缺氧的类型及影响缺氧耐受性的因素试验的讨论问题1.
缺氧的类型及影响缺氧耐受性的因素试验的讨论问题
小组成员：
1、请给出本实验的五个关键词
缺氧氯丙嗪总耗氧率 CO 亚硝酸盐美兰存活时间
2、请指出临床上常用的血氧指标及其意义
①血氧分压PO2：又称血氧张力，血液中物理溶解的氧越多，血氧分压越高。动脉血氧分压取决于吸入气体的氧分压和外呼吸的功能状态，正常约为100mmHg；静脉血氧分压反映内呼吸状态，正常约为40mmHg。
②血氧容量CO2max：100ml血液中的血红蛋白完全氧合后的最大带氧量，取决于血液中血红蛋白的量及其与氧结合的能力。
③血氧含量CO2：100ml血液中实际含有的氧量，包括物理溶解的和与Hb结合的氧量。正常动脉血氧含量约为19ml/dl，静脉血氧含量为14ml/dl，动静脉血氧含量差约为5ml/dl（反映组织从单位容积血液内摄取氧的多少）。
④血氧饱和度SO2：Hb结合氧的百分数，约等于血氧含量/血氧容量。正常动脉血氧饱和度为95%~98%，静脉血氧饱和度为70%~75%。
⑤氧解离曲线：PO2与SO2之间的关系曲线，S型。血氧饱和度变小，氧解离曲线右移。
⑥P50：血氧饱和度为50%时的血氧分压，反映Hb与氧的亲和力。
3、影响机体缺氧耐受性的因素有哪些？
年龄、身体机能和代谢状态、营养、锻炼等都是影响机体缺氧耐受性的因素。总的来说就是耗氧过大（供氧不足）及用氧障碍两点。
4、请简要归纳缺氧时机体功能代谢的变化。
急性缺氧由于机体来不及代偿而较易发生功能代谢障碍，慢性缺氧时通常既有代偿性反应又有损伤性反应。
呼吸系统主要是代偿性肺通气量增加；循环系统主要是心排出量增加、血流重新分布、肺血管收缩和毛细血管增生；血液系统主要是红细胞增多、向组织释氧能力增强；神经系统会出现意识模糊甚至丧失；细胞、组织主要是对氧的摄取和利用能力增强
5、缺氧可以分为哪几种类型？
血液性缺氧、低张性缺氧、循环性缺氧、组织性缺氧。
6、低张性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？
原因：吸入气氧分压过低、外呼吸功能障碍、静脉血分流。
发病机制：动脉血氧分压和血氧含量过低，血液中脱氧血红蛋白浓度增高，出现发绀症状。
动脉血氧分压、血氧含量及氧饱和度均降低。
7、血液性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？举例？
原因：血红蛋白含量减少或性质改变
发病机制：血红蛋白数量减少，血氧容量和血氧含量降低，毛细血管床中的平均血氧分压较低，血氧不易时放入组织。
血氧含量和血氧容量降低，血氧饱和度正常，动静脉血氧含量差减小。
8、循环性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？
原因：全身性或局部性血液循环障碍
发病机制：组织血流量减少引起组织供氧不足。
动静脉血氧含量差增大。
9、组织性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？
原因：线粒体结构和功能障碍
发病机制：线粒体结构和功能障碍导致ATP生成减少，携氧、供氧能力下降。
动静脉血氧含量差减小。
10、临床上常见的失血性休克，心力衰竭属于哪种类型的缺氧？
均属于循环性缺氧，为缺血性缺氧。
11、实验分组是动物实验设计的一个重要部分，本实验应该如何对实验动物进行分组？
根据不同的研究目的，分别设置实验组和对照组。对小鼠编号标记可以使用化学药品涂染法。
①、研究中枢神经系统机能状况、体温对缺氧耐受性的影响时，取性别相同、体重相近的小鼠20只随机分成生理盐水组、氯丙嗪加冰浴组，每组10只小鼠。
②、研究CO中毒（血液性缺氧）皮肤黏膜颜色变化时，取性别相同、体重相近的小鼠20只随机分成CO组、对照组，每组10只小鼠。
③、研究亚硝酸钠中毒（血液性缺氧）皮肤黏膜颜色变化时，取性别相同、体重相近的小鼠20只随机分成亚硝酸钠加生理盐水组、亚硝酸钠加亚甲蓝组，每组10只小鼠。
12、实验动物的分组原则是什么？
①、随机分配。使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组与对照组中去，以避免各组之间的差别,影响实验结果。
②、建立对照组
13、本实验最少有效样本数据数？
10
14、每组安排多少实验动物才能满足统计学分析的要求？
数据是计量资料，统计方法为t检验，每组安排至少10只小鼠。
15、如何用目视法测小鼠的呼吸频率？该法有何缺陷？
观察小鼠呼吸时腹部的起伏。观察时容易受到小鼠活动的影响，且正常小鼠的呼吸频率163（84～230）次/分，计数时容易弄错。
16、如何改进小鼠呼吸频率的测定方法？
如图，使用内径细长的移液管，观察液面的升降，一次升降即小鼠的一次呼吸。
图1
17、处死小鼠方法？
【实验教程p165】
脊椎脱臼法：右手抓住鼠尾用力后拉，同时左手拇指与食指用力向下按住鼠颈，将脊髓与脑髓拉断，鼠立即死亡。
断头法：在鼠颈部用剪刀将鼠头剪掉，鼠因断头和大出血而死。
打击法：用手抓住鼠尾并提起，将其头部猛击桌角，或用小木槌用力敲击鼠头，使鼠致死。
18、复制动物低张性缺氧模型的实验方法有哪些？
①将动物放置于密闭的容器内，使其吸入气中的氧分压逐步降低。
19、缺氧瓶内放置钠石灰的目的是什么？这对缺氧机制的分析有何意义？
吸收CO2。意义：防止酸中毒，排除干扰因素。
20、低张性缺氧时，动物的皮肤黏膜、血液和肝脏呈现何种颜色？为什么？
皮肤黏膜、肝脏呈现青紫色，血液呈蓝紫色。低张性缺氧为乏氧性缺氧，即供氧不足引起，血氧含量、血氧分压及氧饱和度均降低，血液中氧含量不足，呈现青紫色。
21、复制动物血液型缺氧模型的实验方法有哪些？其原理是什么？
①CO中毒：一氧化碳和血红蛋白结合形成碳氧血红蛋白。一氧化碳（CO）与血红蛋白的亲和力比氧与血红蛋白的亲和力高210倍．当吸入气中含有0.1%的CO 时，血液中的血红蛋白可能有50%为碳氧血红蛋白（HbCO）。HbCO不能与O2结合，同时还可抑制红细胞的糖酵解。使2,3-二磷酸甘油酸（2,3-DPG）生成减少，氧离曲线左移，HbO2中的O2不易释放，从而加重组织缺氧。当血液中的HbCO增至50％时，动物可迅速出现痉挛、呼吸困难、昏迷，甚至死亡。此时，动物的动脉血含过多的HbCO，其皮肤、黏膜呈HbCO的樱桃红。
②高铁血红蛋白血症，亚硝酸钠（NaNO2）中毒：亚硝酸盐可使血红素中二价铁氧化成三价铁，形成高铁血红蛋白 (HbFe3＋OH，导致高铁血红蛋白血症。高铁血红蛋白中的三价铁因与羟基结合牢固，失去结合氧的能力，或者血红蛋白分子中的四个二价铁中有部分氧化成三价铁，剩余的二价铁虽能结合氧，但不易解离，导致氧离曲线左移，使组织缺氧。低浓度美兰为还原剂，可抑制氧化剂的中毒反应。亚硝酸盐等氧化剂中毒时，如高铁血红蛋白含量超过血红蛋白总量的10%，就可出现缺氧表现，当血液中HbFe3＋OH达到15g/L，皮肤、黏膜可出现青紫颜色。达到30%~50%，则发生严重缺氧。
22、耗氧量如何测量？耗氧率如何计算？
