收,增加内髓集合管对尿素的通透性→提高髓质渗透浓度,有利于尿的浓缩,尿量↓ 注射葡萄糖时: 葡萄糖浓度超过肾糖阈→小管液葡萄糖浓度↑→渗透压↑保留一部分水→ Na+被稀释

→重吸收Na+↓,小管液中Na+↑→渗透作用→肾小管对水的重吸收↓→尿量↑ 注射去甲肾上腺素: 1. NE+α受体结合→入球小A和出球小A收缩→肾小球毛细血管血压↓→有效滤过压↓→GFR↓→尿量↓ 2. NE+近球细胞β2受体→刺激球旁细胞释放肾素→血管紧张素Ⅱ、醛固酮↑→增加肾小管对钠离子的吸收→尿量↓ 3. NE+ 近端小管和髓袢上α1受体→对钠离子、氯离子和水的重吸收↑→尿量↓ 注射速尿: 呋塞米抑制髓袢升支粗段 Na+-K+-2Cl-同向转运体→降低管内外渗透浓度梯度→尿量↑ 刺激迷走神经: 迷走神经传入释放Ach→心肌细胞M受体→心率↓→心输出量↓,肾血流量↓→肾小球滤过率↓→尿量↓

家兔尿液生成

家兔尿液生成的影响因素 摘要目的研究静脉注射生理盐水(normal saline,NS)、200g/L葡萄糖溶液(glucose solution,GS)、去甲肾上腺素(norepinephrine,NE)、呋塞米和垂体后叶素等药物对家兔尿液生成的影响。方法本实验采用膀胱插管引流家兔的尿液,通过记数注射某种药物一段时间后家兔尿液在单位时间内的生成滴数,来判断该药物对家兔尿液生成的影响。结果正常情况下家兔的尿液生成速率为4滴/min;静脉快速注射生理盐水20ml后,尿液生成速率增大至7滴/min;静脉注射200g/L葡萄糖溶液5ml前家兔尿量为4滴/min,注射后家兔尿液生成速率为16滴/min;静脉注射0.1g/LNE0.3ml前家兔尿量为7滴/min,注射后家兔尿液生成速率为5滴/min;静脉注射2单位垂体后叶素前家兔尿量为6滴/min,注射后家兔尿液生成速率为2滴/min;静脉注射呋塞米前家兔尿量为1滴/min,注射后家兔尿液生成速率为28滴/min。结论静脉注射NS、GS、呋塞米通过抑制集合管对NaCl 的重吸收从而使家兔尿液生成量增加。而静脉注射NE使肾小球毛细血管血浆流量减少,肾小球毛细血管血压下降,肾小球的有效滤过压下降,尿生成减少。静脉注射垂体后叶素可提高远曲小管和集合管上皮对水的通透性,增加水的重吸收而使尿量减少。 关键词尿生成;生理盐水;葡萄糖;去甲肾上腺素;呋塞米;垂体后叶素 1.材料和方法 1.1实验对象:家兔 1.2实验仪器:膀胱插管,动物手术器材(手术剪,止血钳, 丝线,注射器,兔台) 1.3实验药品和试剂:200g/L 氨基甲酸乙酯,生理盐水,200g/L 葡萄糖,0.1g/L 去甲肾 上腺素,1000U/L 垂体后叶素,10g/L 呋塞米(速尿)。 1.4实验方法: 1.4.1 手术准备 1.4.1.1 麻醉固定静脉麻醉从兔耳缘静脉注射200g/L 氨基甲酸乙酯(1g/kg 体重)。待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。 1.4.1.2 腹部手术从耻骨联合向上沿中线作长约4 厘米的切口,沿腹白线打开腹腔,将膀胱轻拉至腹壁外,先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,用止血钳提起膀胱前壁(靠近顶端部分),选择血管较少处,切一纵行小口,插入插管后膀胱即随着尿液的流出而缩小。用线结扎膀胱颈部以阻断膀胱同尿道的通路。使插管的引流管出口处低于膀胱水平,用培养皿盛接由引流管流出的尿液,手术完毕后,用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口。 1.4.2 实验观察 1.4. 2.1 连续记录正常尿流量(滴/min); 1.4. 2.2 按6~9ml/kg体重剂量静脉快速注射37℃ NS20ml,记录尿量最多时的数据; 1.4. 2.3 待尿量恢复稳定后静脉注射200g/LGS 5ml。记录尿量最多时的数据; 1.4. 2.4 待尿量恢复稳定后静脉注射0.1g/LNE0.3ml,记录尿量最少时的数据; 1.4. 2.5 按0.75 U/kg体重剂量静脉注射1000U/L垂体后叶素,记录尿量最少时的数据; 1.4. 2.6 待尿量恢复稳定后按5mg/kg体重剂量静脉注射10g/L呋塞米,记录尿量最多时的数据 2.结果 表1注射不同药物对家兔尿液生成的影响 药物尿量变化(滴/min) 注射前1分钟注射后1分钟 生理盐水 4 7

