家兔呼吸运动实验

家兔呼吸运动实验

人及高等动物的呼吸运动所以能持续地节律性地运动，是由于机体内存在着完整的调节机制。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。血液中CO

2分压的改变，是通过对中枢性与外周性化学感受器的刺激及发射性的调节，来保证血液中气体分压稳定的重要机制。

本实验结果分析如下：

1、正常呼吸运动及血压曲线（下为血压曲线，上为呼吸运动曲线）：

2、增加无效腔对呼吸运动及血压的影响：

由图可以看出：增加无效腔后，家兔呼吸频率加快，呼吸程度变深，血压上升。其对呼吸运动及血压的影响原理与增加无效腔相同，即两者的影响同时刺激中枢化学感受器和外周化学感受器，使其反射性的调节使呼吸加深加快。

思考题：

1.血液中C0

2增多或缺0

2时，呼吸运动有何变化，通过那些途径？C0

2增多和缺0

2都能使呼吸增强。C0

2刺激呼吸是通过刺激中枢化学感受器和外周化学感受器两条途径实现的。中枢化学感受器起主要作用。但因为中枢化学感受反应较慢，当动脉血中C0

2分压突然增高时，外周化学感受器在引起快速呼吸反应中可起重要作用。

低0

2对呼吸运动的刺激完全是通过外周化学感受器实现的。缺0

2可以刺激颈动脉体和主动脉体的外周化学感受器，而使延髓呼吸中枢兴奋，反射性地引起呼吸运动增强。

2.根据实验结果分析肺牵张反射，包括迷走神经气抑制反射与迷走神经吸气兴奋反射的反射途径以及对维持正常呼吸节律的意义。

肺充气或扩张时：感觉器位于从气管到细支气管的平滑肌中，是牵张感受器，阈值低，适应慢。当肺扩张牵拉呼吸道，使之也扩张时，感觉器兴奋，冲动经迷走神经走神经粗纤维传入延髓。在延髓内通过一定的神经联系使吸气切断机制兴奋，切断吸气，转入呼气。这样便加

生理学实验：家兔呼吸运动的调节

实验数据分析 1.正常的家兔呼吸曲线 图1.正常的家兔呼吸曲线曲线 由图可知，本组选取的家兔自身呼吸频率较快，幅度加大，后续增强呼吸的因素作用不是十分明显。 2.接空气气囊的家兔呼吸曲线 图2.接空气气囊的家兔呼吸曲线曲线 由图可知，改接空气气囊后，家兔呼吸幅度和频率均未出现太大变化。 3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线

CO2 图3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线 由图可知，接CO2气囊后，家兔呼吸曲线幅度增大，频率加快。这是因为CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，不但对呼吸有很强的刺激作用，而且对维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动是必须的。当呼入气体中CO2浓度升高，血液中CO2浓度随之升高，CO2透过血脑屏障使脑脊液的CO2浓度也升高。CO2与水反应生成H2CO3，随后水解成HCO3-和H+，由H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过一系列调控使得呼吸作用加强。此外，当CO2浓度增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。 4.接N2气囊的家兔呼吸曲线 N2 图4.接N2气囊的家兔呼吸曲线

由图可知，接N2气囊后，家兔呼吸曲线幅度略有增大。这是因为吸入纯N2时，因吸入气体中缺乏O2，肺泡气O2浓度下降，导致动脉血中O2浓度下降；而CO2浓度却基本不变（CO2扩散速度较快）。随着动脉血中O2浓度下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。 5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线 图5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线 由图可知，增长解剖无效腔后，家兔呼吸幅度略有下降，而呼吸频率则稍稍上升，这是因为实验中通过插管的方式增大无效腔，也就是减小了进入肺泡的潮气量，即每次的有效气体更新变小。结果促使O2分压下降，CO2分压上升，使其反射性的调节使呼吸加深加快。所以膈肌放电的变化幅度加大，频率有微量增大。反映到膈肌的收缩曲线，由于收缩频率的增大，为了维持正常的肺部通气量，所以收缩强度减弱。 6.家兔肺牵张反射曲线