耗氧量：如图1所示的缺氧瓶、移液管及量筒内的水构成一闭合空间。小鼠在缺氧瓶中不断消耗氧气，其产生的CO2被钠石灰吸收，瓶内气压逐渐降低而产生负压，移液管内因瓶内负压而上升，而量筒内的液面却下降，量筒内液面下降的毫升数即为小鼠的耗氧量。鼠死后从量筒上读出液面下降的毫升数，即为小鼠的总耗氧量。
23、本实验的耗氧量测定方法存在什么不足？对耗氧量和小鼠耐缺氧时间的测定有何影响？
移液管内液体产生的压力会对瓶内气压造成影响，耗氧量和小鼠耐缺氧时间均会减少。
24、氯丙嗪的药理作用机制是什么？应用：低温麻醉！人工冬眠！
氯丙嗪为中枢多巴胺受体的阻断剂，具有抗精神病、镇吐等作用。它能阻断外周α-肾上腺素受体，抑制体温调节中枢，使得体温调节失灵，出现镇静、嗜睡等情况，增强缺氧耐受性。
25、低温和抑制中枢神经系统功能，对缺氧耐受性有何影响？对临床治疗有何指导意义？
减弱生理代谢，减少耗氧量，所以会增强缺氧耐受性。
指导意义：缺氧耐受性差的病人使其处于低温状态中，并适当抑制中枢神经系统功能锻炼其缺氧耐受性。
26、动物CO中毒的机制是什么？CO中毒动物的皮肤黏膜、血液和肝脏呈何种颜色？为什么？
CO中毒是含碳物质燃烧不完全时的产物经呼吸道吸入引起中毒。中毒机理是CO 与血红蛋白的亲合力比氧与血红蛋白的亲合力高200～300倍，所以CO极易与血红蛋白结合，形成碳氧血红蛋白，使血红蛋白丧失携氧的能力和作用，造成组织窒息。
中毒后皮肤黏膜与肝脏呈现樱桃红色，因为CO中毒者的动脉血氧分压不降低。
27、动物亚硝酸钠中毒的机制是什么？亚硝酸钠中毒动物的皮肤黏膜、血液和肝脏呈何种颜色？为什么？
中毒的机制是亚硝酸盐将血红蛋白的二价铁氧化为三价铁，使血红蛋白成为高铁血红蛋白，失去携带氧的能力，造成机体缺氧。
中毒后皮肤黏膜、肝脏呈现青石板颜色，静脉血呈现蓝紫色。因为动脉血氧分压正常，血红蛋白不结合氧，血氧含量降低，血液失去红色。
28、美兰腹腔注射可解救亚硝酸钠中毒小鼠的机制是什么？
美兰是亚硝酸钠盐中毒的特效解毒剂，能还原高铁血红蛋白，回复正常输氧功能。
29、各种类型缺氧的小鼠是否均可以出现发绀？
低张性缺氧皮肤黏膜呈现紫绀；循环性缺氧皮肤黏膜呈现苍白发绀；
血液性缺氧皮肤黏膜呈现苍白、咖啡色、樱桃红色；组织性缺氧皮肤黏膜则呈现鲜红色。
30、本实验采用何种实验设计方法？
完全随即化设计。将每个研究对象随机地分配到对照组和各水平组（处理组）。该设计的优点是设计和处理比较简单，分组时可以用抽签法，也可以用随机数字表来解决。
31、本实验有哪些非处理因素？如何控制非处理因素？
室温、湿度；小鼠性别、年龄、体重、代谢状况、活动性；注射药物的量、钠石灰的量，装置的密闭性。
控制实验在同一地点、尽可能短的时间完成；小鼠的性别控制为相同，年龄、体重、代谢状况、活动性控制为相似，注射药物的量根据每只小鼠的体重而定；实验装置保持完全密封，放入相同质量的钠石灰。
32.本实验的观察指标有哪些？
①小鼠的活动情况，耳、尾、口唇的颜色
②小鼠的总耗氧量
③呼吸频率（次/10s）、深度
④皮肤、肝、肺、血液颜色
⑤存活时间
33.本实验的结果数据采用哪些统计描述指标？
小鼠存活时间及耗氧率以X ±S表示。（均数和方差）
34本实验的结果数据的显著性检验采用哪种统计方法？
小鼠存活时间及耗氧率用student’s t-test方法，小鼠存活率用百分率表示，统计学分析采用Chi-square test（卡方检验）。
35.为什么不直接比较实验组和对照组的耗氧量来比较对缺氧的耐受性？
缺氧耐受性的观测指标是小鼠在缺氧情况下的死亡时间，缺氧耐受性好的死亡时间延长，密闭的空间内，耗氧量无法体现死亡时间，且受到小鼠体量的影响，用耗氧率来描述缺氧耐受性才是恰当的。
36为何不能只凭实验组和对照组的存活时间和耗氧率的均数差异来得出缺氧耐受性改变的结论？应该作何统计处理？
实验是完全随机化设计，仅凭均数差异不能排除抽样误差。应该对实验结果进行t 检验。
37.如果让你来设计“影响缺氧耐受性因素”的实验研究，你会如何设计？
影响缺氧耐受性因素有很多，如年龄、机体的代谢、功能状况以及锻炼适应等。选择某一因素，进行完全随机设计。例如，研究年龄对缺氧耐受性的影响时，取性别相同，体重，年龄相近的年轻小鼠10只为一组，另取性别相同，体重，年龄相近的年老小鼠10只为一组。将2组鼠分别放入100ml的广口瓶内，按图1连接测耗氧装置。
从密闭测耗氧装置开始计时至鼠死亡，记录小鼠存活时间，用测耗氧装置测定总耗氧量（A）。根据总耗氧量A（ml），存活时间T（min），鼠体量W（g）三项指标，求出总耗氧率R（ml/g/min）：
R(ml/g/min=A(ml÷W(g÷T(min
列各项指标的原始数据表并进行统计处理，数据以`x±S表示，对实验组和对照组的T、R作t检验。
38.如果让你来设计“缺氧模型”，你会如何设计？
低张性缺氧：动物置于密闭容器中，氧分压逐渐降低。
血液性缺氧：CO中毒、亚硝酸盐中毒。
循环性缺氧：血管阻塞或受压。（大鼠大脑中动脉栓塞模型、小鼠双侧经总动脉结扎模型、大鼠双侧颈总动脉和椎动脉烧灼模型。）
组织中毒性缺氧：氰化物中毒。
黄色底的是不确定的，红色字体的是老师上课提问过的。不过老师可能另外选题目问。
病理生理学实验性缺氧
病理生理学实验报告 实验题目：实验性缺氧 实验目的：① 复制低张性缺氧、血液性缺氧的动物模型，观察不同类型缺氧过程中实验动物一般状况、呼吸、唇尾颜色及死亡时间等机体功能变化。 ② 加深对缺氧分类和缺氧机制以及不同类型缺氧特点的理解。 ③ 了解常见类型缺氧的解救办法。 实验步骤：一、低张性缺氧 成年小白鼠 3 只，新生鼠一只分别标号1~4，做以下处理： 1 号鼠腹腔注射一定量0.1ml/10g 乌拉坦。 2 号鼠腹腔注射等量0.05ml/10g/ 可拉明。 3、 4 号不做任何处理。 2、上述处理之后将1~4 号老鼠同时放入等容积的广口瓶中，并盖好瓶塞，同时 用导管把四个广口瓶连通。 3、观察计时，并五分钟观察记录一次。直至成年鼠全部死亡。 4、解剖死亡小鼠尸体，并观察记录其肝脏颜色。 二、等张性缺氧 1、一氧化碳中毒性缺氧 ① 将装有小白鼠的广口瓶与一氧化碳发生装置连接。 ② 用吸管吸取适量甲酸加入试管中，再吸取适量的浓硫酸加入试管中，塞紧瓶 塞，并加热。仔细观察小鼠的变化并记录。 ③ 待小鼠死亡后，取出小鼠，并解剖小鼠尸体，观察记录其肝脏颜色。 1、亚硝酸钠中毒性缺氧 ①取成年健康小白鼠一只，观察其正常表现后，向腹腔注射适量 0.3ml/20g 亚硝酸钠。 ②观察并记录小鼠的表现，待其死亡后，解剖小鼠尸体，观察并记录 其肝脏颜色。 实验结果：一、低张性缺氧 (1) 一般状况唇尾颜色呼吸频率存活时间肝脏颜色 次 /min 乌拉坦活泼发绀9868min52s鲜红 可拉明活泼发紫9816min40s深暗红色 成年空白活泼发紫9857min54s暗红色 新生空白活泼存活 Co 中毒活泼苍白色982min39s樱桃红 亚硝酸钠活泼青紫996min45s咖啡色 (2)成年空白鼠实验过程中呼吸频率的变化：
家兔缺氧实验报告doc