生理学实验报告_家兔尿生成的影响因素

华南师范大学实验报告学生姓名:谭晓东学号:20102501024 专业:生物科学年级、班级:10科四 课程名称:动物生理学实验实验项目:家兔尿生成的影响因素 实验类型:验证实验时间:2013年5月28日 实验指导老师:黄俊柅实验评分: 一.实验目的 学习输尿管、膀胱插管技术和尿液收集的方法;了解神经和体液因素对尿量的调节 二.实验原理 尿生成的过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌三个过程。凡能影响上述过程的任何因素,均可影响尿的生成并可引起尿量及尿的性质、成分的改变。本实验以家兔为实验对象,采用膀胱插管术收集并记录尿量,主要观察不同因素或药物对尿量的影响. 三.实验材料 1.动物:家兔 2.试剂:生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、肾上腺素、垂体后叶素、20%甘露醇. 3.器材:手术器械、生理信号采集系统,压力传感器、注射器 四.实验步骤 1.家兔麻醉:称重、麻醉:2%戊巴比妥钠,2ml/kg,耳缘静脉注射。固定:仰卧位固定2.气管插管术:剪毛、中线剪开颈部皮肤(6~7cm)、钝性分离颈部肌肉等组织,暴露气管、气管穿线、软骨环上做T形切口、棉签去气管中的血块、插气管插管,结扎。 3.分离右侧迷走神经,穿线备用 4.泌尿系统插管——全身抗凝:静脉注射肝素,注射剂量10mg/kg (1ml/kg) A、输尿管插管:分离两侧输尿管,各穿2棉线备用;一侧输尿管结扎近膀胱端-—结扎处往上做1/2切口—-向上插管——绑线、动脉夹固定。 B、膀胱插管:分离两侧输尿管;输尿管下穿线,结扎与尿道连接的位置;用大注射针头刺破膀胱壁,从穿孔处将插管插入膀胱内,结扎并固定,如膀胱未充盈,可先注射生理盐水,让膀胱壁变薄 4.仪器连接,观察正常尿量 5.改变影响因素 (1)。快速注射30ml生理盐水,记录尿量变化. (2).静脉注射肾上腺素0。2~0.3ml,记录尿量变化. (3).静脉注射20%葡萄糖15ml,记录尿量变化。 (4)静脉注射垂体后叶素(2单位),观察尿量变化 (5)静脉注射10%NaSO4(4ml),观察尿量变化 (6)刺激右侧迷走神经5~10 秒,观察尿量变化 (7)静脉注射20%甘露醇,观察尿量变化

生理学实验报告_家兔尿生成的影响因素

华南师范大学实验报告学生姓名:谭晓东学号:20102501024 专业:生物科学年级、班级:10科四 课程名称:动物生理学实验实验项目:家兔尿生成得影响因素 实验类型:验证实验时间:2013年5月28日 实验指导老师:黄俊柅实验评分: 一.实验目得 学习输尿管、膀胱插管技术与尿液收集得方法;了解神经与体液因素对尿量得调节 二.实验原理 尿生成得过程包括肾小球得滤过、肾小管与集合管得重吸收与分泌三个过程、凡能影响上述过程得任何因素,均可影响尿得生成并可引起尿量及尿得性质、成分得改变。本实验以家兔为实验对象,采用膀胱插管术收集并记录尿量,主要观察不同因素或药物对尿量得影响。三.实验材料 1.动物:家兔 2.试剂:生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、肾上腺素、垂体后叶素、20%甘露醇。 3.器材:手术器械、生理信号采集系统,压力传感器、注射器 四.实验步骤 1.家兔麻醉:称重、麻醉:2%戊巴比妥钠,2ml/kg,耳缘静脉注射。固定:仰卧位固定 2.气管插管术:剪毛、中线剪开颈部皮肤(6~7cm)、钝性分离颈部肌肉等组织,暴露气管、气管穿线、软骨环上做T形切口、棉签去气管中得血块、插气管插管,结扎。 3.分离右侧迷走神经,穿线备用 4.泌尿系统插管——全身抗凝:静脉注射肝素,注射剂量10mg/kg (1ml/kg) A、输尿管插管:分离两侧输尿管,各穿2棉线备用;一侧输尿管结扎近膀胱端——结扎处往上做1/2切口—-向上插管——绑线、动脉夹固定。 B、膀胱插管:分离两侧输尿管;输尿管下穿线,结扎与尿道连接得位置;用大注射针头刺破膀胱壁,从穿孔处将插管插入膀胱内,结扎并固定,如膀胱未充盈,可先注射生理盐水,让膀胱壁变薄 4.仪器连接,观察正常尿量 5.改变影响因素 (1)、快速注射30ml生理盐水,记录尿量变化。 (2)。静脉注射肾上腺素0.2~0.3ml,记录尿量变化。 (3).静脉注射20%葡萄糖15ml,记录尿量变化。 (4)静脉注射垂体后叶素(2单位),观察尿量变化 (5)静脉注射10%NaSO4(4ml),观察尿量变化 (6)刺激右侧迷走神经5~10秒,观察尿量变化 (7)静脉注射20%甘露醇,观察尿量变化 五.实验结果

影响尿生成实验报告doc

影响尿生成实验报告 篇一:生理学实验报告——家兔尿生成的影响因素华南师范大学实验报告 学生姓名:谭晓东学号:XX2501024 专业:生物科学年级、班级:10科四 课程名称:动物生理学实验实验项目:家兔尿生成的影响因素实验类型:验证实验时间:XX年5月28日实验指导老师:黄俊柅实验评分: 一. 实验目的 学习输尿管、膀胱插管技术和尿液收集的方法;了解神经和体液因素对尿量的调节 二. 实验原理 尿生成的过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌三个过程。凡能影响上述过程的任何因素,均可影响尿的生成并可引起尿量及尿的性质、成分的改变。本实验以家兔为实验对象,采用膀胱插管术收集并记录尿量,主要观察不同因素或药物对尿量的影响。 三. 实验材料 1.动物:家兔 2.试剂:生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、肾上腺素、垂体后叶素、20%甘露醇。

3.器材:手术器械、生理信号采集系统,压力传感器、注射器 四. 实验步骤 1.家兔麻醉:称重、麻醉:2%戊巴比妥钠,2ml/kg,耳缘静脉注射。固定:仰卧位固定 2.气管插管术:剪毛、中线剪开颈部皮肤(6~7cm)、钝性分离颈部肌肉等组织,暴露气管、气管穿线、软骨环上做T形切口、棉签去气管中的血块、插气管插管,结扎。 3.分离右侧迷走神经,穿线备用 4.泌尿系统插管——全身抗凝:静脉注射肝素,注射剂量10mg/kg (1ml/kg) A、输尿管插管:分离两侧输尿管,各穿2棉线备用;一侧输尿管结扎近膀胱端——结扎处往上做1/2切口——向上插管——绑线、动脉夹固定。 B、膀胱插管:分离两侧输尿管;输尿管下穿线,结扎与尿道连接的位置;用大注射针头刺破膀胱壁,从穿孔处将插管插入膀胱内,结扎并固定,如膀胱未充盈,可先注射生理盐水,让膀胱壁变薄 4.仪器连接,观察正常尿量 5.改变影响因素 (1).快速注射30ml生理盐水,记录尿量变化。(2).静脉注射肾上腺素0.2~0.3ml,记录尿量变化。(3).静脉注

