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不同失血量对家兔血压及尿量的影响

不同失血量对家兔血压及尿量的影响
不同失血量对家兔血压及尿量的影响

不同失血量对家兔血压及尿量的影响

实验目的

1、学习失血性休克的动物模型的复制方法;

2、观察失血性休克后家兔的一般表现,动脉血压及尿量等生理指标的变化;

3、掌握家兔麻醉、颈动脉及输尿管插管技术;

4、通过输血输液,了解休克的补救原则:需多少,补多少。

实验原理

一次急性失血超过总血量1/5—1/4以上,可引起失血性休克。本实验通过对家兔大量放血,使其血容量急剧降低,复制出家兔失血性休克模型,观察失血性休克时血流动力学改变及微循环变化,探讨其发生机制。

在大失血情况下,血容量减少,静脉回流不足,心排出量减少,血压显著下降,压力感受器(颈动脉体和主动脉弓)的负反馈调节冲动减弱,引起交感神经兴奋,NE分泌增多,全身血管广泛收缩,组织灌流量减少,但血压有所回升。同时也可使ADH释放增加,当ADH作用于血管平滑肌相应受体,引起血管滑肌收缩,它作用于远端小管、集合管,使肾重吸收水量增加,尿液减少,从而升高血压。

实验对象

家兔

实验器材

哺乳类动物手术器械,兔手术台,铁支架,Medlab生物信号采集处理系统,压力换能器,记滴器,动脉导管,输尿管导管(或细塑料管),动脉夹,注射器,刻度烧杯,有色丝线,20%氨基甲酸乙酯溶液,1000μ/ml肝素生理盐水,生理盐水

实验方法与步骤

1、动物麻醉与固定:用20%氨基甲酸乙酯溶液按5ml/kg体重由兔耳缘静脉注射(或腹腔注射),待动物麻醉后,取仰卧位固定于兔手术台上。

2、备皮:剪去家兔颈部、腹部等手术部位的毛。

3、腹部手术:在耻骨联合上缘沿正中线向上切开皮肤5cm,沿腹白线剪开腹壁和腹膜,找到膀胱,将膀胱慢慢向下翻转移出体外腹壁上。暴露膀胱三角,在膀胱底部找出两侧输尿管,并从周围组织中用玻璃分针细心分离一小段输尿管。于

输尿管下方穿两根丝线,将近膀胱端的输尿管用一丝线结扎,另一丝线备用。轻轻挑起输尿管,用眼科剪在结扎线上方的管壁处剪一小斜切口,将充满生理盐水的细塑料管向肾脏方向插入,结扎固定。再以同样方法插好另一端输尿管。两侧的细塑料插管可用Y形管连接,然后连到记滴器测定开始的尿量。记录完毕,用夹子关闭塑料管口。将膀胱与脏器送回腹腔,用温生理盐水纱布覆盖在腹部创口上,以保持腹腔内温度。

4、颈部手术:在颈部正中切开家兔皮肤约5—7cm,分离气管、颈总动脉和右颈外静脉。

(4.1) 切开颈部皮肤:约5—7cm,分离皮下组织及肌肉,暴露、分离颈部气管和血管神经鞘。用玻璃分针分离2—3cm长的两侧颈总动脉,各穿两线,将两线分别拉至动脉两端备用。用玻璃分针分离2—3cm长的右侧颈外静脉,穿两线,将两线分别拉至静脉两端备用。

(4.2)右侧颈总动脉进行动脉插管:将分离出的右侧颈总动脉远心端用线结扎,近心端用动脉夹将动脉夹住。在远心端结扎线下方用眼科剪在动脉上作一小“V”形切口,将动脉插管朝心脏方向插入动脉,确认插入动脉后用备用线将血管与插管结扎固定,再将结扎线固定于插管上,防止插管从血管中滑脱。同样方法进行左侧颈总动脉插管。为避免插管内血液凝固,动脉注射肝素。

(4.3)右侧颈外静脉进行静脉插管:提起近心端的线,于血管充盈后结扎远心端,靠近结扎线处剪一小口,将已排完空气并与测中心静脉压和输液的装置相连的静脉插管插入右侧颈外静脉内5—7 cm(可见液面随呼吸上下移动),并结扎、固定。

(4.4)左侧颈总动脉进行动脉插管:将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。记录动脉血压正常曲线。

(4.5) 打开右侧颈总动脉动脉夹,少量放血于刻度烧杯(烧杯内需注入少量肝素),使血压降至60mmHg,待血压稳定后,夹闭右颈总动脉,记录并观察血压变化并记录放血量,并用记滴器记录每分钟尿滴数或尿量。待血压、呼吸稳定后,再放血,使血压降至40mmHg,在维持期间的20min 内使血压维持在40mmHg至到45mmHg范围内,记录并观察血压变化,放血总量以及尿量。

5、抢救:将所放出的血液用50ml注射器从静脉缓缓回输。输血后,观察血压是否恢复正常。然后再输入生理盐水进行抢救,直至血压恢复正常。输血完毕后观察30 min,每10 min记录1次各项观察指标变化。

观察指标

1、放血前,观察、记录指标:

动物一般情况、动脉血压曲线、尿量

2、放血造成休克

松开右颈总动脉上的动脉夹,预先在500 ml烧杯中加入肝素2 mg/kg,用于收集所放血液。血压降 60mmHg,血压稳定后,夹闭右颈总动脉,记录并观察

血压变化并记录放血量,并用记滴器记录每分钟尿滴数或尿量。待血压、呼吸稳定后,再放血,使血压降至40mmHg,在维持期间的20min 内使血压维持在40mmHg 至到45mmHg范围内,记录并观察血压变化,放血总量以及尿量。