家兔缺氧实验报告 篇一：家兔解剖实验 一、实验目的 1. 通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点 2. 掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征 3. 熟练解剖动物的方法 二、实验原理 将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。 三、实验器材 活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等 四、实验步骤 1、外形观察，处死 家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。肛门两侧各有一个无毛区，提
起此处皮肤，开口，打开皮肤。 取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。挣扎一会后死亡。 2、打开皮肤 润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。 3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切 从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。先观察各器官的自然位置。可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。 小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。十二指肠呈“ U ”形，空肠和回肠界限不易区分。 大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。 膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝 肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，
病生实验 水肿和缺氧
家兔实验性肺水肿 1 材料和方法 1.1材料：家兔，婴儿称，天平称，点滴输液装置，颈部小手术器械，听診器，生理盐水，手术台，肾上腺素，注射器若干支。 1.2研究方法： （1）称重，固定手术台上。 （2）用头皮针穿插耳缘静脉并固定，打开静脉输液装置，注意排除管道内气体。（3）用听诊器听肺部的正常呼吸音，然后输入37摄氏度生理盐水（按150ml/kg,输液速度为150~180滴/分） （4）待滴注接近完毕时立即向输液瓶中加入肾上腺素生理盐水（按肾上腺素0.45mg/kg）继续输入。肾上腺素输完后可酌加少量生理盐水，以10~15滴/分速度维持通道，必要时第2次用药。 （5）输液过程中应密切观察呼吸是否急促困难，口鼻是否有分红色泡沫液体流出，并用听诊器听诊肺部有无湿罗音出现。若上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素，用法及剂量同上，直至出现明显的肺水肿表现。 （6）死亡动物记录死亡时间，存活动物造病后30min则夹住气管，放血处死。（7）所有动物均打开胸腔，用线在气管分叉处结扎以防止肺水肿液渗出，在结扎处以上切断气管，小心将心脏及其血管分离（勿伤及肺），把肺取出，用滤纸吸去肺表面的水份后称重计算肺系数＝肺重量（g）/体重（kg）后（正常肺系数约为4-5），肉眼观察肺大体改变，并切开肺，观察切面的改变。 注意事项 1．输液速度不要太快或太慢，以控制在150~180滴/分为宜。 2．解剖取肺时，注意勿损伤肺表面和挤压肺组织，以防止水肿液流出，影响肺系数值。 2 结果联系肺水肿发生机制对结果作出分析
3讨论 1)本实验中为什么要大量快速输液？ 2)输入肾上腺素导致肺水肿的机制是什么？ 3)实验中为什么会出现粉红色泡沫痰？ 4)输入肾上腺素为何会出现呼吸抑制甚至暂停？ 5)本实验中如果输液过快过多对实验结果有何影响？ 6)若实验失败，分析原因何在？ 小鼠乏氧性和血液性缺氧 材料与方法： 1. 实验动物：成年小白鼠，新生小鼠 2. 仪器与试剂：小白鼠缺氧瓶、CO发生装置、500ml广口瓶、剪刀、1ml注射器、手术刀、吸管、镊子、酒精灯、天平等 3. 药品：钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%亚硝酸钠 4. 方法 4.1乏氧性缺氧 （1）取2只正常成年小白鼠，称重后分别腹腔注射10%乌拉坦0.1ml/10g和10% 可拉明0.1ml/10g。 （2）另取1只正常成年小白鼠和1只新生小白鼠连同上述2只处理过的成年小白鼠分别放入四只盛有钠石灰的广口瓶内，用活塞塞紧瓶口，开始计时，以后每3min重复观察并记录小白鼠的一般状况、呼吸、皮肤口唇颜色（观察呼吸频率时应在小白鼠安静时迅速观察，记录10秒钟内腹部的起伏次数），直至死亡。记
呼吸运动调节实验报告
创作编号：BG7531400019813488897SX 创作者：别如克* 家兔呼吸运动的调节实验 [目的要求] 1学习记录家兔呼吸运动的方法。 2 观察并分析肺牵张反射及不同因素对呼吸运动的影响。 [基本原理] 人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。 [动物与器材] 家兔、兔体手术台，手术器械、张力传感与滑轮或动物呼吸传感器、生物机能实验系统、20ml与50ml注射器、橡皮管、20%或25%氨基甲酸乙酯、生理盐水、0.5%KCN 装有CO2的气袋、装有纳石灰的气袋。 [方法与步骤] 急性动物实验时，记录呼吸运动的方法有三种，一种是通过压力传感器与气管插管连接记录；另一种是通过系在胸（或腹）部、装有压力传感器的呼吸带记录；第三种是通过张力传感器记录隔肌运动。 先将动物麻醉、固定、进行颈部气管、动脉及神经分离术，插入气管插管，分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经，穿线备用。 1、剑突软骨分离术 切开胸骨下端剑突部位的皮肤，再沿腹白线切开长约2ml的切口。细心分离表面的组织（勿伤及胸骨），暴露出剑突与骨柄，用金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄，使剑突软骨于胸骨完全分离，但必须保留附于其下方的隔肌片，并使之完好无损。此时隔肌的运动可牵动剑突软骨。