家兔尿生成的影响因素实验

家兔尿生成的影响因素实验 1.实验目的 1.1学习用输尿管插管记录尿量的方法 1.2观察几种因素对尿生成的影响? 2.实验原理 尿生成的过程包括:肾小球的滤过作用,肾小管与集合管的重吸收作用,肾小管与集合管的分泌作用.凡是影响这些过程的因素,都会因影响尿生成而引起尿量变化. 3.实验对象与实验材料 家兔常规手术器械、止血钳、剪毛剪、眼科剪、眼科镊、玻璃分针、棉花、滴管、纱布、 棉线、温热生理盐水、烧杯、污物缸、兔手术台、塑料绳、棉签、动脉夹、注射器、照明灯、保护刺激电极、支架、PowerLab生理实验系统、生物电输入线、受滴器、输尿管插管、接 尿器皿、麻醉剂(2%戊巴比妥钠2ml/Kg)、肝素溶液(200U/ml)、20%葡萄糖溶液、10%NaSO 溶液、肾上腺素(1:10000)、垂体后叶素(5U/ml)、20%甘露醇. 4.实验方法与步骤 4.1家兔称重,麻醉(耳缘静脉注射2%戊巴比妥钠2ml/Kg )、固定(仰式)、剪毛、剪颈部皮肤6~7cm钝性分离颈部肌肉等组织?暴露气管、穿线、手术刀手术剪T形切口,事先准备好的棉签将气管中的血块弄出,插好气管插管并结扎.分离右侧迷走神经穿线备用. 4.2输尿管和膀胱血管丰富,在插管之前先注射肝素抗凝(200U/kg体重). 4.3膀胱插管.先用棉线从输尿管下方穿线绕到膀胱底部将膀胱与尿道连接处结扎紧,防止 尿液从尿道排出,如果膀胱未充盈,可先用注射器注射生理盐水进入膀胱,让膀胱壁变薄后用大注射针头刺破膀胱壁,然后从穿孔处将充满生理盐水的细塑料管或插管插入膀胱内,确保尿液可进入插管,然后将膀胱壁和插管一起结扎并固定好,排出气泡,确保导尿管道充满“尿液”. 4.4安装调节好受滴装置,先打开Powerlab,后打开Chart软件,设置1个通道,调节通道 1(100mV,10Hz,DC直流电)和刺激器的参数. 4.5记录一段“正常”尿生成:观察有滴尿即可,并在通道1曲线可显示出尿滴的标记波动 变化.耳缘静脉注射温热生理盐水30ml (速度可快),观察尿滴和通道1的标记. 4.6待尿量平稳后,同法注射肾上腺素溶液0.2~0.5ml,观察尿滴标记. 4.7同上,注射15ml葡萄糖溶液观察.观察尿滴标记. 4.8注射垂体后叶素2单位观察.观察尿滴标记. 4.9注射10%NaSQ溶液4ml.观察尿滴标记. 4.10刺激右侧迷走神经200或300脉冲,观察家兔反应和尿滴变化. 4.11注射20%甘露醇3ml/kg体重.观察尿滴标记.

影响尿生成的因素实验报告

影响尿生成的因素实验报告 影响尿液生成的因素 尿的生成过程:血液流入肾小球入球小动脉,进入毛细血管网,滤过后形成的原尿进入肾小管中,由于肾小管有重吸收的功能, 可以把很多一部分水和几乎所有的葡萄糖,氯化钠等重吸收回血液中,之后肾小管还有排秘功能,能排酸,排钾.形成尿液 尿生成是在肾单位和集合管中进行的,包括三个环节:① 肾小球的滤过作用;② 肾小管与集合管的重吸收;③肾小管与集合管的分泌作用。 一:肾小球的滤过作用:血液流过肾小球毛细血管时,血浆中一部分水、电解质和小分子有机物(包括少量分子量较小的血浆蛋白)都可通过滤过膜进入肾小囊内形成原尿的过程称为肾小球的滤过作用。 凡能影响肾小球的滤过作用的因素都能影响尿的生成。 影响肾小球滤过的主要因素是:滤过膜的通透性和滤过面积、有效滤过压和肾血浆流量。 1.滤过膜的通透性和滤过面积

滤过膜上有许多裂隙,形成大小不等的小孔,滤过膜的通透性就是以物质分子量大小是否能通过小孔来决定的(图6 -2)。由于血浆中小分子的葡萄糖、尿素、尿酸、肌肝和各种离子等物质都可以滤过,因此,滤液中这些物质的浓度都与血浆内的浓度近似。大分子物质如白蛋白(分子量为6.9万)极少滤过。分子量超过7万的物质如球蛋白、纤维蛋白等则不能滤过。一般以分子量7万为滤过膜通透性的界限。Hb(血红蛋白)的分子量虽6.4万,但它和血浆中的结合珠蛋白相结合,成为分子量较大的复合物,所以也不能滤过。只有当Hb大量被破坏,产生溶血,Hb浓度超过结合珠蛋白所能结合的量时,末结合的Hb才能进到滤液中,从尿中排出,这种尿液称为血红蛋白尿。在一般情况下,肾小球滤过膜的通透性是比较稳定的。 2.有效滤过压 ①肾小球毛细血管压是推动血浆通过滤过膜的主要力量,用微穿刺法直接测得鼠的肾小球毛细血管压平均为45mmHg。 ②肾小囊内压是阻止血浆滤过的力量,平均为lOmmHg。 ③肾小球毛细血管内血浆胶体渗透压是阻止血浆滤过的主要力量,在入球端约为2OmmHg,随着水分滤出,胶体渗透压不断上升,在出球端约为35mmHg。