3、抢救:

将所放出的血液用50ml注射器从静脉缓缓回输,输血完毕后观察30 min,每10 min记录1次各项观察指标变化。

注意事项

1.麻醉深浅要适度,麻醉过浅,动物疼痛可致神经源性休克。

2.尽量减少手术创伤引起出血。

3.血压换能器和动脉导管要排除气泡和加入一定量肝素抗凝。

【注:大出血的处理方法是尽快用纱布压迫出血部位并吸去创面血液,然后去除纱布,找到出血部位,用止血钳夹住出血血管及周围少量组织,用丝线结扎出血点。颈部大出血的第二位原因是颈总动脉插管结扎不紧造成漏血、插管滑脱和插管刺破血管壁出血,处理方法是重新结扎,或止血后重新插管。颈部大出血时出血迅速,但止血也相对容易,止血后一般仍能进行动物实验,故处理时不要惊慌,不要盲目用止血钳乱夹,应按照操作规程止血、处理。股动、股静脉手术大出血的原因大部分是由于分离股动脉时未注意分支,造成分支断裂或操作粗暴引起股动脉撕裂引起,少部分原因是由于分离动、静脉引起股静脉撕裂。出血发生后的处理应据情而定,如股动、静脉出血发生在较远端,可将出血部位暂时压迫止血,继续向近心端分离一段血管,然后按前述方法插入血管插管,让原出血点位于远端结扎线与血管插管之间,即可达到止血目的。如出血发生在近心端,插管已不可能,宜用止血钳夹住出血部位,结扎止血后,于对侧肢体分离血管。其余部位出血的处理与止述方法大致相似。】

机能综合实验报告——动脉血压调节

一、实验名称——动脉血压调节和失血性休克(一) 二、实验目的 掌握动脉血压的神经和体液调节 三、合作同学 四、实验原理 ( 1 )神经调节 每搏输出量 血压升高主动脉窦心率 颈动脉体 缩血管中枢舒张外周阻力减小血压下降 五、实验对象 家兔(新西兰大白兔),2.5公斤,雄性。 六、实验器材和药品 手术器械一套,计算机多导生理记录仪一台、刺激电极、微循环观察装置,带三通针头的细塑料管2个,注射器若干,20%乌拉坦,0.3%肝素,去甲肾上腺素针剂,0.02g/L 肾上腺素,0.03g/L去甲肾上腺素,0.01g/L异丙肾上腺素,5g/L酚妥拉明。 七、实验方法 1.家兔称重后背位交叉固定于手术台,颈部备皮。 2.20%乌拉坦耳缘静脉注射麻醉,沿兔颈部正中皮肤作6~8cm切口,分离气管,再沿气管 分离两侧颈总动脉、一侧迷走神经和减压神经,穿线备用。 3.自耳缘静脉注入0.3%肝素5ml/kg抗凝。 4.一侧颈总动脉插管并与计算机多导生理记录仪相连。 5.观察正常血压并记录曲线带血压稳定后开始实验。 6.按下列顺序注入药品 肾上腺素去甲肾上腺素异丙肾上腺素酚妥拉明5分钟后去甲肾上腺素肾上腺素异丙肾上腺素。 说明:给药体积均为0.2ml/kg;每次给药后可住生理盐水,将死腔内的药液注入静脉; 给药后待血压平稳后再给另一种药物。 (1)夹闭一侧颈总动脉 (2)刺激一侧减压神经,双侧结扎剪断后再分别刺激减压神经中枢端和外周端

(3)结扎并剪断一侧迷走神经观察 八、实验结果及结论 1.正常波形 2. 注射肾上腺素 3. 去甲肾上腺素

4. 异丙肾上腺素 5.酚妥拉明 6.去甲肾上腺素

实验6-不同因素对家兔动脉血压的影响

在同一水平面上。然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。 1.4.2压力换能器的另一端与三通管相连。 三通管的一个接头将与动脉插管相 连。在将动脉插管插入左颈总动脉 前,先用盛有肝素的注射器与三通管 另一接头相连,旋动三通管上的开 关,使动脉插管与注射器相通,推动 注射器,排空动脉插管中的气体,使 动脉插管内充满肝素溶液,然后关闭 三通管。 1.5手术准备: 1.5.1麻醉固定:家兔称重后,按5ml/kg 体重剂量耳缘静脉注射20%氨基甲 酸乙酯。待兔麻醉后,将其仰卧放置 于兔台上,先后固定四肢及兔头。 1.5.2用手术剪剪去颈部皮肤被毛并切开 颈部皮肤5~7cm,钝性分离颈部肌 肉、暴露颈部气管和血管神经鞘,用 玻璃分针仔细分离右侧主动脉神经 和迷走神经,穿细线备用,用玻璃分 针分离两侧颈总动脉,各穿一线备