家兔呼吸运动的调节

家兔呼吸运动的调节 生物科学二班朱慧兴 1.实验目的 1.1学习家兔呼吸运动的测定方法； 1.2观察并分析牵反射以及影响呼吸运动的各种因素. 2.实验原理 呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映.在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中较为重要的有呼吸中枢、肺牵反射以及外周化学感受器的反射性调节.因此，体外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或外周的感受器反射性地影响呼吸运动. 3.实验对象与实验材料 家兔常规手术器械、手术刀、手术剪、镊子、眼科剪、金冠剪、玻璃分针、棉花、纱布、棉线、小弯钩、烧杯、污物缸、兔手术台、塑料绳、长塑料管（1.5m)、棉签、20ml注射器、5ml注射器、1ml注射器、照明灯、保护电极、滑轮、支架、PowerLab生理实验系统、气管插管、力传器感、麻醉剂（2%戊巴比妥钠 2ml/Kg ）、生理盐水、50mg/ml尼可刹米注射液、其他溶液如1%乳酸溶液等. 4.实验步骤 4.1 麻醉：2%戊巴比妥钠；2ml/kg体重；耳缘静脉注射. 4.2固定（仰式）、剪毛、剪颈部皮肤4~5cm，钝性分离颈部肌肉等组织，剪颈部皮毛和胸部剑突位置皮毛. 4.3 气管插管：暴露气管、穿线、手术刀手术剪T形切口，事先准备好的棉签将气管中的血块弄出，插好气管插管并结扎. 4.4 颈部气管及神经分离手术：气管插管、分离双侧迷走神经. 4.5 剑突软骨分离手术：切开剑突位置皮肤约2cm，细心分离剑突软骨周边组织，暴露剑突软骨，剪断骨柄，保留骨柄下方膈肌与剑突相连. 4.6 连接实验装置：PowerLab 通道2 -力换能器，刺激电极连接，设置CH2桥式放大器(5mV，10Hz)和刺激器（100脉冲，1V，1mS，40Hz). 4.7 实验观察项目： 4.7.1 记录家兔平静呼吸的运动曲线，观察家兔吸气和呼气时候对应的曲线方向； 4.7.2 增加无效腔：另一侧用止血钳夹闭； 4.7.3 增加气道阻力：同时夹闭气管插管两侧管； 4.7.4 肺的牵反射：一侧气管胶管用20ml大注射器吸入20ml空气，待呼吸运动平稳后，夹闭气管插管的一侧胶管，在家兔吸气之末，用三个呼吸节律时间徐徐向家兔肺注入20ml空气，观察记录呼吸运动曲线的变化.实验后立即打开夹闭的侧管.同法，于呼气之末用20ml 注射器抽取肺气体20ml（维持3个呼吸节律时间），观察呼吸的运动曲线（注意吸气之末和呼气之末，先夹闭一侧管，再注入空气或抽气，时间控制在三个呼吸节律的时间，然后松开夹闭）； 4.7.5 增加吸入气的CO2浓度(选做）； 4.7.6 低氧实验（钠石灰特制低氧瓶，选做）；

家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)

【下载本文档，可以自由复制内容或自由编辑修改内容，更多精彩文章，期待你的好评和关注，我将一如既往为您服务】 家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer） 1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。 【实验步骤】 1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰 卧，固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。 5观察记录（observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，观察呼吸变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中

家兔呼吸运动的调节

家兔呼吸运动的调节 【目的要求】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.学习记录膈肌放电的方法。 3.观察并分析肺牵张反射以及影响呼吸运动的各种因素。 【实验基本原理】 呼吸运动是呼吸肌的舒缩运动，是呼吸肌（胸壁上的肋间肌和隔肌）在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。 膈肌的收缩活动受来自中枢的传出神经支配，传出冲动的节律与频率，影响膈肌的收缩节律、频率与强度. 人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。 肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。 血液中CO2分压的改变，通过对中枢性与外周性化学感受器的刺激及反射性调节，是保证血液中气体分压稳定的重要机制。 【实验动物与器材】 实验动物： 家兔 实验工具： 兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水

【实验方法与步骤】 1.麻醉→背位固定→剪去颈部与剑突腹面的被毛→切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管→分离出双侧迷走神经，穿线备用。 气管务必分离干净，插管后务必扎紧，避免漏气 2.剑突软骨分离术切开胸骨下端剑突部位的皮肤，并沿腹白线再切开长约2cm的切口。细心分离剑突表面的组织，并暴露剑突软骨与骨柄。提起剑突，可见剑突随膈肌的收缩而自由运动。 3.将系有剑突的金属钩钩于剑突中间部位，线的另一端系于张力传感器的应变梁上。 4.开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器 5.记录膈肌放电. 【实验观察项目】 （1）记录正常的呼吸运动、膈肌放电曲线，注意分清呼气和吸气运动与曲线的方向。 （2）增加无效腔对呼吸运动的影响将长约 0.5m、内径1cm的橡皮管连于气管插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧管，使无效腔增加，观察并记录呼吸运动的改变，一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。 （3）增加气道阻力对呼吸运动的影响： 将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒，观察呼吸变化。 (4)肺牵张反射在气管插管的一个侧管上，连通一个20ml注射器，并吸入20ml空气。