实验报告(3)影响尿液生成因素

影响家兔尿液生成的因素 一、目的:学习输尿管插管或膀肮插管技术和尿的收集方法。观察刺激迷走神经和静脉注射 生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素等药物对尿量及尿中某些成分的影响,分析这些因素 的作用机制。 二、原理:尿生成过程包括肾小球的滤过作用及肾小管与集合管的重吸收和分泌作用。肾 小球滤过作用的动力是有效滤过压,而有效滤过压的高低主要取决于以下三个因素:肾 小球毛细血管血压、血浆胶体渗透压和囊内压。正常情况下,囊内压不会有明显变化。 肾小球毛细血管血压主要受全身动脉血压的影响,当动脉血压为80~180mmHg时,由于肾血流的自身调节作用,肾小球毛细血管血压均能维持在相对稳定水平,但当动脉血压 高于l80mmHg或低于80mmHg时,肾小球毛细血管血压就会随血压变化而变化,肾小球 滤过率也就发生相应变化。另外,血浆胶体渗透压降低,会使有效滤过压增高,肾小球 滤过率增加。影响肾小管、集合管泌尿机能的因素,包括肾小管溶液中溶质浓度和抗利 尿激素等。肾小管溶质浓度增高,可妨碍肾小管对水的重吸收,因而使尿量增加;抗利 尿激素可促进肾小管与集合管对水的重吸收,导致尿量减少。 三、关键词: 家兔泌尿系统调节 四、材料和方法 1材料:家兔、氨基甲酸乙酯、生理盐水、葡萄糖、去甲肾上、腺素、垂体后叶素、赛米松(速尿)、微机生物信号处理系统、膀胱插管,压力换能器。2方法: 2.1手术准备 2.1.1.1麻醉固定按1g/kg体重剂量兔耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙 酯。待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。 2.1.1.2腹部手术从耻骨联合向上延中线作长约4cm的切口,沿腹白线 打开腹腔,将膀胱轻拉至腹壁外,先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖位 置,用止血钳提起膀胱前壁,选择血管较少处,切一纵行小口,插入 插管后结扎。使插管的引流处低于膀胱水平,用培养皿承接由引流管 流出的尿液。如膀胱容积仍较大,可用粗线将膀胱扎掉一部分,使膀

生理学实验报告——家兔尿生成的影响因素

华南师范大学实验报告学生姓名:谭晓东学号:20102501024 专业:生物科学年级、班级:10科四 课程名称:动物生理学实验实验项目:家兔尿生成的影响因素 实验类型:验证实验时间:2013年5月28日 实验指导老师:黄俊柅实验评分: 一.实验目的 学习输尿管、膀胱插管技术和尿液收集的方法;了解神经和体液因素对尿量的调节 二.实验原理 尿生成的过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌三个过程。凡能影响上述过程的任何因素,均可影响尿的生成并可引起尿量及尿的性质、成分的改变。本实验以家兔为实验对象,采用膀胱插管术收集并记录尿量,主要观察不同因素或药物对尿量的影响。 三.实验材料 1.动物:家兔 2.试剂:生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、肾上腺素、垂体后叶素、20%甘露醇。 3.器材:手术器械、生理信号采集系统,压力传感器、注射器 四.实验步骤 1.家兔麻醉:称重、麻醉:2%戊巴比妥钠,2ml/kg,耳缘静脉注射。固定:仰卧位固定2.气管插管术:剪毛、中线剪开颈部皮肤(6~7cm)、钝性分离颈部肌肉等组织,暴露气管、气管穿线、软骨环上做T形切口、棉签去气管中的血块、插气管插管,结扎。 3.分离右侧迷走神经,穿线备用 4.泌尿系统插管——全身抗凝:静脉注射肝素,注射剂量10mg/kg (1ml/kg) A、输尿管插管:分离两侧输尿管,各穿2棉线备用;一侧输尿管结扎近膀胱端——结扎处往上做1/2切口——向上插管——绑线、动脉夹固定。 B、膀胱插管:分离两侧输尿管;输尿管下穿线,结扎与尿道连接的位置;用大注射针头刺破膀胱壁,从穿孔处将插管插入膀胱内,结扎并固定,如膀胱未充盈,可先注射生理盐水,让膀胱壁变薄 4.仪器连接,观察正常尿量 5.改变影响因素

影响尿生成的因素实验报告

影响尿液生成的因素 尿的生成过程:血液流入肾小球入球i小动脉,进入毛细血管网,滤过后形成的原尿进入肾小管中,由于肾小管有重吸收的功能, 可以把很多一部分水和几乎所有的葡萄糖,氯化钠等重吸收回血液中,之后肾小管还有排秘功能,能排酸,排钾.形成尿液 尿生成是在肾单位和集合管中进行的,包括三个环节:①肾小球的滤过作用;②肾小管与集合管的重吸收;③肾小管与集合管的分泌作用。 一:肾小球的滤过作用:血液流过肾小球毛细血管时,血浆中一部分水、电解质和小分子有机物(包括少量分子量较小的血浆蛋白)都可通过滤过膜进入肾小囊内形成原尿的过程称为肾小球的滤过作用。 凡能影响肾小球的滤过作用的因素都能影响尿的生成。 影响肾小球滤过的主要因素是:滤过膜的通透性和滤过面积、有效滤过压和肾血浆流量。 1.滤过膜的通透性和滤过面积 滤过膜上有许多裂隙,形成大小不等的小孔,滤过膜的通透性就是以物质分子量大小是否能通过小孔来决定的(图6 -2)。由于血浆中小分子的葡萄糖、尿素、尿酸、肌肝和各种离子等物质都可以滤过,因此,滤液中这些物质的浓度都与血浆内的浓度近似。大分子物质如白蛋白(分子量为6.9万)极少滤过。分子量超过7万的物质如球蛋白、纤维蛋白等则不能滤过。一般以分子量7万为滤过膜通透性的界限。Hb(血红蛋白)的分子量虽6.4万,但它和血浆中的结合珠蛋白相