用。 1.5.3 动脉插管:在左颈总动脉中枢端结 扎,外周端用动脉夹夹住,并在动脉 下端预先穿以细线备用。用眼科剪在 靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字型 切口,将动脉插管向心方向插入颈总 动脉内,扎紧固定。打开动脉夹。1.6实验观察: 1.6.1记录正常血压曲线。 1.6.2静脉注射去甲肾上腺素:家兔耳缘静 脉注射0.3ml去甲肾上腺素,观察血 压变化,待血压曲线显示正常后再进 行下一个实验。 1.6.3静脉注射乙酰胆碱:家兔按0.1ml/mg 体重剂量耳缘静脉注射0.01g/L乙酰 胆碱,观察血压变化,待血压曲线显 示正常后再进行下一个实验。 1.6.4用血管夹突然夹闭右侧颈总动脉20s, 观察血压变化,待血压曲线显示正常 后再进行下一个实验。 1.6.5突然松开右侧颈总动脉的血管夹,观 察血压变化,待血压曲线显示正常后

家兔血压调节实验报告解读

实验报告 专业班级:康复治疗技术2班实验小组:第四组姓名:卢锦锟实验日期:2015年11月10日 (一)实验项目:家兔动脉血压调节 (二)实验目的: 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 (三)基本原理:(要求对写出关键点) 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定,动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物,观察动脉血压的变化,间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL 、1mL )等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、 0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品

1、夹闭颈总动脉血压升高,心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢,是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端,颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后,远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降,传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱,心交感和心缩血管紧张加强,作用于心脏,使心率加快,心输出量增加,血管收缩,血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大,交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统,是静脉收缩,促进血液回心,使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合,使血管收缩,管径变小,外周阻力增加,从而使平均动脉压升高。此外,去甲肾上腺素还可以使心率增加,心收缩力变大,因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素:异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合,骨骼肌血管(在全身血管中比例较大)持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用,因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素:肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强,因此心率加快,传导加速,心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体,使动腹腔内脏血管收缩,血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明:α受体阻断剂,α受体的作用:α受体为传出神经系统的受体,根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管,以及部分内脏血管,激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌,激动时瞳孔开大肌收缩,瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上,受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少,对其产生负反馈调节作用。 (四)实验主要设备和仪器、药品和用品(要求分类、简洁、清晰表述)

家兔尿生成的影响因素及与血压的关系(干货)

家兔尿生成的影响因素及与 血压的关系 一、实验目的 1、学习输尿管插管技术. 2、观察血浆胶体渗透压、血糖浓度、肾小球毛细血管压变化对尿生成的影响. 3、观察影响肾小管重吸收药物对尿生成的影响. 二、实验原理 1、尿生成的过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌三个过程.凡能影响上述过程的任何因素,均可影响尿的生成并可引起尿量及尿的性质、成分的改变.本实验以家兔为实验对象,采用膀胱插管术收集并记录尿量,主要观察不同因素或药物对尿量的影响。......感谢聆听 2、肾小球的滤过作用:肾小球毛细血管网内血浆成分向肾小球囊腔滤过,是尿生成过程的第一步.肾小球的滤过作用主要取决于肾血流量和有效滤过压。肾小球滤过膜的通透性很高,所产生的肾小球滤液在小分子溶质的组成上非常接近于血浆,只是几乎不含有蛋白质.肾小管和集合管的重吸收:原尿中的99%在流经集合管和肾小管时被

重吸收。对于尿的浓缩和稀释有重要意义。对各种物质的重吸收有三类:葡萄糖能完全重吸收;电解质和水可被吸收大部分;尿素、肌酐等代谢终产物仅有小部分被重吸收。Cl-、Na+、K+离子在肾小管和集合管中大部分被重吸收。......感谢聆听三、材料、试剂和仪器 1.动物家兔 2。试剂和药品生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、10单位/毫升肝素生理盐水(或6%枸橼酸钠)、1∶10,000去甲肾上腺素、垂体后叶素、速尿、20%甘露醇。 3。装置和器材微型计算机及生物信号采集与处理系统、血压换能器、保护电极、兔手术台和手术器械、动脉插管、动脉夹、膀胱漏斗、注射器(2ml、5ml 、10ml、20ml)及针头、酒精灯、试管架、试管和试管夹、输液装置、手术灯、纱布、丝线等。......感谢聆听 四、实验步骤 1、麻醉→背位固定→剪去颈部与下腹部被毛 2、分离颈部动脉,做动脉插管→分离右侧迷走神经→穿两线备用→用湿纱布覆盖创面。 处穿线结3、下腹部正中线作长约4厘米的切口→

实验六 传出神经系统药物对家兔血压的影响

实验六传出神经系统药对家兔血压的影响 【目的】1.观察传出神经系统药物对兔血压的影响,联系其临床应用。 2.探讨传出神经系统药影响血压的作用机制及应用时注意事项。 【材料】 器材兔手术台、手术灯、20ml注射器、5ml注射器、8号针头、6号针头、5号针头、气管套管(Y形玻璃或T玻璃管)、动脉套管、静脉套管(或细塑料管)、动脉夹、手术刀、眼科剪、普通剪、手术剪、止血钳、眼科镊、烧杯、血压描记装置、压力换能器、电动记纹双鼓(或二导生理记录仪、计算机)、手术线、纱布、棉纱绳、磅砰。 药品0.5%肝素、生理盐水、3%异戊巴比妥钠、10%葡萄糖、10-5乙酰胆碱、1%阿托品、10-5肾上腺素、10-4去甲肾上腺素、1%酚妥拉明、10-3普萘洛尔。 动物家兔。 【方法】 1.取家兔一只,称重,以3%异戊巴比妥钠1ml/kg耳缘静脉注射,麻醉后将家兔仰位固定手术台上。 2.压力换能器连于pclab生物信号采集处理系统上。 记录方式:连续记录;存盘方式:连续存盘;输入:DC;放大倍数:100~200;采样率:1ms。 3.剪去颈部毛,在颈部正中纵行切开长约10cm的皮肤,分离出气管并将其切开,插入气管套管,用粗线绳结扎固定。于气管分离出左侧颈总动脉,结扎其远心端,并在相距3~5cm的近心端处,用动脉夹夹住动脉阻断血流。然后在靠近结扎线处用眼科剪刀剪一小口,将连于压力换能器充满20~25ml肝素生理盐水的动脉插管朝向心方向插入颈动脉内,用线结扎固定。(将水银检压计的压力调整到100~120mmHg,用记纹鼓记录。如果用二道仪或计算机,动脉套管与压力换能器相连,插管前,充好肝素溶液)。 4.剪去耳缘静脉处毛,以备给药用。 5.分别在家兔的四肢皮下组织插入针头,接好心电图机电极(右前肢-红色,左前肢-黄色,左后肢-绿或蓝色,右后肢-黑色),记录标准Ⅱ导联的心电图,以