2、将系有长线的金属钩钩住游离的剑突软骨中间部位，线的另一端通过万能滑轮系于张力传感器的应变梁上。 3、开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上。 4、实验观察 （1）记录呼吸运动曲线，并仔细识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。 （2）增加无效腔对呼吸运动的影响 将长约1.5m、内径1cm的橡皮管连与气管的一个侧管上，然后用止血钳夹闭另一侧管，以增加无效腔。观察并记录呼吸运动曲线的改变。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管待呼吸正常。 （3）CO2对呼吸的影响 将气管插管的一个侧管接通装有CO2的气袋，同时夹闭另一侧管，使家兔对着CO2气袋呼吸，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除CO2气袋，待呼吸恢复正常。 （4）缺氧对呼吸运动的影响将气管插管的一个侧管接通装有纳石灰的气袋，同时夹闭另一侧管，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除气袋，待呼吸恢复正常。 （5）增加气道阻力对呼吸运动的影响 待呼吸运动恢复正常后，将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒钟，观察呼吸变化。 （6）KCN对呼吸运动的影响 由耳缘静脉注射1mlKCN溶液，观察并记录呼吸运动的变化。 （7）肺牵帐反射 待呼吸恢复正常后，在气管插管的一个侧管上连同一个20ml注射器，并吸入20ml空气。待呼吸运动平稳后，用相当正常呼吸时的三个呼吸节律的时间，徐徐向肺内注入20ml，与此同时夹闭另一侧管。注意观察呼吸节律的变化及运动的状态。实验后立即打开夹闭的侧管，待呼吸恢复正常。同法，于呼气末用注射器抽取肺内气体，观察呼吸的状态有何区别（注意：注气与抽气时间仅限于三个呼吸节律的时间，然后立即打开夹闭的侧管）。 （8）待呼吸运动恢复正常后，同时结扎双侧迷走神经（二人同时操作，第一结一定
缺氧类型及影响缺氧耐受性的因素
缺氧类型及影响缺氧耐受性的因素 一、实验目的： 复制不同类型的缺氧模型，观察不同类型缺氧时呼吸变化规律和皮肤黏膜颜色的变化特点；观察中枢神经系统功能状态不同、外界环境温度不同及年龄不同对缺氧耐受性的影响；了解临床应用冬眠及低温疗法的意义；掌握对照实验和控制实验条件重要性。 二、实验材料： 18～22g小鼠，新生鼠；500Iml广口瓶（带有橡皮管及橡皮塞）2个， 1ml注射器（配针头），剪刀，镊子。钠石灰，氯丙嗪，生理盐水，亚硝酸钠溶液，亚甲蓝，冰。 三、实验方法： 1. 乏氧性缺氧（氯丙嗪处理） i.取2只小鼠，观察正常呼吸频率(次/10s)，并注意其呼吸深度。 观察活动等一般情况及耳、尾、口唇的颜色。取两只小鼠，标 记为A、B，分别按0.1ml/10g腹腔注射氯丙嗪和生理盐水,之 后将小鼠 A只放入冰块上10～15min。 ii.将2个广口瓶口瓶塞所连的移液管分别插入2个大量筒a、b中，记录液面最低点数据va1, vb1。a广口瓶加入钠石灰，b 广口瓶加入等量的钠石灰,待A鼠进入冬眠期时，将两只小鼠 分别同时放入广口瓶a、b中，插塞紧橡皮塞。记录量筒液面 下降量及小鼠的反应状况和存活时间。 2 亚硝酸钠中毒
i.取小白鼠2只，观察正常呼吸频率及皮肤黏膜颜色后，分别向 腹腔内注射50g/L亚硝酸钠0.2ml，其中1只在注射亚硝酸钠后，立即腹腔注射10g/l亚甲蓝0.2ml，另一只注入生理盐水 0.2ml作为对照。 ii.记录小鼠存活时间，小鼠猝死后解剖小鼠尸体，取出肝脏至于滤纸上，观察记录2只小鼠血液、肝脏的颜色。 四、实验结果： 1.实验数据 乏氧性缺氧： va1=61 ml， va2=56ml vb1=58ml，vb2=40 ml va1- va2=5 ml vb1- vb2=18 ml ta=27min tb=16min 小鼠A总耗氧量：R=耗氧量/存活时间/存活时间=0.0076 小鼠B总耗氧量：R=耗氧量/存活时间/存活时间=0.040 小鼠缺氧后皮肤粘膜的颜色：青紫色（紫绀） 2. 亚硝酸钠中毒： 小鼠亚硝酸钠中毒后，血液、肝脏颜色变为咖啡色；另一只小鼠用亚甲蓝解救后，血液、肝脏颜色仍为红色。 小鼠缺氧后皮肤粘膜的颜色：咖啡色
病理生理实验报告
实验一组织晶体渗透压改变在水肿发 生中的作用（水肿） 实验目的：通过实验了解组织晶体渗透压的改变在水肿发生中的意义，加深对水肿发生机理的理解。 实验动物：蟾蜍2只，要求体重、大小相仿。 器材与药品： 200克电子天平1台，盛水玻璃缸2个，2m1注射器连4号针头2支，脱脂棉球、纱布块适量。0.65％氯化钠液和20％氯化钠液各10ml。实验方法： 1. 取蟾蜍2只分别称重，注意观察背部外形。 2. 向一只蟾蜍背部淋巴囊内注入0．65％氯化钠液(即蛙生理盐水)2 m1，向另一只蟾蜍背部淋巴囊内注入20％氯化钠液2ml(蟾蜍皮下淋巴囊分布见图2－1)，然后分别放入装有水的玻璃缸内。 3．1小时后由水中取出蟾蜍，擦掉体表浮水后分别称重，同时仔细观察背部外形改变。 4. 解剖蟾蜍：由椎骨孔破坏神经系统。重点观察背部淋巴囊的变化。解剖观察其它脏器和解剖结构。 实验结果：将观测到的各种实验结果记入下表内 注前体重注前背部外 形注后体重注后背部外 形 注0.65％氯 化钠 141.2g 正常平坦146.3g 正常平坦
注20％氯化 141.8g 正常平坦169.5g 变肥 钠 结果分析：实验中这两只蟾蜍分别注射了不同浓度的氯化钠溶液，组织晶体渗透压升高，两只都有一定的吸水能力，注射低浓度氯化钠溶液的青蛙吸水较少，体重只有轻微的增长，体型无明显变化；注射高浓度氯化钠溶液的青蛙吸水较多，体重有大幅度的增长，体型出现明显变化。结果表明晶体在体内的浓度越高，吸水性越强。 心得：
实验二缺氧 实验目的：通过复制外呼吸性缺氧、血液性缺氧及组织中毒性缺氧的动物模型。 实验动物：成年小白鼠4只． 器材与药品： 1．外呼吸性缺氧：带有橡皮塞的250毫升广口瓶1只(见图3—1)，搪瓷盘1只、镊子、剪子各2把，100g电子天平1台。钠石灰(NaOH.CaO)10g，凡士林1瓶。 2．血液性缺氧：带有管道瓶塞的250m1广口瓶和三角烧瓶各2只，酒精灯1盏，三角架3个，充满一氧化碳的皮球胆1只，弹簧夹4个，lml注射器1支。甲酸、浓硫酸各300ml，2％亚硝酸钠溶液10ml 3．组织中毒性缺氧：1 m1注射器1支。0.04％氰化钾溶液。 实验方法： 一、外呼吸性缺氧 1.取小白鼠重只称重后放入广口瓶内，瓶内预先加入钠石灰5g。观察动物一般状况，如呼吸频率、呼吸状态，皮肤、粘膜色彩、精神状态等。 2.旋紧瓶塞，用弹簧夹夹闭通气胶管，防止漏气。记录时间，观察上述各项指标的变化，直至动物死亡。待本次实验内容全部完成之后，一起剖检动物，对比观察血液颜色的改变和其它变化（以下皆同)。 二、血液性缺氧 (一)一氧化碳中毒
不同类型的缺氧实验报告(特选借鉴)