实验家兔呼吸运动的调节

实验28 家兔呼吸运动的调节 浙江中医药大学 1.摘要 目的观察血液中化学因素（PCO2、PO2、[H﹢]）改变对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机制。学习气管插管术和神经血管分离术。 方法通过增大 CO2分压，增大无效腔，快速注射 2%乳酸，先后切断两侧迷走神经，以及电刺激迷走神经中枢端，观察呼吸运动的改变情况。 结果增大无效腔气量、提高 PCO2、注射乳酸均可使家兔呼吸加深加快，而剪断一侧及两侧迷走神经、电刺激迷走神经中枢端则使呼吸变浅、频率变慢。 结论增加 PCO2，增大无效腔，快速注射乳酸后，可使家兔通气量、呼吸频率及平均呼吸深度明显增加；剪断一侧迷走神经对呼吸运动影响不大，剪断双侧迷走神经，呼吸变慢变深。 2.材料和方法 2.1材料 家兔；CO2，氨基甲酸乙酯，乳酸；呼吸换能器；微机生物信号采集处理系统。 2.2方法 2.2.1实验系统连接及参数设置用胶管连接流量头与气管插管，流量头连接呼吸流量换能器。呼吸换能器输出线连接微机生物信号处理系统。打开RM6240系统：点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，仪器参数：通道时间常数为直流，滤波频率30Hz，灵敏度10cmH2O(或50ml/s)，采样频率800Hz，扫描频率1s/div。连续单刺激方式，刺激强度5-10V，刺激波宽2ms,刺激频率30Hz。 2.2.2麻醉固定家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。 2.2.3手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6-7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。分离气管，在气管下两根粗棉线备用。 2.2.4气管插管在甲状软骨下约1cm处，做倒“T”形剪口，用棉签将气管切开及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用意粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。 2.3实验观察 2.3.1记录正常呼吸曲线启动生物信号采集处理系统记录按钮，记录一段正常呼吸运动曲线作为对照。辨认曲线上吸气、呼气的波形方向（呼气曲线向上、吸气曲线向下）。 2.3.2增加吸入气中CO2分压待呼吸曲线恢复正常，将CO2导管口使气体冲入气管插管，是家兔吸入较高浓度CO2的空气。待家兔呼吸运动增强后，立即移去CO2气体导管。待呼吸正常后再做下一步实验。 2.3.3在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和

家兔呼吸运动的调节(详细参考)

家兔呼吸运动的调节 一、实验目的 1、掌握家兔耳缘静脉注射法、家兔颈部手术操作、神经血管分离、气管插管技术、记录家兔呼吸曲线 2、观察血液中化学因素（CO2，O2和[H+]）及药物对呼吸运动的影响、迷走神经对呼吸运动的调节 二、实验原理 呼吸运动是受呼吸中枢控制的呼吸肌节律性活动，伴随着压力变化而使气体进出呼吸道。呼吸运动受神经以及血液中PO2，PCO2，[H+]等因素的调节。药物能作用于呼吸中枢而影响呼吸运动。 肺牵张反射的传入神经是迷走神经，通过此反射弧完成正常地节律性呼吸。 三、实验用品 1、动物：家兔 2、器械：动物手术器材（手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针,动脉夹，丝线，注射器，兔手术台），气管插管，橡皮管 3、药品和试剂：20%乌拉坦、生理盐水等。 四、实验步骤 一、仪器连接与标定 二、称重、麻醉 三、固定、剪毛 四、颈部手术（颈部正中切口—分离软组织—暴露气管—钝性分离双侧迷走神经—各自穿2根丝线备用钝性分离气管，底下穿棉线备用气管倒T形切口，插入Y形气管插管，棉线固定 五、气管插管 六、分离迷走神经（由里向外翻出气管一侧组织——颈动脉鞘： 粗—迷走神经中—交感神经细—减压神经） 七、腹部手术（切开胸骨下端剑突部位的皮肤，再沿腹白线切开长约2ml的切口。细心分离表面的组织（勿伤及胸骨），暴露出剑突与骨柄（注意不要伤害膈肌 2、将系有长线的金属钩钩住或用线系住胸骨柄，线的另一端接张力换能器。）注意事项 分离神经时不能用尖的或锋利的金属机械；

实验观察中，在刺激开始、撤除时，应做好标记。 五、实验结果观察 家兔呼吸运动的调节 →正常时 →窒息时<-- 1、CO2浓度增加使呼吸运动加强 分析：CO2对呼吸有很强的刺激作用，每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大。 H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢。

家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)

家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer） 1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。 【实验步骤】 1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰卧，固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。

5观察记录（observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，观察呼吸变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 【实验结果】 图1.正常呼吸曲线