尿生成的影响因素实验报告

尿液生成的影响因素 一、实验目的 学习膀胱插管技术,学习尿量的记录和测量方法。观察神经体液因素(生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素)对尿生成的影响,并分析其作用机制。 二、关键词 尿生成;尿量;影响因素 三、实验材料 家兔;氨基甲酸乙酯、生理盐水20ml 、20%葡萄糖5ml 、0.01%去甲肾上腺素0.3ml 、呋塞米1.5ml 、垂体后叶素0.33ml ;手术剪、镊子、止血钳、玻璃分针、兔手术台、膀胱插管、注射器及针头、微机生物信号采集处理系统、棉线若干、婴儿秤。 四、实验步骤 1.静脉麻醉 从兔耳缘静脉注射氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后将其仰卧,先后固定四肢及兔头。 2.颈部手术 剪去颈前部兔毛,正中切开皮肤5~6厘米,用止血钳纵向分离软组织及颈部肌肉, 暴露气管及与气管平行的右血管神经鞘,细心分离出右侧鞘膜内的迷走神经,在神经下穿线备用。 3.腹部手术 从耻骨联合向上沿中线作长约4厘米的切口,沿腹白线打开腹腔,将膀胱轻拉至腹壁 外,先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,用止血钳提起膀胱前壁(靠近顶端部分),选择血管较少处,切一纵行小口,插入插管后膀胱即随着尿液的流出而缩小。如膀胱壁较松驰而膀胱容积仍较大时,可用粗线将膀胱扎掉一部分,使膀胱内的贮尿量减至最少。用线结扎膀胱颈部以阻断膀胱同尿道的通路。 使插管的引流管出口处低于膀胱水平,用培养皿盛接由引流管流出的尿液,手术完毕后,用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口,并关闭腹腔。 5.改变影响因素 (1).快速注射生理盐水20ml ,记录尿量变化 。 (2).快速静脉注射20%葡萄糖5ml ,记录尿量变化。 (3). 静脉注射去甲肾上腺素0.3ml ,记录尿量变化。 (4). 静脉注射呋塞米5mg/kg ,记录尿量变化。 (5). 缓慢静脉注射垂体后叶素2单位即0.33ml ,记录尿量变化。 五、实验结果 六、讨论分析 1.快速注射生理盐水 实验项目 对照(实验前) 实验组 1min 2min 3min 4min 5min 生理盐水20ml 1 1 2 3 5 4 葡萄糖5ml 2 9 9 12 10 7 去甲肾上腺素0.3ml 7 3 2 1 2 1 呋塞米5mg/kg 3 11 19 34 42 37 垂体后叶素0.33ml 22 4 3 1 2

实验九 传出神经药对家兔血压的影响(模拟实验)

实验九传出神经药对家兔血压的影响(模拟实验)【实验目的】 观察肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、乙酰胆碱、酚妥拉明、普萘洛尔、阿托品等药物对兔血压的作用,并分析各药对受体的作用。 【实验原理】 体循环动脉血压简称血压(systemic blood pressure,BP)。血压是血液在血管内流动时,作用于血管壁的压力,它是推动血液在血管内流动的动力。心室收缩,血液从心室流入动脉,此时血液对动脉的压力最高,称为收缩压(systolic pressure,SBP)。心室舒张,动脉血管弹性回缩,血液仍慢慢继续向前流动,但血压下降,此时的压力称为舒张压(diastolic pressure,DBP)。正常的血压是血液循环流动的前提,血压在多种因素调节下保持正常,从而提供各组织器官以足够的血量,藉以维持正常的新陈代谢。血压过低过高都会造成严重后果,血压消失是死亡的前兆,这都说明血压有极其重要的生物学意义。 血压形成与心室射血、血管阻力和循环血量三个基本因素相关。每搏输出量的多少直接影响动脉血压,心输出量多,血压升高,输出量少,血压下降。血管外周阻力的改变对收缩压和舒张压也都有影响,但对舒张压的影响更为明显。外周阻力减小使舒张压降低,脉搏压加大。外周阻力加大,动脉血压流速减慢,舒张期末动脉存血加多,使舒张压升高,脉搏压减小。另外,正常封闭型循环的动物在严重失血时,如失血量超过30%,循环血量不能维持心血管系统的充盈状态,体循环平均压将下降到不能推动足够的血量回心。由于回心血量不足,会使心输出量减少,严重时可减少到零毫米汞柱。可见循环血量是决定动脉血压的重要因素。 以上这三方面的因素又受到神经-体液调节机制的影响,特别是交感神经和肾素-血管紧张素-醛固酮两大系统。其中,交感神经主要能使心跳加快,皮肤及内脏血管收缩,冠状动脉扩张,从而导致血压的上升。传出神经药物,通过拟似或拮抗神经递质来激动或阻断分布于交感神经突触上的肾上腺素受体或胆碱受体,影响心肌收缩性、血管舒张度和循环血量充盈程度,从而升高或降低血压。而肾素-血管紧张素-醛固酮系统对血压的调节机制相对复杂,主要通过肾素、血管紧张素和醛固酮这三种物质,而这三种物质之间又紧密联系。肾素直接作用于肝脏所分泌的无活性血管紧张素原,使血管紧张素原转变成血管紧张素Ⅰ。血管紧张素Ⅰ(10肽),在正常血浆浓度下无生理活性,经过肺、肾等脏器时,在血管紧张素转换酶的作用下,形成血管紧张素Ⅱ(8肽),此酶又称激肽酶Ⅱ,尚有降解缓激肽的作用。血管紧张素Ⅱ可经酶作用,转化为血管紧张素Ⅲ(7肽)。血管紧张素Ⅱ具有很高的生物活性,有强烈的收缩血管作用,其加压作用约为肾上腺素的10~40倍,而且可通过刺激肾上腺皮质球状带,促使醛固酮分泌,潴留水钠,刺激交感神经节增加去甲肾上腺素分泌,增加交感神经递质和提高特异性受体的活性等,使血压升高。它还可反馈性地抑制肾脏分泌肾素和刺激肾脏分泌前列腺素,使血压保持在正常水平。这个从肾素开始到生成醛固酮为止的调节机制,称为肾素-血管紧张素-醛固酮系统,具有调节血压的作用。传出神经药则能