机能实验学实验报告 日期：××× 实验项目名称不同类型缺氧成绩实验人员撰写报告人: ×××小组成员: ××× 专业年级信息×××年级×××专业第×××班第×实验室第×组 1.实验目的 （1）通过了解缺氧的分类； （2）复制不同类型缺氧模型； （3）观察不同类型缺氧时呼吸节律和皮肤黏膜颜色的变化规律，了解不同类型缺氧的表现特征。 2.实验原理 （1）乏氧性缺氧 将小白鼠置于密闭的盛有钠石灰（NaOH·CaO）的容器中，容器中的O2而呼出的CO2则和水蒸气一起被钠石灰吸收。 因此，在缺氧瓶中的小鼠，瓶内氧气逐渐被小鼠所利用，而小鼠呼出来的二氧化碳被缺氧瓶中钠石灰所吸收，从而复制出乏氧性缺氧的动物模型。 （2）一氧化碳中毒性缺氧 利用甲酸（HCOOH）在浓硫酸中加热可释放出CO的反应，将CO通入放置小白鼠的容器中，CO与Hb结合形成碳氧Hb，使Hb失去与O2的结合能力。 因为一氧化碳中毒时，一氧化碳与氧气竞争与血红蛋白结合，一氧化碳与血红蛋白的亲和力为氧气的210倍，血红蛋白与一氧化碳结合后就不能与氧气结合，从而复制出一氧化碳中毒性缺氧的动物模型。（3）亚硝酸钠中毒性中毒 NaNO2为一强氧化剂，当注入小鼠腹腔后经吸收进入体内，可使Hb分子中的二价铁离子氧化为三价铁离子，形成高铁Hb（MHb），从而失去携氧能力。 3.材料与方法 3.1材料或/和动物 动物：成年小白鼠，雌雄不拘
材料： （1）药品：钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%亚硝酸钠、1%亚甲蓝 （2）器材：密封广口瓶、一氧化碳发生装置、酒精灯、注射器及针头、粗剪刀、组织镊等 3.2方法（即实验步骤） （1）乏氧性缺氧 1) 观察记录小白鼠正常呼吸频率、深度和皮肤、黏膜颜色等指标； 2) 将小白鼠放入装有钠石灰的密封广口瓶中，塞紧瓶塞； 3) 每3分钟重复观察上述指标1次，如有其它变化，随时记录，直至动物死亡。 （2）一氧化碳中毒性缺氧 1) 准备一氧化碳发生装置； 2) 将一只小鼠放入广口瓶中，观察其正常表现后与一氧化碳发生装置连接； 3) 用量杯先取甲酸3ml 放于试管中，再沿试管壁缓慢加入浓硫酸2ml ，塞紧瓶塞； 4) 观察并记录呼吸频率、深度和皮肤、黏膜颜色各项指标的改变。 （3）亚硝酸钠中毒性缺氧 1) 选取体重相近的小鼠2只，观察正常指标； 2) 分别通过腹腔注射5％亚硝酸钠0.3 ml/只； 3) 随后立即取其中1只小白鼠腹腔内注入1％亚甲蓝溶液0.3 ml ； 4) 另1只立即注入生理盐水 0.3 ml ； 5) 观察并记录呼吸频率、深度和皮肤、黏膜颜色各项指标，比较2只小白鼠的表现及死亡时间。 4.结果（文本，图，表等表示）与讨论（针对结果的分析） 4.1 实验结果 观察指标 一般状况 呼吸频率（次/min ） 呼吸 幅度 皮肤黏膜 颜色 存活时间 缺氧类型 1) 乏氧性缺氧 12min 临终前小鼠耳朵血管颜色变紫绀，眼睛颜色暗红，毛色暗淡，行动变缓，身体抽动 正常 正常，眼睛鲜红，耳背灰白 80 正常 淡红色 缺氧 3min 动作迟缓，眼睛暗红、无神 60 变慢 暗红色 6min 尾巴颜色变黑，眼皮低垂睁不开 180 剧烈 暗红色 2) 一氧化碳中毒性缺氧 12min 小鼠濒死前，狂躁好动，并伴有剧烈抽搐，张口 呼吸，四肢僵直，二便 失禁 正常 正常，眼睛鲜红，耳背灰白 80 正常 淡红色 缺氧 3min 活动较为敏捷，躁动 195 频繁剧烈 樱桃红色 6min 活动较之前迟缓 101 变快 樱桃红色 3) 亚硝酸钠中毒性缺氧 正常 正常，眼睛鲜红，耳背灰白 80 正常 淡红色 亚甲蓝救治 3min 活动力较强，眼睛变暗，嘴变黑 120 变快 棕褐色 7min 死亡时，二便失禁，四肢僵直，眼睛变黑 6min 活动变缓慢，尿失禁，腹腔胀大， 见蓝色物质 75 变慢 棕褐色 生理盐水对照 3min 活动较缓慢，运动迟缓，眼睛变 31 变慢 棕褐色 8min
缺氧的类型及影响缺氧耐受性的因素试验的讨论问题1
缺氧的类型及影响缺氧耐受性的因素试验的讨论问题1
缺氧的类型及影响缺氧耐受性的因素试验的讨论问题小组成员： 1、请给出本实验的五个关键词 缺氧氯丙嗪总耗氧率CO 亚硝酸盐美兰存活时间 2、请指出临床上常用的血氧指标及其意义 ①血氧分压PO2：又称血氧张力，血液中物理溶解的氧越多，血氧分压越高。动脉血氧分压取决于吸入气体的氧分压和外呼吸的功能状态，正常约为100mmHg；静脉血氧分压反映内呼吸状态，正常约为40mmHg。 ②血氧容量CO2max：100ml血液中的血红蛋白完全氧合后的最大带氧量，取决于血液中血红蛋白的量及其与氧结合的能力。 ③血氧含量CO2：100ml血液中实际含有的氧量，包括物理溶解的和与Hb结合的氧量。正常动脉血氧含量约为19ml/dl，静脉血氧含量为14ml/dl，动静脉血氧含量差约为5ml/dl（反映组织从单位容积血液内摄取氧的多少）。 ④血氧饱和度SO2：Hb结合氧的百分数，约等于血氧含量/血氧容量。正常动脉血氧饱和度为95%~98%，静脉血氧饱和度为70%~75%。
6、低张性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？ 原因：吸入气氧分压过低、外呼吸功能障碍、静脉血分流。 发病机制：动脉血氧分压和血氧含量过低，血液中脱氧血红蛋白浓度增高，出现发绀症状。 动脉血氧分压、血氧含量及氧饱和度均降低。 7、血液性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？举例？ 原因：血红蛋白含量减少或性质改变 发病机制：血红蛋白数量减少，血氧容量和血氧含量降低，毛细血管床中的平均血氧分压较低，血氧不易时放入组织。 血氧含量和血氧容量降低，血氧饱和度正常，动静脉血氧含量差减小。 8、循环性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？ 原因：全身性或局部性血液循环障碍 发病机制：组织血流量减少引起组织供氧不足。 动静脉血氧含量差增大。
病生实验水肿和缺氧
病生实验水肿和缺氧
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家兔实验性肺水肿 1 材料和方法 1.1材料：家兔，婴儿称，天平称，点滴输液装置，颈部小手术器械，听診器，生理盐水，手术台，肾上腺素，注射器若干支。 1.2研究方法： （1）称重，固定手术台上。 （2）用头皮针穿插耳缘静脉并固定，打开静脉输液装置，注意排除管道内气体。（3）用听诊器听肺部的正常呼吸音，然后输入37摄氏度生理盐水（按150ml/kg,输液速度为150~180滴/分） （4）待滴注接近完毕时立即向输液瓶中加入肾上腺素生理盐水（按肾上腺素0.45mg/kg）继续输入。肾上腺素输完后可酌加少量生理盐水，以10~15滴/分速度维持通道，必要时第2次用药。 （5）输液过程中应密切观察呼吸是否急促困难，口鼻是否有分红色泡沫液体流出，并用听诊器听诊肺部有无湿罗音出现。若上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素，用法及剂量同上，直至出现明显的肺水肿表现。 （6）死亡动物记录死亡时间，存活动物造病后30min则夹住气管，放血处死。（7）所有动物均打开胸腔，用线在气管分叉处结扎以防止肺水肿液渗出，在结扎处以上切断气管，小心将心脏及其血管分离（勿伤及肺），把肺取出，用滤纸吸去肺表面的水份后称重计算肺系数＝肺重量（g）/体重（kg）后（正常肺系数约为4-5），肉眼观察肺大体改变，并切开肺，观察切面的改变。 注意事项 1．输液速度不要太快或太慢，以控制在150~180滴/分为宜。 2．解剖取肺时，注意勿损伤肺表面和挤压肺组织，以防止水肿液流出，影响肺系数值。 2 结果联系肺水肿发生机制对结果作出分析 正常实验 听诊 粉红色的泡沫液