家兔呼吸运动的调节

实验二家兔呼吸运动的调节 学号071231016 姓名高鑫时间2010/3/18 I.实验目的 A.观察血液中化学因素（P co2、P o2）的改变以及药物影响对兔呼吸运动（频率、节 律、幅度）的影响，探讨其作用机制。 B.掌握气管插管术及家兔呼吸生物信号采集 C.复习家兔神经血管的分离 II.实验材料 A.实验材料 1.家兔一只，称重 2.04kg 2.20%乌拉坦，利多卡因，氮气，二氧化碳，50g/L盐酸哌替啶，250g/L尼可刹 米 B.实验仪器 手术器械，Y型玻璃气管插管，呼吸流量换能器，生物信号采集处理系统 III.实验方法 A.实验器材准备与实验仪器调试。 B.以5ml/kg体重准备乌拉坦，耳缘静脉注射，缓慢注射，静推时观察家兔的结膜反 射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征。 C.待家兔完全麻醉，将其仰卧固定与手术台上，手术局部剪毛，于颈前正中切开皮肤 6-8cm直至下颌角上1.5-2cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉暴露气管。用 止血钳分离气管，在气管下穿根粗结扎线备用。 D.在环状软骨下约1cm处做一个倒T型的剪口，用棉签将气管切口及气管里的血液 和分泌物擦净，气管插口由剪口处向肺端插入。注意动作轻巧，避免损伤气管粘膜 引起出血。用粗结扎线将插管口结扎固定，用温热生理盐水纱布覆盖手术视野。 E.描计一段正常呼吸运动曲线作为对照，辨认曲线上呼气与吸气的波形方向。 F.把一只小烧杯倒置于气管插管开口上，将二氧化碳气囊的导管口平行与气管插管口， 使家兔吸入二氧化碳浓度较高的空气，观察记录呼吸曲线变化。家兔呼吸运动加强 后立即夹闭二氧化碳气囊导管，待呼吸恢复做下一步实验。 G.同上法，使家兔吸入高浓度氮气的空气，观察记录呼吸曲线变化，待呼吸恢复做下 一步实验。 H.在耳缘静脉缓慢注入50g/L盐酸哌替啶，注射时观察记录家兔呼吸曲线变化，一旦 出现呼吸幅度下降即停止给药，随即耳缘静脉缓慢注入250g/L尼可刹米，观察记 录家兔呼吸曲线变化。 I.整理实验器材，保存实验数据，关闭实验仪器。 IV.实验结果 A.通入高浓度二氧化碳的空气后家兔呼吸明显加深，频率加快

家兔呼吸运动调节

模拟实验一：家兔呼吸运动调节 目的和原理观察血液中化学因素(PCO2、PO2和[H+])改变对家兔呼吸运动的影响，初步探讨其作用部位，并分析机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用，初步探讨其机理。 呼吸运动之所以有节律地进行，并能随时适应机体代谢的需要，是由于机体内存在着完整的调节机制。体内外的各种直接或间接通过体内调节系统的作用而影响呼吸运动。 方法与步骤 （一）模拟装置及操作 1.呼吸运动调节模拟实验窗口（图24）。家兔：家兔颈部气管插管，一通气口用胶管 连接呼吸换能器，家兔呼吸运动用期腹部动画展现。 图24 呼吸运动调节模拟实验窗口 2.手术刀：鼠标点击手术刀并拖动至家兔颈部释放，启动气管插管录象，录象结束， 记录仪描记家兔气道压力变化曲线。 3.仿真二道记录仪：第一道记录家兔气道压力变化曲线，第二道记录实验项目标记。 仿真记录仪面板设灵敏度、位移、纸速，面板设数字显示框，分别显示记录仪第 一道灵敏度、气道压力、呼吸频率、实验项目。 4.注射器：鼠标器点击注射器极拖动至家兔耳部上方释放，向输入框输入药品剂量， 点击确定，药品从家兔耳缘静脉注入。呼吸运动因药物作用而发生变化，药品剂 量3%乳酸2ml 5.CO2气球、N2气球、胶管拖动至气管插管图气管插管开口长释放，呼吸运动发生

变化。 6.鼠标点击手术刀并拖动至家兔颈部神经解剖图的神经上方释放，可先后切断二侧迷 走神经，呼吸运动发生变化 7.测量按钮：按测量按钮，仿真记录仪显示所做实验项目的实验曲线，仿真记录仪面 板按钮变为图标按钮，有放大、缩小、压缩、扩展、定位图标按钮，分别可使仿 真记录仪内的实验曲线纵向放大或缩小，横向压缩或扩展，定位图标按钮可使所 选记录曲线处的位置移到仿真记录仪左边框。 8.测量状态：在测量状态下，鼠标器在仿真记录仪内移动，可对实验曲线进行测量， 并从仿真记录仪的面板数字显示框“压力”和“Time”中读出气道压力和呼吸周期 时间。在曲线上点击，可测量相对值。拖动仿真记录仪面板上的滚动条，可使实 验曲线左右滚动，显示前后实验滚动 9.窗口内容和可操作控件均有提示。窗口提示栏右设置“返回”按钮，鼠标点击“返 回”按钮，程序返回到模拟实验室窗口。 (二)观察项目 1.描记正常呼吸曲线：记录一段正常呼吸运动曲线作为对照。辨认曲线上吸气、呼气 的波形方向(注意：下列每一实验项目前必须先等待呼吸曲线恢复正常)。 2.观察缺O2对呼吸运动的影响：使用N2气囊，给动物吸入含有较高浓度N2气的空气 以造成部分缺O2，观察和记录呼吸运动的变化。 3.观察吸入气中CO2 含量增加对呼吸运动的影响：同上法用CO2气囊，使吸入的空气 中含有较多的CO2。观察与记录到呼吸运动。待呼吸恢复正常后再做下一步实验。 4.耳缘静脉缓慢注入2%乳酸溶液2ml，使血液中[H+]增加，观察血液酸碱度改变对呼 吸运动的影响。 5.观察迷走神经在呼吸运动调节中的作用：分别观察和记录切断一侧迷走神经和切断 两侧迷走神经以后呼吸运动的变化。 结果及分析 1.测量正常时，分别吸入CO2，纯N2 和注射乳酸溶液后家兔呼吸道气压力及呼吸频率 值并列表。 2.测量切断一侧迷走神经和切断两侧迷走神经以后家兔的吸气、呼气时间，吸气、呼 气幅度值。 3.比较分别吸入CO2，纯N2 和注射乳酸溶液，家兔呼吸运动的频率和幅度变化的差异， 分别说明它们各通过何种途径发挥作用。 对照实验结果，讨论切断迷走神经后家兔呼吸运动发生变化的机理。