家兔尿液生成

家兔尿液生成的影响因素 摘要目的研究静脉注射生理盐水(normal saline,NS)、200g/L葡萄糖溶液(glucose solution,GS)、去甲肾上腺素(norepinephrine,NE)、呋塞米和垂体后叶素等药物对家兔尿液生成的影响。方法本实验采用膀胱插管引流家兔的尿液,通过记数注射某种药物一段时间后家兔尿液在单位时间内的生成滴数,来判断该药物对家兔尿液生成的影响。结果正常情况下家兔的尿液生成速率为4滴/min;静脉快速注射生理盐水20ml后,尿液生成速率增大至7滴/min;静脉注射200g/L葡萄糖溶液5ml前家兔尿量为4滴/min,注射后家兔尿液生成速率为16滴/min;静脉注射0.1g/LNE0.3ml前家兔尿量为7滴/min,注射后家兔尿液生成速率为5滴/min;静脉注射2单位垂体后叶素前家兔尿量为6滴/min,注射后家兔尿液生成速率为2滴/min;静脉注射呋塞米前家兔尿量为1滴/min,注射后家兔尿液生成速率为28滴/min。结论静脉注射NS、GS、呋塞米通过抑制集合管对NaCl 的重吸收从而使家兔尿液生成量增加。而静脉注射NE使肾小球毛细血管血浆流量减少,肾小球毛细血管血压下降,肾小球的有效滤过压下降,尿生成减少。静脉注射垂体后叶素可提高远曲小管和集合管上皮对水的通透性,增加水的重吸收而使尿量减少。 关键词尿生成;生理盐水;葡萄糖;去甲肾上腺素;呋塞米;垂体后叶素 1.材料和方法 1.1实验对象:家兔 1.2实验仪器:膀胱插管,动物手术器材(手术剪,止血钳, 丝线,注射器,兔台) 1.3实验药品和试剂:200g/L 氨基甲酸乙酯,生理盐水,200g/L 葡萄糖,0.1g/L 去甲肾 上腺素,1000U/L 垂体后叶素,10g/L 呋塞米(速尿)。 1.4实验方法: 1.4.1 手术准备 1.4.1.1 麻醉固定静脉麻醉从兔耳缘静脉注射200g/L 氨基甲酸乙酯(1g/kg 体重)。待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。 1.4.1.2 腹部手术从耻骨联合向上沿中线作长约4 厘米的切口,沿腹白线打开腹腔,将膀胱轻拉至腹壁外,先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,用止血钳提起膀胱前壁(靠近顶端部分),选择血管较少处,切一纵行小口,插入插管后膀胱即随着尿液的流出而缩小。用线结扎膀胱颈部以阻断膀胱同尿道的通路。使插管的引流管出口处低于膀胱水平,用培养皿盛接由引流管流出的尿液,手术完毕后,用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口。 1.4.2 实验观察 1.4. 2.1 连续记录正常尿流量(滴/min); 1.4. 2.2 按6~9ml/kg体重剂量静脉快速注射37℃ NS20ml,记录尿量最多时的数据; 1.4. 2.3 待尿量恢复稳定后静脉注射200g/LGS 5ml。记录尿量最多时的数据; 1.4. 2.4 待尿量恢复稳定后静脉注射0.1g/LNE0.3ml,记录尿量最少时的数据; 1.4. 2.5 按0.75 U/kg体重剂量静脉注射1000U/L垂体后叶素,记录尿量最少时的数据; 1.4. 2.6 待尿量恢复稳定后按5mg/kg体重剂量静脉注射10g/L呋塞米,记录尿量最多时的数据 2.结果 表1注射不同药物对家兔尿液生成的影响 药物尿量变化(滴/min) 注射前1分钟注射后1分钟 生理盐水 4 7