病理生理实验报告
实验一组织晶体渗透压改变在水肿发生中 的作用（水肿） 实验目的：通过实验了解组织晶体渗透压的改变在水肿发生中的意义，加深对水肿发生机理的理解。 实验动物：蟾蜍2只，要求体重、大小相仿。 器材与药品： 200克电子天平1台，盛水玻璃缸2个，2m1注射器连4号针头2支，脱脂棉球、纱布块适量。0.65％氯化钠液和20％氯化钠液各10ml。 实验方法： 1. 取蟾蜍2只分别称重，注意观察背部外形。 2. 向一只蟾蜍背部淋巴囊内注入0．65％氯化钠液(即蛙生理盐水)2 m1，向另一只蟾蜍背部淋巴囊内注入20％氯化钠液2ml(蟾蜍皮下淋巴囊分布见图2－1)，然后分别放入装有水的玻璃缸内。 3．1小时后由水中取出蟾蜍，擦掉体表浮水后分别称重，同时仔细观察背部外形改变。 4. 解剖蟾蜍：由椎骨孔破坏神经系统。重点观察背部淋巴囊的变化。解剖观察其它脏器和解剖结构。 实验结果：将观测到的各种实验结果记入下表内 注前体重注前背部外 形注后体重注后背部外 形 注0.65％氯 化钠 141.2g 正常平坦146.3g 正常平坦
注20％氯化 141.8g 正常平坦169.5g 变肥 钠 结果分析：实验中这两只蟾蜍分别注射了不同浓度的氯化钠溶液，组织晶体渗透压升高，两只都有一定的吸水能力，注射低浓度氯化钠溶液的青蛙吸水较少，体重只有轻微的增长，体型无明显变化；注射高浓度氯化钠溶液的青蛙吸水较多，体重有大幅度的增长，体型出现明显变化。结果表明晶体在体内的浓度越高，吸水性越强。 心得：
实验二缺氧 实验目的：通过复制外呼吸性缺氧、血液性缺氧及组织中毒性缺氧的动物模型。 实验动物：成年小白鼠4只． 器材与药品： 1．外呼吸性缺氧：带有橡皮塞的250毫升广口瓶1只(见图3—1)，搪瓷盘1只、镊子、剪子各2把，100g电子天平1台。钠石灰(NaOH.CaO)10g，凡士林1瓶。 2．血液性缺氧：带有管道瓶塞的250m1广口瓶和三角烧瓶各2只，酒精灯1盏，三角架3个，充满一氧化碳的皮球胆1只，弹簧夹4个，lml注射器1支。甲酸、浓硫酸各300ml，2％亚硝酸钠溶液10ml 3．组织中毒性缺氧：1 m1注射器1支。0.04％氰化钾溶液。 实验方法： 一、外呼吸性缺氧 1.取小白鼠重只称重后放入广口瓶内，瓶内预先加入钠石灰5g。观察动物一般状况，如呼吸频率、呼吸状态，皮肤、粘膜色彩、精神状态等。 2.旋紧瓶塞，用弹簧夹夹闭通气胶管，防止漏气。记录时间，观察上述各项指标的变化，直至动物死亡。待本次实验内容全部完成之后，一起剖检动物，对比观察血液颜色的改变和其它变化（以下皆同)。 二、血液性缺氧 (一)一氧化碳中毒
缺氧及影响机体对缺氧耐受性的因素
缺氧及影响机体对缺氧耐受性的因素 【摘要】目的：研究温度、中枢神经系统机能状态对乏氧性缺氧小鼠缺氧耐受性的影响以及美兰对亚硝酸钠中毒的血液性缺氧小鼠的影响。方法：小鼠编号1,2分别腹腔注射生理盐水和室温放置10min、0.25%氯丙嗪和低温放置10min，然后分别放入缺氧瓶内，记录小鼠存活时间并测定总耗氧量；小鼠编号3,4分别腹腔注射5%亚硝酸钠溶液0.2ml+生理盐水0.2ml、5%亚硝酸钠溶液0.2ml+1%美兰溶液0.2ml，记录小鼠存活时间及皮肤黏膜颜色脏器变化。结果：2号小鼠存活时间达22.20min未死亡，总耗氧量2.9ml，比1号存活时间长耗氧量少；3号小鼠出现亚硝酸钠中毒，8.32min后死亡，4号小白鼠亚硝酸钠中毒症状缓解，22.20min内未死亡。结论：温度、中枢神经系统机能状态使乏氧性缺氧小鼠缺氧耐受性增强；美兰能治疗亚硝酸钠中毒的血液性缺氧小鼠。 【关键词】缺氧；氯丙嗪；亚硝酸钠；美兰 [Abstract] Objective: To study the influence of temperature, the central nervous system function state of hypoxic hypoxia mouse hypoxia tolerance in mice and methylene blue blood hypoxia sodium nitrite poisoning. Methods:. Methods: mice were numbered 1,2 intraperitoneal injection of normal saline and 10min at room temperature, low temperature 0.25% chlorpromazine and placed 10min, and then placed in hypoxic bottle, record the survival time of mice and determination of total oxygen consumption; mice numbered 3,4 respectively by intraperitoneal injection of 5% sodium nitrite solution 0.2ml+ 0.2ml of physiological saline, 5% sodium nitrite solution 0.2ml+1% methylene blue solution 0.2ml record the survival time of mice, and skin and mucous membrane changes color organ. Results: 2 the survival time of mice was 22.20min not death, total oxygen consumption 2.9ml, long oxygen consumption less than No. 1, No. 3 mice survival time; sodium nitrite poisoning, 8.32min after death, sodium nitrite 4 mice poisoning symptoms, not died within 22.20min. Conclusion: temperature, central nervous system function state of the hypoxic hypoxia mice hypoxia tolerance enhancement; Meilan can treat mice blood hypoxia sodium nitrite poisoning. [keyword] hypoxia; chlorpromazine; sodium nitrite; methylene blue 【引言】氯丙嗪是中枢多巴胺受体的阻断剂，具有镇静、抗精神病、镇吐、降低体温及基础代谢、α-肾上腺素能受体及m-胆碱能受体阻断、抗组织胺、影响内分泌等作用，临床用于控制精神分裂症或其它精神病的躁动、紧张不安、幻觉、妄想等症状；治疗各种原因引起的呕吐；与镇痛药合用，治疗癌症晚期病人的剧痛多巴胺受体阻断剂，低温环境能降低机体的代谢率，但低温环境下氯丙嗪引起的中枢神经系统机能状态对乏氧性缺氧机体的缺氧耐受性的影响及相关研究未见报道，值得研究[1]。亚硝酸钠是工业用盐，具有很强的氧化性，可使血液中的低铁血红蛋白氧化成高铁血红蛋白，失去运输氧的能力而引起组织缺氧性损害。美兰溶液具有一定的抗氧化作用，但其能否缓解亚硝酸钠中毒仍未见报道，本课题组将对其进行进一步的研究。 【材料和方法】 一、材料 1.1器械：鼠笼、电子称、1ml注射器、集气瓶、100ml量筒、1000ml烧杯、计时器、 木塞、橡胶导管、剪刀和镊子 1.2药品或试剂：0.25%氯丙嗪溶液、5%亚硝酸钠溶液、1%美兰溶液、碱石灰固体、生