家兔呼吸运动实验讨论

1、CO 2浓度增加使呼吸运动加强 CO 2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对呼吸有很强的刺激作用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。每当动脉血中PCO 2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。由于吸入气中CO 2浓度增加，血液中PCO 2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO 2浓度增多， CO 2十H 2O → ←H 2CO 3 HCO 3-＋ H + CO 2通过它产生的 H +刺激延髓化学感受 器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动加强，此外，当PCO 2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。 2、吸人纯氮气使呼吸运动增加 吸人纯氮气时，因吸人气中缺O 2，肺泡气PO 2下降，导致动脉血中PO 2下降，而PCO 2却基本不变（因CO 2扩散速度快）随着动脉血中PO 2的下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。 此外，缺O 2对呼吸中枢的直接效应是抑制并随缺O 2程度的加深而逐渐加强。所以缺O 2程度不同，其表现也不一样。在轻度缺O 2，通过颈动脉体等的外周化学感受器的传人冲动对呼吸中枢起兴奋作用大于缺O 2对呼吸中枢的直接抑制作用而表现为呼吸增强。 3、静脉注人乳酸（血液中H +增高） 静脉注人乳酸后，呼吸运动加深加快。因为乳酸改变了血液PH ，提高了血中H + 浓度。H +是化学感受器的有效刺激物H +可通过刺激外周化学感受器来调节呼吸运动，也可直接刺激中枢化学感受器，但因血中H +不容易透过血脑屏障直接作用于中枢化学感受器，因此，血中H +对中枢化学感受器的直接刺激作用不大，也较缓慢。 4、麻醉双侧动脉体后，再吸人CO 2和纯N 2时，对呼吸运动的影响不同 用普鲁卡因局部浸润麻醉家兔双侧颈动脉体后，开始吸人CO 2时仍可引起呼吸运动加深加快，而再吸人纯N 2时，呼吸运动基本不变。 当双侧颈动脉体被麻醉后，使外周化学感受器失去作用，外周的化学感受性反射消失。此时，再吸人CO 2时，使血中P CO 2增高，CO 2虽已不能通过外周化学感受器的颈动脉体反射性地加强呼吸运动，但仍可直接刺激中枢化学感受器，兴奋呼吸中枢，使呼吸运动加深加快，肺通气量增加；而吸人N 2后，血中PO 2

实验15 家兔呼吸运动的调节

实验 15 家兔呼吸运动的调节 【目的要求】 1.学习记录家兔呼吸运动的方法。 2.观察并分析肺牵张反射及不同因素对呼吸运动的影响。 【基本原理】 人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、有节律地进行，是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器，反射地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。 【动物与器材】 家兔、手术台、手术器械、张力传感器与滑轮或动物呼吸传感器、计算机采集系统、20ml与1ml注射器、橡皮管（长1.5m，内径1cm）、20％或25％氨基甲酸乙酯、生理盐水、装有CO2的气袋、装有钠石灰的气袋。 【方法与步骤】 急性动物实验时，记录呼吸运动的方法有三种，一种是通过压力传感器与气管插管连接记录；另一种是通过系在胸（或腹）部、装有张力或压力传感器的呼吸带记录；第三种是通过张力传感器记录膈肌运动。下面重点介绍第三种操作方法。 1. 动物麻醉、固定，进行颈部气管、动脉及神经的分离术，插入气管插管，分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经，穿线备用。 2.剑突软骨分离术 剪开胸骨下端剑突部位的皮肤，再沿腹白线切开长约2cm左右的切口。细心分离剑突表面的组织（勿伤及胸腔），暴露出剑突软骨和骨柄，用金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄，使剑突软骨与胸骨完全分离，但必须保留附于其下方的膈肌片，并使之完好无损。此时膈肌的运动可牵动剑突软骨。 3.将系有长线的金属钩钩住游离的剑突软骨中间部位，线的另一端通过万能滑 轮系于张力传感器的应变梁上。

4.开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼 吸曲线清楚地显示在显示器上。 5.实验观察 （1）记录呼吸运动曲线，仔细识别吸气或呼气运动与曲线方向的关系。 （2）增加无效腔对呼吸运动的影响 将长约1.5m，内径1cm的橡皮管连于气管插管的一个侧管上，然后用止血钳夹闭另一侧管，以增加无效腔。观察并记录呼吸运动曲线的改变。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。 （3）CO2对呼吸运动的影响 将气管插管的一个侧管接通装有CO2的气袋，同时夹闭另一侧管，使家兔对于CO2气袋呼吸，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。 （4）缺氧对呼吸运动的影响 将气管插管的一个侧管接通装有钠石灰的气袋，同时夹闭另一侧管，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。 （5）增加气道阻力对呼吸运动的影响 待呼吸运动恢复正常后，将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒钟，观察呼吸变化。