药物对家兔血压的影响

药物对家兔血压的影响 一.实验目的 掌握去甲肾上腺素和乙酰胆碱对家兔血压的影响 二.实验原理 血压的形成与心室射血、血管阻力和循环血量三个基本因素有关,通过神经—体液调节机制维持正常血压,传出神经药是一大类药物,或拟似神经递质,或拮抗神经递质,通过激动或阻断分布于心血管的肾上腺素受体和乙酰胆碱受体,影响心肌收缩性,血管的舒张与收缩程度,从而使血压升高或降低。 三.实验材料 家兔、兔手术台、哺乳类动物手术器械一套、动脉夹、动脉插管、血压换能器、双凹夹、铁支架、玻璃分针、细线、注射器(5ml)、小烧杯、台氏液、20%氨基甲酸乙酯、肝素(1000u/ml)、0.0001%乙酰胆碱、生物信号采集系统 四.实验方法 1.手术准备 (1)家兔称重,氨基甲酸乙酯按3-4ml/kg体重的剂量于耳缘静脉注射麻醉。麻醉剂不能过量,注射速度不能过快。 (2)动物仰卧与手术台上,用棉线拴住门牙,将绳子拉紧固定于固定台的铁圈上,固定四肢。 (3)暴露颈总动脉、颈静脉。分离,分别穿线备用。 (4)静脉注射肝素,剂量为1000u/kg体重。 (5)1分钟后(肝素在体内血液中均匀混合),左颈总动脉插插管,并在动脉下方穿一根线备用,用眼科剪在靠近结扎处剪一V形口,将动脉套管沿近心端插入颈总动脉,结扎。 2.装置仪器连接 (1)颈总动脉血压测量记录装置。将血压换能器固定于铁支架上,其位置应与心脏在同一平面 (2)生物采集系统的连接 3.观察项目 (1)观察正常血压波动曲线 (2)静脉注射0.001%的去甲肾上腺素0.5ml,观察血压变化并记录。 (3)静脉注射0.0001%的乙酰胆碱0.1ml/kg,观察血压变化并记录。 五.注意事项 1.采取保温措施,避免动物麻醉后体温下降 2.分离时,一定要小心,避免弄破血管。

家兔血压变化

结果讨论分析: 1血压的二级波是由于呼吸运动引起的血压波动。心搏为一级波,呼吸波为二级波。吸气时先是下降,继则上升;呼气时先是上升,继则下降,频率与呼吸频率一致。 2.夹闭对侧颈总动脉血压升高 3.刺激迷走神经血压下降 刺激迷走神经后,家兔的血压、心率恢复较快,说明迷走效应持续时间不长。 4. 刺激减压神经血压下降 刺激减压神经后,心率并不是预料中的无明显变化,变化明显,但不如刺激迷走神经显着。验证了刺激交感神经引起了迷走中枢的活动。 5.静脉注射0.1g/L去甲肾上腺素0.5ml,血压升高 注射去甲肾上腺素后,血压和心率都保持了长时间的变化,说明可能去甲肾上腺素对血压和心率的调节能力持续性好。 6.静脉注射10-2g/L乙酰胆碱(0.1ml/kg体重),血压下降 首先,乙酰胆碱作用与心脏的M受体,引起心率减慢,心肌收缩力减弱,房室传导减慢甚至阻滞,心输出量明显减少,血管舒张血压下降。其次,乙酰胆碱还作用于血管内皮的M受体,使血管内皮细胞释放“松弛因子”,引起血管平滑肌舒张,外周阻力下降。最后,乙酰胆碱激活交感神经的突触前M-R,产生突触前调制效应,导致交感神经末梢释放去甲肾上腺素减少,从而减少交感缩血管紧张效应。这不但可降低外周阻力,减少心输出量,还可扩张容量血管而减少循环血量,最终也导致了血压的下降。 注射乙酰胆碱后,血压急剧下降,而心率暂时没有减慢,可能是因为血压通过血压感受器对心率本身有调节效应,之后血压较快恢复之后,心率才明显减慢。这里血压和心率是交错受到乙酰胆碱调节的,但最终心率调节持续时间更长,说明乙酰胆碱更趋向于以调节心率为目的。 实验结论: 1.从以上实验分析中可以发现,无论是血管壁的被动收缩还是刺激不同的神经,其本质都是通过心交感神经与心迷走神经对心血管系统产生影响。即直接支配心血管活动的神经为交感神经和迷走神经。由于这两种神经节后神经末梢分别释放肾上腺素(去甲肾上腺素)和乙酰胆碱作为递质,因此肾上腺素(去甲肾上腺素)和乙酰胆碱所产生的效应与刺激两种神经是相对应的。 2.从以上实验分析中,可以总结出心输出量是影响动脉血压的因素:心输出量由两个因素决定:心搏出量和心率。心搏出量增加时,心脏射血增多,动脉血压会升高(主要是收缩压),心率增加时,心舒期缩短,流向外周的血液不充分,因此心舒末期留于主动脉的血量增多,致使血压增大。心迷走神经或心交感神经兴奋,作用于心肌细胞,控制心输出量,会影响血压的升降。