缺氧实验最终报告
昆明医科大学机能学实验报告 实验日期:2015年9月17日 带教教师: 小组成员: 专业班级:临床医学二大班 缺氧实验 一、实验目得 1、复制不同病因导致小鼠缺氧得模型,了解乏氧性,血液性,组织中毒 性缺氧得分类。 2、观察缺氧对呼吸系统,中枢神系统得影响,以及血液颜色变化。 3、了解影响缺氧耐受性得因素。 二、实验原理 分别复制三型缺氧模型,观察缺氧对机体得影响。 三、实验仪器设备 小鼠缺氧瓶(100ml125ml 带塞广口瓶),一氧化碳发生装置广口瓶,恒温水浴箱,5ml 或2ml 刻度吸管,1ml 注射器,酒精灯,剪刀,镊子,钠石灰,甲酸,浓硫酸,5%硝酸钠,0、1%氰化钾,生理盐水。 四、实验方法与步骤 ①取小鼠四只,标记编号(甲,乙,丙,丁) 分别称重记录 甲:NS(0、1ml/10g) 腹腔注射 乙:0、25%水合氯醛(0、1ml/10g) 放进缺氧装置中 丙:1%咖啡因 (0、1ml/10g) 等待10min 每2min 记录呼吸频率 死亡((记录时间及耗氧量,甲鼠尸体待留)→计算耗氧量 观察皮肤颜色,活动度 丁:放入缺氧装置,40℃水浴锅放入装小鼠缺氧瓶,记录死亡时间,活动状态以及耗氧量 ②一氧化碳中毒性缺氧(小鼠一只):检查装置气密性 ,连接一氧化碳发生装置 , 将一只小鼠放入广口瓶,然后与一氧化碳发生装置连接;先取甲酸1、5ml 放入试管内,再加入浓硫酸1ml 。 连接 加热试管(用酒精得间断加热,加速CO 产生,不可使液体沸腾) 观察记录一般状况* 观察记录如下: 死亡(记录时间), 计算小鼠耗氧率(R)* 3、亚硝酸中毒缺氧(小鼠一只) 观察记录一般状况 小鼠:腹腔注射*5%亚硝酸钠0、3ml 观察记录如下: 死亡(记录时间),计算小鼠耗氧率(R)* 4、取出甲鼠及2,3实验小鼠尸体部分肝叶进行对比,记录颜色。 五、实验结果
缺氧的类型与影响缺氧耐受性的因素
机能学实验报告 缺氧的类型及影响缺氧耐受性的因素 摘要： 【目的】：复制不同类型缺氧模型，观察不同类型缺氧时呼吸节律变化规律和皮肤黏膜颜色的变化特点；观察中枢神经系统功能状态不同、外界环境温度不同及年龄不同对缺氧耐受性的影响；了解临床应用冬眠及低温疗法的意义；掌握对照实验和控制实验条件重要性。【方法】：乏氧性缺氧中，分别注射生理盐水和氯丙嗪作为对照，计算耗氧量。亚硝酸钠中毒中，注射亚硝酸钠溶液后，分别注射生理盐水和美蓝作为对照，取肝脏观察血液颜色。【结果】：甲（实验组）耗氧率R=A/W*t=0.0214;乙（对照组）耗氧率R=A/W*t=0.0427。亚硝酸钠中毒：甲组小鼠肝脏颜色：鲜红色; 乙小鼠肝脏颜色：棕褐色。 【结论】：氯丙嗪可缓解缺氧，小鼠存活时间更长；美蓝可解救小鼠亚硝酸钠中毒。 关键词：乏氧性缺氧；亚硝酸钠中毒；温度 引言：当供应组织的氧不足，或组织利用氧障碍时，机体的机能和代谢可发生异常变化，这种病理过程称之为缺氧。缺氧是多种疾病共有的病理过程。许多原因都能使机体发生缺氧。不同类型的缺氧，其机体的代偿适应性反应和症状有所不同。 1、材料 1.1 实验对象：18~22g小鼠，新生鼠；
1.2 器材：生物信号采集处理系统，高灵敏压力换能器；500Iml 广口瓶（带有橡皮管及橡皮塞）2 个，1ml 注射器，剪刀，镊子； 1.3 实验试剂：氯丙嗪；生理盐水，亚硝酸钠溶液，美蓝，冰块。 2、方法 2.1 乏氧性缺氧 1.1.1取两只老鼠先编号，再进行称重，并记下数据。 2.1.2对1号鼠按0.1ml/10g进行腹腔注射氯丙嗪，注射完后冰浴10~15分钟，而对4号鼠则腹腔注射相同量的生理盐水，并将它放在室温下10~15分钟。时间到后，将两只老鼠放入500ml广口瓶内，塞进瓶塞，并将移液管放入盛满水的量筒内计入当时的液面高度数据。 2.1.3实验观察观察皮肤黏膜颜色变化，呼吸频率的快慢，活动强度，至小鼠死亡，记录其存活时间。并读取液面变化量即耗氧量。解剖小鼠尸体，记录肝脏、肺、血液颜色变化。 2.1.4总耗氧量计算根据A（ml），存活时间T（min），鼠体量W（g）三项指标，求出总耗氧量。 2.2 亚硝酸钠中毒 2.2.1取性别相同，体重相近的鼠2只，进行编号，并观察皮肤黏膜色泽。 2.2.2向两只老鼠均注射0.2mlNaNO2,注射完后，立即向2号鼠腹腔内注射美兰溶液0.2ml,向3号老鼠注射相同量的生理盐水作为实验组。 2.2.3 3号鼠死亡后，迅速取肝，观察肝的血液颜色；对2号鼠迅速处死，取肝，并观察肝的血液颜色。
缺氧的类型和影响缺氧耐受性的因素
缺氧的类型和影响缺氧耐受性的因素 一、实验目的 （1）通过复制不同类型缺氧，了解缺氧的分类原则。 （2）观察不同类型缺氧时的表现以及呼吸节律和皮肤粘膜颜色的变化规律 二、观察指标 动物一般状况，呼吸频率和深度，存活时间，皮肤粘膜和肝脏颜色改变 三、方法与步骤 （一）乏氧性缺氧 1. 取钠石灰少许（约5g）和1只小鼠放入密封广口瓶内，观察和记录动物缺氧前的一般状况、呼吸频率（次/10s）和深度、皮肤和口唇颜色。随后塞紧瓶塞，记录时间，每3min重复观察上述指标1次，如有其他变化，随时记录，直至动物死亡。 2. 动物尸体留待其他缺氧实验完成后，再依次打开腹腔，观察和比较血液和肝脏颜色。（二）血液性缺氧 1．一氧化碳中毒性缺氧：准备一氧化碳发生装置。将1只小鼠放入广口瓶中，观察其正常表现后与一氧化碳发生装置连接。用刻度吸管取甲酸3ml放于试管内，沿试管壁缓慢加入浓硫酸2ml，塞紧（可用酒精灯稍加热，加速CO的产生，但不可过热，以免液体沸腾。如果CO产生过多过快，则动物迅速死亡，而血液颜色改变不明显）。观察指标与方法同上。 2．亚硝酸钠中毒性缺氧：选取体重相近的小鼠2只，观察正常指标。分别通过腹腔注射5％亚硝酸钠0.3 ml，随后立即取其中 1只动物腹腔内注入 l％亚甲蓝溶液0.3 ml，另 1只立即注入生理盐水 0.3 ml；观察指标方法同上。比较 2只小鼠的表现及死亡时间。 （三）氰化物中毒性缺氧 （1）取小鼠 1只，观察正常指标后，腹腔注射0.l％氰化钾 0.2 ml。 （2）观察2只小鼠上述指标的变化及死亡时问。 1、将测氧瓶内空气容积装置的全部管道充满水，并向量筒加水至刻度， 2、将缺氧瓶上的两橡皮管全部打开，其中之一与装置相连， 3、装置内水因虹吸作用吸入缺氧瓶内，待瓶内全部充满水时，立即夹紧装置的弹簧夹， 4、读出量筒上液面下降的毫升数，即为缺氧瓶内的空气容积。 药品：钠石灰（NaOH·CaO） 1%咖啡因（小剂量能提高大脑皮质的兴奋性，振奋精神，减 少疲劳。大剂量则有兴奋延脑呼吸中枢及血管运动中枢的作用，对抗中枢性抑制。小鼠腹腔 注射1%咖啡因0.1ml/10g） 0.25%氯丙嗪 (有镇静、抗精神病、镇吐、降低体温及基础代谢、 阻断α-肾上腺素能受体及M-胆碱能受体、抗组胺及影响内分泌等作用。抑制体温调节中枢， 在物理降温及其它药物配合下可使体温降至正常以下，此时器官活动减少，组织代谢及耗氧