机能学实验家兔呼吸运动的调节

实验家兔呼吸运动的调节 【目的】 1、观察血液中化学因素（PCO 2、PO2、和〔H+〕）改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响，初步探讨其作用部位，并分析机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用，初步探讨其机制。 2、掌握气管插管术和神经血管分离术。 【材料和方法】 1、材料 家兔；手术台，手术器械；20ml和1ml注射器，橡皮胶管；装有CO2的气袋；生理盐水，氨基甲酸乙酯，乳酸；呼吸换能器，微机生物信号采集处理器系统 2、方法 2.1 实验系统连接及参数设置用胶管连接流量头与气管插管，流量头连接呼吸流量换能器。用胶管连接呼吸换能器测压口和气管插管，呼吸换能器输出线接微机生物信号处理系统。启动系统软件，在系统软件窗口设置仪器参数。 2.2手术准备 2.2.1麻醉固定家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。 2.2.2手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6～7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。分离气管，在气管下穿两根粗棉线备用。 2.2.3气管插管在环状软骨下约1cm处，做“⊥”形剪口，用纱布将气管切口及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管黏膜引起出血，用一粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。 2.3实验观察 2.3.1记录正常呼吸曲线启动生物信号采集处理系统记录按钮，记录一段正常呼吸运动曲线作为对照。辨认曲线上吸气、呼气的波形方向（呼气曲线向上，吸气曲线向下）。 2.3.2增加无效腔在气管插管一个测管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），以增加无效腔。观察和记录呼吸运动曲线的变化。一旦出现明显变化，则立即去除胶管。 2.3.3增加吸入气中二氧化碳分压待呼吸曲线恢复正常，将气管插管的一个测管接通装有CO2的气袋，使家兔对于CO2气袋呼吸，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即去除有CO2的气袋。 2.3.4增加血液中〔H+〕待呼吸恢复正常，耳缘静脉缓慢注入20g/L乳酸溶液2ml，观察和记录呼吸运动的变化。 2.3.5切断迷走神经分别观察切断一侧迷走神经和切断两侧迷走神经以后呼吸运动的变化。观察呼吸频率和幅度。 2.3.6电刺激迷走神经以2V,5HZ频率的连续电脉冲持续20s刺激右迷走神经中枢端。观察和记录呼吸运动曲线的变化。

家兔呼吸运动的调节解读

实验十家兔呼吸运动的调节 一、实验目的 1. 学习测定兔呼吸运动的方法。 2. 学习记录膈肌放电的方法。 3. 观察并分析肺牵张反射以及影响呼吸运动的各种因素。 二、实验动物与器材 动物：家兔。 仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管。 试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水。 三、方法与步骤 1. 麻醉→背位固定→剪去颈部与剑突腹面的被毛→切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管→分离出双侧迷走神经，穿线备用。 2. 剑突软骨分离术 切开胸骨下端剑突部位的皮肤，并沿腹白线再切开长约2cm的切口。细心分离剑突表面的组织，并暴露剑突软骨与骨柄。提起剑突，可见剑突随膈肌的收缩而自由运动。 3. 将系有剑突的金属钩钩于剑突中间部位，线的另一端系于张力传感器的应变梁上。 4. 开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上。 5. 记录膈肌放电. 6、观察项目 1）记录正常的呼吸运动、膈肌放电曲线，注意分清呼气和吸气运动与曲线的方向。 （2）增加无效腔对呼吸运动的影响 将长约0.5m、内径1cm的橡皮管连于气管插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧管，使无效腔增加，观察并记录呼吸运动的改变，一旦出现明显变化，

则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。 （3）增加气道阻力对呼吸运动的影响：将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒，观察呼吸变化。 (4)肺牵张反射 在气管插管的一个侧管上，连通一个20ml注射器，并吸入20ml空气。待呼吸运动平稳后，在吸气末用相当正常呼吸时三个呼吸节律的时间，徐徐向肺内注入20ml空气，同时夹闭气管插管的另一侧管。注意观察呼吸节律的变化及呼吸运动的状态。实验后立即打开夹闭的侧管，待呼吸恢复正常。同法，与呼气末用注射器抽取肺内气体，观察呼吸的状态有何变化。 （5）待呼吸运动恢复正常后，同时结扎颈部双侧迷走神经，观察并记录呼吸运动的变化。 （6）剪断双侧迷走神经，分别刺激迷走神经中枢端与外周端，观察并记录呼吸运动。 四、注意事项 1.分离剑突表面的组织时勿伤及胸腔。 2.肺牵张反射时注意，注气与抽气时间仅限于三个呼吸节律的时间，然后立即打开夹闭的侧管。 3.结扎双侧迷走神经时，要二人同时操作，第一结一定要紧、狠，务必阻断神经冲动的传导。 4.打标记。