生理学实验报告_家兔尿生成的影响因素

华南师范大学实验报告学生姓名:谭晓东学号:20102501024 专业:生物科学年级、班级:10科四 课程名称:动物生理学实验实验项目:家兔尿生成的影响因素 实验类型:验证实验时间:2013年5月28日 实验指导老师:黄俊柅实验评分: 一.实验目的 学习输尿管、膀胱插管技术和尿液收集的方法;了解神经和体液因素对尿量的调节 二.实验原理 尿生成的过程包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收和分泌三个过程。凡能影响上述过程的任何因素,均可影响尿的生成并可引起尿量及尿的性质、成分的改变。本实验以家兔为实验对象,采用膀胱插管术收集并记录尿量,主要观察不同因素或药物对尿量的影响. 三.实验材料 1.动物:家兔 2.试剂:生理盐水、20%氨基甲酸乙酯溶液、20%葡萄糖注射液、肾上腺素、垂体后叶素、20%甘露醇. 3.器材:手术器械、生理信号采集系统,压力传感器、注射器 四.实验步骤 1.家兔麻醉:称重、麻醉:2%戊巴比妥钠,2ml/kg,耳缘静脉注射。固定:仰卧位固定2.气管插管术:剪毛、中线剪开颈部皮肤(6~7cm)、钝性分离颈部肌肉等组织,暴露气管、气管穿线、软骨环上做T形切口、棉签去气管中的血块、插气管插管,结扎。 3.分离右侧迷走神经,穿线备用 4.泌尿系统插管——全身抗凝:静脉注射肝素,注射剂量10mg/kg (1ml/kg) A、输尿管插管:分离两侧输尿管,各穿2棉线备用;一侧输尿管结扎近膀胱端-—结扎处往上做1/2切口—-向上插管——绑线、动脉夹固定。 B、膀胱插管:分离两侧输尿管;输尿管下穿线,结扎与尿道连接的位置;用大注射针头刺破膀胱壁,从穿孔处将插管插入膀胱内,结扎并固定,如膀胱未充盈,可先注射生理盐水,让膀胱壁变薄 4.仪器连接,观察正常尿量 5.改变影响因素 (1)。快速注射30ml生理盐水,记录尿量变化. (2).静脉注射肾上腺素0。2~0.3ml,记录尿量变化. (3).静脉注射20%葡萄糖15ml,记录尿量变化。 (4)静脉注射垂体后叶素(2单位),观察尿量变化 (5)静脉注射10%NaSO4(4ml),观察尿量变化 (6)刺激右侧迷走神经5~10 秒,观察尿量变化 (7)静脉注射20%甘露醇,观察尿量变化

家兔血压实验报告

家兔血压实验报告文件排版存档编号:[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]

家兔血压实验报告 家兔血压实验报告 实验报告 实验次序:一实验项目:家兔血压调节 班级:11临本姓名:符宏展学号:112号 实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析 实验时间:2016年4月11日 马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲 反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器 连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照 明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器

家兔尿生成的影响因素实验

家兔尿生成的影响因素实验 1.实验目的 1.1学习用输尿管插管记录尿量的方法 1.2观察几种因素对尿生成的影响? 2.实验原理 尿生成的过程包括:肾小球的滤过作用,肾小管与集合管的重吸收作用,肾小管与集合管的分泌作用.凡是影响这些过程的因素,都会因影响尿生成而引起尿量变化. 3.实验对象与实验材料 家兔常规手术器械、止血钳、剪毛剪、眼科剪、眼科镊、玻璃分针、棉花、滴管、纱布、 棉线、温热生理盐水、烧杯、污物缸、兔手术台、塑料绳、棉签、动脉夹、注射器、照明灯、保护刺激电极、支架、PowerLab生理实验系统、生物电输入线、受滴器、输尿管插管、接 尿器皿、麻醉剂(2%戊巴比妥钠2ml/Kg)、肝素溶液(200U/ml)、20%葡萄糖溶液、10%NaSO 溶液、肾上腺素(1:10000)、垂体后叶素(5U/ml)、20%甘露醇. 4.实验方法与步骤 4.1家兔称重,麻醉(耳缘静脉注射2%戊巴比妥钠2ml/Kg )、固定(仰式)、剪毛、剪颈部皮肤6~7cm钝性分离颈部肌肉等组织?暴露气管、穿线、手术刀手术剪T形切口,事先准备好的棉签将气管中的血块弄出,插好气管插管并结扎.分离右侧迷走神经穿线备用. 4.2输尿管和膀胱血管丰富,在插管之前先注射肝素抗凝(200U/kg体重). 4.3膀胱插管.先用棉线从输尿管下方穿线绕到膀胱底部将膀胱与尿道连接处结扎紧,防止 尿液从尿道排出,如果膀胱未充盈,可先用注射器注射生理盐水进入膀胱,让膀胱壁变薄后用大注射针头刺破膀胱壁,然后从穿孔处将充满生理盐水的细塑料管或插管插入膀胱内,确保尿液可进入插管,然后将膀胱壁和插管一起结扎并固定好,排出气泡,确保导尿管道充满“尿液”. 4.4安装调节好受滴装置,先打开Powerlab,后打开Chart软件,设置1个通道,调节通道 1(100mV,10Hz,DC直流电)和刺激器的参数. 4.5记录一段“正常”尿生成:观察有滴尿即可,并在通道1曲线可显示出尿滴的标记波动 变化.耳缘静脉注射温热生理盐水30ml (速度可快),观察尿滴和通道1的标记. 4.6待尿量平稳后,同法注射肾上腺素溶液0.2~0.5ml,观察尿滴标记. 4.7同上,注射15ml葡萄糖溶液观察.观察尿滴标记. 4.8注射垂体后叶素2单位观察.观察尿滴标记. 4.9注射10%NaSQ溶液4ml.观察尿滴标记. 4.10刺激右侧迷走神经200或300脉冲,观察家兔反应和尿滴变化. 4.11注射20%甘露醇3ml/kg体重.观察尿滴标记.