小鼠缺氧实验实验报告
\篇二：缺氧 缺氧动物模型复制及中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧的影响 【摘要】目的：本实验学习复制乏氧性缺氧和血液性缺氧的动物模型方法，观察缺氧过程中呼吸的反应及血液色泽和全身一般情况的变化，并了解温度和中枢神经系统机能状态对缺氧耐受的影响以及对照实验和控制实验条件重要性。方法：通过复制缺氧动物模型，观察不同类型缺氧过程中呼吸、黏膜和血液色泽的变化。通过测定耗氧量和小鼠的存活时间来观察中枢神经系统机能抑制和低温对缺氧的影响。结果：中枢神经系统功能抑制和低温对动物耐受缺氧的影响与对照组相比，存活时间和总耗氧率有显著性差异；复制不同原因造成的不同缺氧类型小鼠都表现出了不同的呼吸频率和存活时间的变化。结论：给小鼠注射氯丙嗪、冰浴降温可显著降低总耗氧率，延长其存活时间（p<0.01）。co中毒、亚硝酸盐可显著缩短小鼠存活时间，降低呼吸频率。美兰可以缓解亚硝酸盐对小鼠的作用，已定程度延长小鼠存活时间，延缓呼吸频率的下降。 【关键词】缺氧氯丙嗪总耗氧率 co 亚硝酸盐美兰存活时间 当供应组织的氧不足，或组织利用氧障碍时，机体的机能和代谢可发生异常变化，这种病理过程称为缺氧。根据缺氧的原因不同可将缺氧分为低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织中毒性缺氧四种类型，不同类型的缺氧，机体的代偿适应性反应和症状表现有所不同。 1.材料和方法 1.1实验动物：小白鼠（雌性）。 1.2 药品：氯丙嗪(chlorpromazine) 、钠石灰（soda lime)，亚硝酸钠（ sodium nitrite ) 、亚甲基蓝(美蓝）（methylene blue，mb）、 0.9％nacl (physiological saline solution) 、co(carbon monoxide)。 1.3 器材：100、500ml广口瓶和测耗氧装置。 1.4 方法 1.4.1 中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧的影响 取2只性别相同体重相近的小鼠，准确称取体重，并随机分为生理盐水组和氯丙嗪组。氯丙嗪组按0.1ml/10g体重腹腔注射0.25％氯丙嗪，随即安放在冰浴的纱布上 10~15min，使呼吸频率降至70~80次/min；生理盐水组按0.1ml/10g体重腹腔注射生理盐水，室温放置10－15min，作为对照。之后将2只小鼠分别放入100ml的广口瓶内，连接好测耗氧装置。如右图。 1.4.2 不同原因造成的缺氧 取2只性别相同体重相近的小鼠随机分为乏氧性缺氧组和一氧化碳中毒组。乏氧性缺氧组小鼠放入含有5g钠石灰的100ml密闭瓶中；一氧化碳中毒组小鼠放入500ml密闭瓶，注入10ml co气体。 另取2只性别相同体重相近的小鼠随机分为亚硝酸纳组和亚硝酸纳治疗组。亚硝酸纳组小鼠腹腔注射50g/l亚硝酸纳0.2ml，并随即腹腔注射生理盐水0.2ml；亚硝酸纳治疗组小鼠腹腔注射50g/l亚硝酸纳0.2ml后即刻腹腔注射10g/l亚甲基蓝0.2ml 。 2.观察项目 2.1 中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧的影响 记录下小鼠的体重w（g）。从密闭测耗氧装置开始记时到小鼠死亡，分别观察氯丙嗪组和生理盐水组小鼠的存活时间t（min）、总耗氧量a（ml）。按以下公式计算出总耗氧率r[ml/（g·min）]： r[ml/（g·min）]= a（ml）÷w（g）÷t（min） 2.2 不同原因造成的缺氧 乏氧性缺氧组和一氧化碳中毒组：处理前分别测出两鼠的正常呼吸频率（次/min）。待塞
缺氧的类型及影响缺氧耐受性的因素试验的讨论问题1
缺氧的类型及影响缺氧耐受性的因素试验的讨论问题 小组成员： 1、请给出本实验的五个关键词 缺氧氯丙嗪总耗氧率 CO 亚硝酸盐美兰存活时间 2、请指出临床上常用的血氧指标及其意义 ①血氧分压PO2：又称血氧张力，血液中物理溶解的氧越多，血氧分压越高。动脉血氧分压取决于吸入气体的氧分压和外呼吸的功能状态，正常约为100mmHg；静脉血氧分压反映内呼吸状态，正常约为40mmHg。 ②血氧容量CO2max：100ml血液中的血红蛋白完全氧合后的最大带氧量，取决于血液中血红蛋白的量及 其与氧结合的能力。 ③血氧含量CO2：100ml血液中实际含有的氧量，包括物理溶解的和与Hb结合的氧量。正常动脉血氧含量约为19ml/dl，静脉血氧含量为14ml/dl，动静脉血氧含量差约为5ml/dl（反映组织从单位容积血液内摄取氧的多少）。 ④血氧饱和度SO2：Hb结合氧的百分数，约等于血氧含量/血氧容量。正常动脉血氧饱和度为95%~98%，静脉血氧饱和度为70%~75%。 ⑤氧解离曲线：PO2与SO2之间的关系曲线，S型。血氧饱和度变小，氧解离曲线右移。 ⑥P50：血氧饱和度为50%时的血氧分压，反映Hb与氧的亲和力。 3、影响机体缺氧耐受性的因素有哪些？ 年龄、身体机能和代谢状态、营养、锻炼等都是影响机体缺氧耐受性的因素。总的来说就是耗氧过大（供氧不足）及用氧障碍两点。 4、请简要归纳缺氧时机体功能代谢的变化。 急性缺氧由于机体来不及代偿而较易发生功能代谢障碍，慢性缺氧时通常既有代偿性反应又有损伤性反应。呼吸系统主要是代偿性肺通气量增加；循环系统主要是心排出量增加、血流重新分布、肺血管收缩和毛细血管增生；血液系统主要是红细胞增多、向组织释氧能力增强；神经系统会出现意识模糊甚至丧失；细胞、组织主要是对氧的摄取和利用能力增强 5、缺氧可以分为哪几种类型？ 血液性缺氧、低张性缺氧、循环性缺氧、组织性缺氧。 6、低张性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？ 原因：吸入气氧分压过低、外呼吸功能障碍、静脉血分流。 发病机制：动脉血氧分压和血氧含量过低，血液中脱氧血红蛋白浓度增高，出现发绀症状。 动脉血氧分压、血氧含量及氧饱和度均降低。 7、血液性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？举例？ 原因：血红蛋白含量减少或性质改变 发病机制：血红蛋白数量减少，血氧容量和血氧含量降低，毛细血管床中的平均血氧分压较低，血氧不易时放入组织。 血氧含量和血氧容量降低，血氧饱和度正常，动静脉血氧含量差减小。 8、循环性缺氧的原因与发病机制是什么？血氧变化有何特点？ 原因：全身性或局部性血液循环障碍 发病机制：组织血流量减少引起组织供氧不足。