家兔呼吸运动的调节

家兔呼吸运动的调节 Prepared on 22 November 2020

实验报告 姓名专业年级组别年月日题目家兔呼吸运动的调节成绩 一、实验目的 研究药物对家兔呼吸运动的影响，并分析内在机制。 二、实验原理 呼吸是指机体与外界环境之间的气体交换过程。是在中枢神经的调节下，呼吸中枢节律活动的反应。血液中的PaO2、PaO2和[H+]的变化又可以通过中枢化学感受器和（或）外周化学感受器反射性地调节呼吸运动，从而维持内环境中PaO2、PaO2和[H+]的相对稳定。 三、仪器药品 生物医学信号采集处理系统、张力换能器、刺激电极、气管插管、二氧化碳发生器、兔手术器械1套、橡皮管、20%乌拉坦、生理盐水、3% 乳酸、碳酸钙、稀盐酸 四、实验步骤 一、麻醉、固定：家兔称重，耳缘静脉注射20％乌拉坦（5ml/kg），麻醉后将动物仰卧固定于兔手术台上； 二、颈部手术，气管插管：做颈部切口，逐层分离皮肤、皮下组织、肌肉（钝性分离），暴露气管，分离气管，穿线备用，甲状软骨下1cm处用手术剪呈倒“T”字形剪开气管，插入气管插管，固定。分别分离两侧迷走神经，穿线备用； 三、连接张力传感器：找到剑突位置，并将附近的毛减掉，用事先穿线备用的小夹子夹住剑突位置，线的另一端连在张力传感器上，连接pclab-UE生物信号采集处理系统，调节线的松紧度，描记正常呼吸曲线； 四、观察：正常呼吸运动，缺氧对呼吸运动的影响，切断一侧迷走神经对呼吸运动的影响，吸入气中CO2浓度增加对呼吸运动的影响，血中[H+]增多对呼吸运动的影响，增大无效腔对呼吸运动的影响； 五、实验结果

增加无效腔 乳酸 二氧化碳

家兔呼吸运动调节__病理生理学机能实验

《家兔呼吸运动调节》实验讨论 (2009-05-11 19:55:49) 转载▼ 标签： 校园 分类：医药类 1、CO2浓度增加使呼吸运动加强 CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对呼吸有很强的刺激作用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。由于吸入气中CO2浓度增加，血液中PCO2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多，CO2十H2O→ ←H2CO3 HCO3- ＋H+ CO2通过它产生的H+刺激延髓化学感受器，间接作 用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动加强，此外，当PCO2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。 2、吸人纯氮气使呼吸运动增加 吸人纯氮气时，因吸人气中缺O2，肺泡气PO2下降，导致动脉血中PO2下降，而PCO2却基本不变（因CO2扩散速度快）随着动脉血中PO2的下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。

此外，缺O2对呼吸中枢的直接效应是抑制并随缺O2程度的加深而逐渐加强。所以缺O2程度不同，其表现也不一样。在轻度缺O2，通过颈动脉体等的外周化学感受器的传人冲动对呼吸中枢起兴奋作用大于缺O2对呼吸中枢的直接抑制作用而表现为呼吸增强。 3、静脉注人乳酸（血液中H+增高） 静脉注人乳酸后，呼吸运动加深加快。因为乳酸改变了血液PH，提高了血中H+浓度。H+是化学感受器的有效刺激物H+可通过刺激外周化学感受器来调节呼吸运动，也可直接刺激中枢化学感受器，但因血中H+不容易透过血脑屏障直接作用于中枢化学感受器，因此，血中H+对中枢化学感受器的直接刺激作用不大，也较缓慢。 4、麻醉双侧动脉体后，再吸人CO2和纯N2时，对呼吸运动的影响不同 用普鲁卡因局部浸润麻醉家兔双侧颈动脉体后，开始吸人CO2时仍可引起呼吸运动加深加快，而再吸人纯N2时，呼吸运动基本不变。 当双侧颈动脉体被麻醉后，使外周化学感受器失去作用，外周的化学感受性反射消失。此时，再吸人CO2时，使血中P CO2增高，CO2虽已不能通过外周化学感受器的颈动脉体反射性地加强呼吸运动，但仍可直接刺激中枢化学感受器，兴奋呼吸中枢，使呼吸运动加深加快，肺通气量增加；而吸人N2后，血中PO2虽然下降但因双侧颈动脉体被麻醉，外周化学感受器已失去感受功能，而缺O2对呼吸中枢的直接作用以是抑制作用。所以，不会再出现反射性地引起呼吸运动加强的变化。

家兔呼吸运动调节解读

家兔呼吸运动的调节 实验目的： 1.用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧 化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[H+]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。 2.掌握气管插管术和神经血管分离术。 实验材料： 对象：家兔； 试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯； 仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。 实验方法： 1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。 2．手术：剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一“⊥”形切口。将T型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。 3．观察准备：用皮管连接气管插管和呼吸换能器。打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。 4．观察项目 （1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。 （2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。 （3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。关闭气袋，观察呼吸运动的恢复过程。 （4）增加血液中H+浓度：由耳缘静脉迅速注入20g/L乳酸溶液2mL，记录并观察呼吸运动的变化。 （5）观察迷走神经在调节呼吸运动中的作用：剪断左侧迷走神经，记录并观察呼吸运动的变化。然后剪断右侧迷走神经，记录并观察呼吸运动的变化。 （6）以2V、25Hz，持续10s，波宽2ms的串刺激刺激右侧迷走神经中枢端，记录并观察呼吸运动的变化。 实验结果：1.本组呼吸图（见第一份实验报告）