结合,成为分子量较大的复合物,所以也不能滤过。只有当Hb大量被破坏,产生溶血,Hb浓度超过结合珠蛋白所能结合的量时,末结合的Hb才能进到滤液中,从尿中排出,这种尿液称为血红蛋白尿。在一般情况下,肾小球滤过膜的通透性是比较稳定的。 2.有效滤过压 ①肾小球毛细血管压是推动血浆通过滤过膜的主要力量,用微穿刺法直接测得鼠的肾小球毛细血管压平均为45mmHg。 ②肾小囊内压是阻止血浆滤过的力量,平均为lOmmHg。 ③肾小球毛细血管内血浆胶体渗透压是阻止血浆滤过的主要力量,在入球端约为2OmmHg,随着水分滤出,胶体渗透压不断上升,在出球端约为35mmHg。 有效滤过压=肾小球毛细血管压-(血浆胶体渗透压+肾小囊内压) 入球动脉端有效滤过压:45-(20+10)=15(mmHg) 出球动脉端有效滤过压:45-(35+10)=0(mmHg) 3.肾血流量 肾脏在血压变动于80-18OmmHg范围内时,依靠其自身调节可使血流量保持稳定。正常人安静时两侧肾脏血流量每分钟为1.2升,每昼夜从肾小球滤过的血浆总量可达170-180升,约为体重的3倍。 二、肾小管与集合管的重吸收作用 重吸收作用是指滤液(原尿)流经肾小管与集合管内时,其中水和某些溶质全部或部分地透过肾小管与集合管上皮细胞,重新回到肾小管与集合管周围毛细血管血液中去的过程。

尿生成_机能学实验报告

某些因素对家兔尿液生成的影响 一、实验目的 1. 掌握膀胱插管技术,神经分离技术,学习尿量的记录和测量方法。 2. 观察神经体液因素(生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素) 和电刺激对尿生成的影响,并分析其作用机制。 四、实验结果: 【实验讨论】:尿生成过程包括肾小球的滤过作用及肾小管与集合管的重吸收和分泌作用。肾小球滤过作用的动力是有效滤过压,而有效滤过压的高低主要取决于以下三个因素:肾小球毛细血管血压、血浆胶体渗透压和囊内压。 1、注射生理盐水后,血液被稀释,血浆胶体渗透压下降,肾小球有效滤过压增加, 有效滤过率增加,所以尿量增加。 1.生理盐水中的Na、Cl离子被肾小管和集合管完全重吸收了,同时有一些水分也被重吸收,所以尿液生成量增大,但增大幅度不是太大。①静脉快速注射生理盐水后,尿量增加。机制:静脉快速注入大量生理盐水,血浆蛋白被稀释,血浆胶体渗透压下降,肾小球有效滤过压增加,加之肾小球血浆流量也增加,滤过率增加,尿液生成增加。 2.注射的葡萄糖溶液直接进入血液循环,增大了肾血管的血流量,而肾小管和集合管在机体不缺水时又只重吸收葡萄糖,所以葡萄糖溶液的水分全部渗过肾小管,形成尿液。⑤静脉注射葡萄糖,尿量增加。 机制:近球小管对葡萄糖的重吸收有一定限度,称为肾糖阈(160~180mg/ml)。实验中葡萄糖的注射量已经超过肾小管的吸收极限,小管液中就会有葡萄糖,进而小管液的溶质浓度增加,渗透压增加,妨碍了肾小管特别是近球小管对水的重吸收,小管液中的Na+浓度被稀释而降低,故Na+的重吸收也减少,氯化钠及水的排出均增加,尿量增加。 2、静脉注射葡萄糖,使血浆中葡萄糖浓度升高,超过了肾糖阈,以致肾小管液中 葡萄糖浓度升高,渗透压升高,对抗肾小管对水的重吸收,从而使尿量增加。 ④静脉注射去甲肾上腺素,尿量减少。 机制:去甲肾上腺素能使肾血管收缩,肾血流量减少,从而使肾小球毛细血管血压降低,有效滤过压降低,肾小球滤过率减小,尿的生成减少,尿量减少。 3、去甲肾上腺素对α受体具有强大激动作用,使肾小球入球动脉收缩,是肾小球毛细血管中血流量降低,滤过率减少,尿量减少,尿速变慢。但实验结果与理论不符,可能是操作失误或存在误差,没有统计学意义。 3.去甲肾上腺素可使入球小动脉和出球小动脉收缩,但前者收缩比后者更明显,使肾小球毛细血管血浆流量减少,肾小球毛细血管血压下降,肾小球的有效滤过压下降,尿生成减少。 ③静脉注射速尿,尿量增加。 机制:速尿可与髓袢升支粗段的Na+-2CL—K+同向转运体结合,;由于氯化钠的重吸收被抑制,降低了肾髓质的高渗梯度,从而使肾脏浓缩尿液的能力下降,导致水重吸收减少,尿量增加,产生利尿效果。 3、。注射呋塞米,一方面使肾血流量增加,肾小球滤过作用增强从而使尿量增 加。另一方面通过调节载体转运功能,抑制髓袢升支粗段Na+-K+-2Cl-同向转运,使NaCl重吸收量减少,肾小管渗透压下降,尿液浓缩功能减弱,导