家兔呼吸运动的调节

华南师范大学实验报告学生姓名：谭晓东学号：20102501024 专业：生物科学年级、班级：10科四 课程名称：动物生理学实验实验项目：家兔呼吸运动调节实验类型：验证实验时间：2013年5月7日实验指导老师：黄俊柅实验评分： 1. 实验目的 1.1学习测定兔呼吸运动的方法。 1.2学习记录膈肌放电的方法。 1.3观察并分析肺牵张反射以及影响呼吸运动的各种因素。 2.实验原理 呼吸运动是呼吸肌的舒缩运动，是呼吸肌（胸壁上的肋间肌和隔肌）在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。膈肌的收缩活动受来自中枢的传出神经支配，传出冲动的节律与频率，影响膈肌的收缩节律、频率与强度. 人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。 3. 实验材料 3.1.实验对象：家兔 3.2.实验器材：兔手术台、常规手术器械、金冠剪、手术剪、手术刀、眼科镊、眼科剪、玻璃分针、棉花、纱布、棉线、小弯钩、烧杯、污物缸、塑料绳、长塑料管、棉签、20ml 注射器、5ml注射器、1ml注射器、照明灯、保护电极、滑轮、支架、PowerLab生理实验系统、气管插管、张力传器感 3.3.实验试剂：麻醉剂（2%戊巴比妥钠 2ml/Kg ）、生理盐水、50mg/ml尼可刹米注射液 4. 实验步骤 4.1. 家兔麻醉固定：称重，耳缘静脉注射麻药，固定、剪颈部皮毛和胸部剑突位置皮毛。 4.2. 颈部气管及神经分离手术：钝性分离颈部肌肉等组织，暴露气管、穿线、手术刀手术剪T形切口，事先准备好的棉签将气管中的血块弄出，插好气管插管并结扎。分离双侧迷走神经，分别穿2线备用。 4.3. 剑突软骨分离手术：切开剑突位置皮肤约2cm，细心分离剑突软骨周边组织，暴露剑突软骨，剪断骨柄，保留骨柄下方膈肌与剑突相连。 4.4. 连接实验装置：连接好PowerLab实验装置，用棉线上的小弯钩勾住剑突，通过滑轮与张力换能器连接，调节好力度大小，设置调节通道2桥式放大器（5mV，10Hz）和刺激器（100脉冲，1V，1mS，40Hz）。

家兔呼吸运动的调节

家兔呼吸运动的调节 骆张洁、朱秀妮、王娅雯 摘要:目的探究二氧化碳、氮气、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔、切断迷走神经等因素对家兔呼吸运动的影响。方法: 用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。结果 : CO2 、N2、增大解剖无效腔、静脉注射乳酸使呼吸加深加快；切断一侧迷走神经，呼吸频率降低，切断两侧出现呼吸暂停（深慢），电刺激中枢端后呼吸可使呼 吸浅快。结论: 增大无效腔、增加 CO浓度、静脉注射乳酸溶液呼吸加深加快；切断迷走 2 神经呼吸加深变慢；电刺激迷走神经中枢端呼吸变浅加快。 关键词：增大无效腔；CO2、N2、乳酸溶液、切断迷走神经 Spontaneous breathing exercises the adjustment By Luozhangjie, ZhuXiuNi, WangYaWen pair Abstract: objective explore carbon dioxide, nitrogen, intravenous lactic acid solution and increase the anatomical invalid cavity, cut off the vagus nerve breathing movement factors such as the impact of rabbit. Methods: use tracheal intubation was breathing flow indirectly reflect spontaneous breathing exercises (breathing frequency, rhythm, amplitude) method, the inhalation carbon dioxide, intravenous lactic acid solution and increase the anatomical invalid cavity, cut off the vagus nerve, electrical stimulation cervical vagus nerve center of the influence of the breathing movement and discusses its role site, and analysis mechanism. Results: the CO2 and N2 and increase the anatomical invalid cavity, intravenous lactic acid makes breathing deepen accelerated; Cut off the side the vagus nerve, reduce the frequency of breathing, cut off both sides appear apnea (deep slow), electrical stimulation central terminal can make breathing after breathing shallow fast. Conclusion: increase invalid cavity, increasing concentration, intravenous lactic acid solution breathing deepen accelerated; Cut the vagus nerve breathing deepen slow; Electrical stimulation to the vagus nerve center becomes shallow breathing quickened. Keywords: increase invalid cavity; CO2 and N2, lactic acid solution, cut off the vagus nerve 呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。在不同的生理状态下，呼吸运动所发生的适应 性变化有赖于神经系统的反射性调节，期中较为重要的有呼吸中枢、肺牵张反射以及中枢、外周化学感受器的反射性调节。因此，体内外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。、