尿生成因素影响

影响尿生成的因素 一、实验目的 观察某些因素对尿生成的影响,进一步认识和理解尿液生成的调节。学习观察尿生成的动物实验方法。 二、实验原理 尿的生成过程包括肾小球滤过、肾小管和集合管重吸收及分泌、排泄过程。肾小球滤过作用受滤过膜通透性、肾小球有效滤过压和肾小球血浆流量等因素的影响。肾小管和集合管重吸收受小管液的溶质浓度和血液中血管升压素及肾素-血管紧张素-醛固酮系统等因素的影响。凡能影响上述各种因素者,均可影响尿的生成。 三、仪器设备 兔手术台、常用手术器械、插管等。 四、相关知识点 1、影响尿生成的多个因素及其与血压影响的综合效应,进一步理解机体的整体功能调节的方式。 2、生物信息学在生理学的具体运用。 3、临床利尿、保水和升压等药物运用的机理。 五、实验步骤 连接仪器装置,调节参数将压力换能器固定在铁支架上,换能器的位置大致与心脏在同一水平。将动脉导管经三通开关与压力换能器正中的一个输入接口相接,压力换能器侧管上的输入接口与另一三通开关连接。压力换能器的输入信号插头与生物信号采集处理系统的信号放大器输入盒的某通道相连。用注射器通过三通开关向压力换能器及动脉导管内注满肝素生理盐水,排尽气泡,然后关闭三通开关备用。 将刺激电极输入端与生物信号采集处理系统的刺激输出口相连,将刺激电极输出端与保护电极相连。 (二)手术 1、麻醉动物固定 用20%氨基甲酸乙酯按1g/kg体重的剂量耳缘静脉缓慢注入,待动物麻醉后,取仰卧位将兔固定于兔手术台上。 2、分离颈部的神经和血管、插颈总动脉插管,行膀胱插管术 用粗剪刀剪去颈部的毛,沿正中线切开颈部皮肤,在气管旁分离右侧颈总动脉,按常规插管,并以止血钳分离出两侧迷走神经,在其下方穿线备用。 在下腹部正中线作长约4cm的切口,下端达耻骨联合。沿腹白线切开腹壁,将膀胱移至腹外。辩认清楚输尿管进入膀胱背侧的部位后,细心地分离出两侧输尿管,先在靠近膀胱处穿线结扎,再在离此结扎2cm处的输尿管近肾段下方穿过一根线。用眼科剪在管壁上剪一斜口,插入充满生理盐水的细塑料管,用留置的线结扎固定。再以同样方法插好另一侧输尿管。两侧的细塑料插管可用Y形管连起来。此时,可看到尿液从细塑料管中慢慢逐滴流出。 本实验亦可改为从膀胱插管导尿。同述输尿管插管法,切开腹壁将膀胱移至腹壁上。先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,在两侧输尿管下穿线,将膀胱翻向头侧。用丝线结扎膀

尿生成的影响因素

尿生成的影响因素 实验目的: 1. 掌握膀胱插管技术,神经分离技术,学习尿量的记录和测量方法。 2. 观察神经体液因素(生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素) 对尿生成的影响,并分析其作用机制。 实验对象: 家兔(重2kg ) 实验材料: 1.试剂:20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、20%葡萄糖、1:10000的去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素 2.仪器:手术剪、镊子、止血钳、玻璃分针、兔手术台、膀胱插管、注射器及针头、微机生物信号采集处理系统、棉线若干、婴儿秤。 实验步骤: 1.静脉麻醉 从兔耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯(1g/kg 体重)。 2.仰卧固定 待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。 3. 腹部手术 从耻骨联合向上沿中线作长约4厘米的切口,沿腹白线打开腹腔,将膀胱轻拉至腹壁外,先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,用止血钳提起膀胱前壁(靠近顶端部分),选择血管较少处,切一纵行小口,插入插管后膀胱即随着尿液的流出而缩小。如膀胱壁较松驰而膀胱容积仍较大时,可用粗线将膀胱扎掉一部分,使膀胱内的贮尿量减至最少。用线结扎膀胱颈部以阻断膀胱同尿道的通路。使插管的引流管出口处低于膀胱水平,用培养皿盛接由引流管流出的尿液,手术完毕后,用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口,并关闭腹腔。 4.改变影响因素 (1).快速注射37℃生理盐水20ml ,记录尿量变化 。 (2).快速静脉注射20%葡萄糖5ml ,记录尿量变化。 (3).静脉注射1:10000去甲肾上腺素0.3ml ,记录尿量变化。 (4).静脉注射呋塞米5mg/kg ,记录尿量变化。 (5).缓慢静脉注射垂体后叶素2单位即0.3ml ,记录尿量变化。 实验结果: 1.本组实验结果 (说明:本小组在剖开腹腔准备膀胱插管时,腹部开口过大,导致肠道流出压迫了输尿管,从而可能影响了一些实验结果,也是以后应当注意的地方) 实验项目 对照(实验前) 实验组 1min 2min 3min 4min 5min 生理盐水20ml 0 1 1 3 4 4 20%葡萄糖5ml 1 13 1 2 14 14 14 去甲肾上腺素0.3ml 12 1 2 1 2 2 呋塞米5mg/kg 1 46 48 52 54 58 垂体后叶素0.3ml 28 26 4 1

尿生成的影响因素实验报告

尿液生成的影响因素 一、实验目的 学习膀胱插管技术,学习尿量的记录和测量方法。观察神经体液因素(生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素)对尿生成的影响,并分析其作用机制。 二、关键词 尿生成;尿量;影响因素 三、实验材料 家兔;氨基甲酸乙酯、生理盐水20ml 、20%葡萄糖5ml 、0.01%去甲肾上腺素0.3ml 、呋塞米1.5ml 、垂体后叶素0.33ml ;手术剪、镊子、止血钳、玻璃分针、兔手术台、膀胱插管、注射器及针头、微机生物信号采集处理系统、棉线若干、婴儿秤。 四、实验步骤 1.静脉麻醉 从兔耳缘静脉注射氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后将其仰卧,先后固定四肢及兔头。 2.颈部手术 剪去颈前部兔毛,正中切开皮肤5~6厘米,用止血钳纵向分离软组织及颈部肌肉, 暴露气管及与气管平行的右血管神经鞘,细心分离出右侧鞘膜内的迷走神经,在神经下穿线备用。 3.腹部手术 从耻骨联合向上沿中线作长约4厘米的切口,沿腹白线打开腹腔,将膀胱轻拉至腹壁 外,先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,用止血钳提起膀胱前壁(靠近顶端部分),选择血管较少处,切一纵行小口,插入插管后膀胱即随着尿液的流出而缩小。如膀胱壁较松驰而膀胱容积仍较大时,可用粗线将膀胱扎掉一部分,使膀胱内的贮尿量减至最少。用线结扎膀胱颈部以阻断膀胱同尿道的通路。 使插管的引流管出口处低于膀胱水平,用培养皿盛接由引流管流出的尿液,手术完毕后,用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口,并关闭腹腔。 5.改变影响因素 (1).快速注射生理盐水20ml ,记录尿量变化 。 (2).快速静脉注射20%葡萄糖5ml ,记录尿量变化。 (3). 静脉注射去甲肾上腺素0.3ml ,记录尿量变化。 (4). 静脉注射呋塞米5mg/kg ,记录尿量变化。 (5). 缓慢静脉注射垂体后叶素2单位即0.33ml ,记录尿量变化。 五、实验结果 六、讨论分析 1.快速注射生理盐水 实验项目 对照(实验前) 实验组 1min 2min 3min 4min 5min 生理盐水20ml 1 1 2 3 5 4 葡萄糖5ml 2 9 9 12 10 7 去甲肾上腺素0.3ml 7 3 2 1 2 1 呋塞米5mg/kg 3 11 19 34 42 37 垂体后叶素0.33ml 22 4 3 1 2

家兔尿生成的影响因素及与血压的关系

家兔尿生成的影响因素及与血压的关系 一、实验目的 1、学习输尿管插管技术。 2、观察血浆胶体渗透压、血糖浓度、肾小球毛细血管压变化对尿生成的影响。 3、观察影响肾小管重吸收药物对尿生成的影响。 二、实验原理 1、尿生成的过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌三个过程。凡能影响上述过程的任何因素,均可影响尿的生成并可引起尿量及尿的性质、成分的改变。本实验以家兔为实验对象,采用膀胱插管术收集并记录尿量,主要观察不同因素或药物对尿量的影响。 2、肾小球的滤过作用:肾小球毛细血管网血浆成分向肾小球囊腔滤过,是尿生成过程的第一步。肾小球的滤过作用主要取决于肾血流量和有效滤过压。肾小球滤过膜的通透性很高,所产生的肾小球滤液在小分子溶质的组成上非常接近于血浆,只是几乎不含有蛋白质。肾小管和集合管的重吸收:原尿中的99%在流经集合管和肾小管时被重吸收。对于尿的浓缩和稀释有重要意义。对各种物质的重吸收有三类:葡萄糖能完全重吸收;电解质和水可被吸收大部分;尿素、肌酐等代终产物仅有小部分被重吸收。Cl-、Na+、K+离子在肾小管和集合管部分被重吸收。 三、材料、试剂和仪器 1.动物家兔 2.试剂和药品生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、10单位/毫升肝素生理盐水(或6%枸橼酸钠)、1∶10,000去甲肾上腺素、垂体

后叶素、速尿、20%甘露醇。 3.装置和器材微型计算机及生物信号采集与处理系统、血压换能器、保护电极、兔手术台和手术器械、动脉插管、动脉夹、膀胱漏斗、注射器(2ml 、5ml 、10ml 、20ml)及针头、酒精灯、试管架、试管和试管夹、输液装置、手术灯、纱布、丝线等。 四、实验步骤 1、麻醉→背位固定→剪去颈部与下腹部被毛 2、分离颈部动脉,做动脉插管→分离右侧迷走神经→穿两线备用→用湿纱布覆盖创面。 处穿线结3、下腹部正中线作长约4厘米的切口→将膀胱移出腹腔外→分离出一侧输尿管→在近膀胱扎,再穿一线备用,在管壁上剪一斜向肾的切口,插入输尿管插管,扎紧固定→直接计算尿流量(滴/min)。 4、实验观察,待尿流量稳定后,进行以下实验。 (1) 耳缘静脉注射温热生理盐水30ml,观察尿量的变化 (2) 耳缘静脉注射20%葡萄糖15ml,观察变化。 (3) 耳缘静脉注射肾上腺素0.5ml,观察变化。 (4) 耳缘静脉注射垂体后叶素2单位,观察变化。 (5) 结扎并剪断右侧颈迷走神经,用中等强度的连续脉冲刺激其外周端20~30s,观察变化。 五、实验结果 (1)正常情况下尿液的生产情况

尿中ALA测定实验报告名师制作优质教学资料

08 检疫HapyWu 尿中δ—氨基—γ—酮戊酸(δ—ALA)的测定 一、实验目的 学会用乙酸乙酯萃取—对二氨基苯甲醛比色法测定尿中δ—氨基—γ—酮戊酸(δ—ALA)的含量,从而了解铅吸收和铅中毒的诊断。二、实验原理 在PH为4.6及温度为100℃的条件下,δ—ALA与乙酰乙酸乙酶缩合生成吡咯化合物。此化合物用乙酸乙酯提取,并与显示剂(对二甲氨基苯甲醛)作用生成红色化合物,根据颜色深浅进行比色定量。 三、实验步骤 1.标准曲线的绘制 取具赛比色管10ml6支,按下表配置标准色列: 试剂 0 1 2 3 4 5 ALA标准应用液(ml)0.0 0.1 0.3 0.5 0.7 1.0 水(ml) 2.0 1.9 1.7 1.5 1.3 1.0 ALA含量(ug) 0 1 3 5 7 10 A.各管中加入2ml乙酸缓冲液,0.4ml乙酰乙酸乙酯,混匀,于沸水中加热10分钟,取出冷至室温。 B.各管加入4ml 乙酸乙酯,加塞振摇1分钟,离心5分钟、取出静置分层。 C.各取乙酸乙酯提取液2ml于另外6支管中,各管加入2ml显色剂,加塞振摇,静置10分钟。

D.用分光光度计(波长554),以零管作参比,测其吸光度。根据ALA 浓度与吸光度的关系绘制标准曲线。 2.尿样测定 A.预先测定尿液比重,测得尿样比重为1.010。 B.分别取1ml尿样于两支上述一样的管内,各加入水1ml,乙酸缓冲液2ml,混匀。其一为样品管,另一为空白管。向样品管中家兔0.4ml 乙酰乙酸乙酯,空白管中加入0.4乙酸缓冲液,充分混匀,同时置沸水浴中加热10分钟,取出冷至室温。 C.按标曲绘制的B~D进行,以乙酸乙酯作参比,进行比色定量。四.实验结果与计算 1.标准曲线绘制 管号0 1 2 3 4 5 ALA含量 0 1 3 5 7 10 (ug) 吸光度A 0 0.054 0.152 0.242 0.288 0.479 2.尿样结果空白管为0.022,样品管为0.110。 带入标准曲线查得样品管中ALA含量为1.83ug。 根据尿样比重为1.010,在正常范围内,故

尿生成的影响因素实验报告

尿生成的影响因素实验报告 尿液生成的影响因素 一、实验目的 学习膀胱插管技术,学习尿量的记录和测量方法。观察神经体液因素(生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素)对尿生成的影响,并分析其作用机制。...文档交流仅供参考... 二、关键词 尿生成;尿量;影响因素 三、实验材料 家兔;氨基甲酸乙酯、生理盐水20ml、20%葡萄糖5ml、0。01%去甲肾上腺素0.3ml、呋塞米1.5ml、垂体后叶素0.33ml;手术剪、镊子、止血钳、玻璃分针、兔手术台、膀胱插管、注射器及针头、微机生物信号采集处理系统、棉线若干、婴儿秤。...文档交流仅供参考... 四、实验步骤 1.静脉麻醉从兔耳缘静脉注射氨基甲酸乙酯.待兔麻醉后将其仰卧,先后固定四肢及兔头。 2.颈部手术剪去颈前部兔毛,正中切开皮肤5~6厘米,用止血钳纵向分离软组织及颈部肌肉,暴露气管及与气管平行的右血管神经鞘,细心分离出右侧鞘膜内的迷走神经,在神经下穿线备用....文档交流仅供参考...

3。腹部手术从耻骨联合向上沿中线作长约4厘米的切口,沿腹白线打开腹腔,将膀胱轻拉至腹壁外,先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,用止血钳提起膀胱前壁(靠近顶端部分),选择血管较少处,切一纵行小口,插入插管后膀胱即随着尿液的流出而缩小.如膀胱壁较松驰而膀胱容积仍较大时,可用粗线将膀胱扎掉一部分,使膀胱内的贮尿量减至最少。用线结扎膀胱颈部以阻断膀胱同尿道的通路。...文档交流仅供参考... 使插管的引流管出口处低于膀胱水平,用培养皿盛接由引流管流出的尿液,手术完毕后,用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口,并关闭腹腔。...文档交流仅供参考... 5.改变影响因素 (1).快速注射生理盐水20ml,记录尿量变化。 (2)。快速静脉注射20%葡萄糖5ml,记录尿量变化。(3).静脉注射去甲肾上腺素0。3ml,记录尿量变化. (4)。静脉注射呋塞米5mg/kg,记录尿量变化。 (5)。缓慢静脉注射垂体后叶素2单位即0。33ml,记录尿量变化。 五、实验结果 实验项目对照 (实 验前) 实验组 1mi n 2mi n 3mi n 4mi n 5 mi n

家兔尿液生成的影响因素

家兔尿液生成的影响因素 摘要:目的研究静脉注射生理盐水(normal saline,NS)、20%葡萄糖溶液(glucose solution,GS)、去甲肾上腺素(norepinephrine,NE)、呋塞米和垂体后叶素等药物对家兔尿液生成的影响。方法本实验采用膀胱插管引流家兔的尿液,通过记数注射某种药物一段时间后家兔尿液在单位时间内的生成滴数,来判断该药物对家兔尿液生成的影响。结果正常情况下家兔的尿液生成速率为1滴/min;静脉快速注射生理盐水20ml后,尿液生成速率增大至4滴/min;静脉注射20%GS 5ml后,家兔尿液生成速率为15滴/min;静脉注射0.001%NE0.3ml后,家兔尿液生成速率为0.5滴/min;静脉注射呋塞米后,家兔尿液生成速率为55滴/min;静脉注射2单位垂体后叶素后,家兔尿液生成速率为0.2滴/min。结论静脉注射NS、GS、呋塞米可使家兔尿液生成量增加;而静脉注射NE和垂体后叶素可使家兔尿生成量减少。 关键词:尿生成;生理盐水;葡萄糖;去甲肾上腺素;呋塞米;垂体后叶素 一、实验材料 1.1实验对象:健康家兔一只 1.2实验器材:兔手术台、常规手术器械、膀胱插管、氨基甲酸乙酯,生理盐水,葡萄糖,去甲肾上腺素,呋塞米,垂体后叶素 二、实验方法 2.1麻醉固定按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。 2.2腹部手术剪去腹部的兔毛,从耻骨联合向上沿中线作约4cm的切口,沿腹白线打开腹腔 2.3膀胱插管将膀胱轻拉至腹壁外,先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖位置,用止血钳提起膀胱前壁(靠近顶端部分),选择血管较少处,切一纵行小口,插入插管后结扎。使插管的引流管出口处低于膀胱水平,用培养皿盛接有引流管流出的尿液。如膀胱容积仍较大时,可用粗线将膀胱扎掉一部分,使膀胱内的贮尿量减至最少。用线结扎膀胱颈部以阻断膀胱同尿道的通路。术毕用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口。

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