兔子实验报告

生理兔子实验报告 主题:血压测量、呼吸运动调节 实验班级:151541 实验小组:第三组 实验日期:2016年5月31日 具体分工:主刀:李睿哲 副手:朱梦洁、周紫星 麻醉:陈海芹、谢明思 器械管理:李部 实验数据记录整理:毕长鹏 一、实验目的: 通过对兔子的观察、研究和分析,更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程,更好地认识生物机体活动规律。 二、实验原理: 正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要,动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物,观察动脉血压的变化情况,可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。 呼吸运动能够有节律地进行,并与机体代谢水平相适

应,主要是由于体内外各种刺激,可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢,反射性地调节呼吸运动的结果。 三、实验器材: 实验动物:一只健康兔子( 实验试剂:20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备:兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针 四、实验步骤 1.实验仪器的准备 首先打开计算机采集系统,通道1接通压力换能器,通道2接通呼吸流量换能器,从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的(学生)实验”,使显示器显示压力和呼吸的读数,并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统 用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水,使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备

生理学:尿的生成和排出 (问答题)

202.简述尿生成的基本过程。尿生成的基本过程包括:(1)肾小球的滤过当血液流经肾小球毛细血管时,在有效滤过压的作用下,除了血细胞和大分子的血浆蛋白外,血浆中的水和小分子溶质通过滤过膜进入肾小囊的囊腔形成超滤液。(2)肾小管和集合管的重吸收超滤液进入肾小管后称为小管液。小管液流经肾小管和集合管时,其中的某些成分又通过小管上皮细胞转运至血液中。(3)肾小管和集合管的分泌小管上皮细胞可将自身产生的物质或血液中的物质转运至肾小管腔内。小管液经过上述过程后形成的尿液称为终尿。 203.简述近端小管重吸收Na+的机制。近端小管重吸收Na+的机制可因部位不同而不同:(1)近端小管前半段Na+的重吸收是①与葡萄糖、氨基酸的重吸收相耦联;②与H+的分泌相耦联。由Na+主动吸收建立起电化学梯度,小管液中Na+与葡萄糖、氨基酸等经同向转运体耦联转运进入上皮细胞而被重吸收,或由管腔膜上的Na+-H+交换体进行逆向转运。(2)近端小管后半段Na+的重吸收通过①跨上皮细胞途径:过程同前半段,经Na+-H+交换转运入细胞;②细胞旁路:由于近端小管HCO3﹣和水的重吸收多于Cl﹣的重吸收,使后半段小管液中Cl﹣高于管周组织间液,Cl﹣顺浓度梯度经细胞旁路(通过紧密连接进入细胞间隙)被重吸收回血。由此造成电位梯度,Na+便顺电位差而被动重吸收。 204.试述肾小管泌H +的意义肾小管分泌H +的意义:(1)促进NaHCO3

的重吸收肾小管上皮细胞每分泌1个H+,就可使1个HCO3-和1个Na+重吸收回血,Na+和HCO3-再组成的NaHCO3是体内重要的碱储。(2)促进NH3的分泌分泌的H+可降低小管液的pH值,使NH3容易向小管液中扩散。分泌的NH3与H+结合生成NH4+,并进一步与强酸盐(如NaCl)的负离子结合为铵盐随尿排出。强酸盐的正离子(如Na+)则与H+交换后和细胞内的HCO3-一起被转运回血。因此,H+的分泌具有排酸保碱维持机体酸碱平衡的作用。 205.肾小管和集合管的重吸收和分泌功能受哪些因素的影响和调节?影响和调节肾小管和集合管的重吸收和分泌功能的主要因素有(1)小管液中溶质的浓度:小管液中溶质所形成的渗透压,可阻碍肾小管对水的重吸收。使尿量增多,形成渗透性利尿。2)肾小球滤过率:肾小球滤过率改变将引起管周毛细血管血压、血浆胶体渗透压的改变,从而使近端小管对Na+、水的重吸收发生变化。(3)肾交感神经:肾交感神经兴奋引起球旁细胞释放肾素增加,导致循环血中血管紧张素Ⅱ和醛固酮含量增加,使肾小管对NaCl和水的重吸收增多;可直接刺激近端小管和髓袢对NaCl和水的重吸收。(4)血管升压素:血管升压素可提高远曲小管和集合管对水的通透性;增加髓袢升支粗段对NaCl的重吸收;提高内髓部集合管对尿素的通透性。(5)醛固酮:能够促进远曲小管和集合管对Na+的主动重吸收,同时促进K+的排出。(6)血管紧张素Ⅱ:通过刺激醛固酮和血管升压素的释放,间接影响肾小管和集合管的重吸收与分泌功能;刺激近端小管对NaCl的重吸收,使尿中排出NaCl减少。(7)心房钠尿肽:促进NaCl和水

4.兔血压实验报告

实验题目:传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响 班级:12级临七3班姓名:廖梦宇学号:2012021320 一、实验原理: 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应, 导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化,分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间 的相互作用。 二、实验目的: 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响 三、实验步骤: 1.麻醉:取家兔,称重,用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射; 2. 备皮:麻醉后,将家兔仰位固定于手术台上,剪去颈部的毛,正中切开颈部皮肤; 3. 气管插管:分离气管,在气管上作一倒“T”型切口,插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管:自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm,动脉下穿两根丝线。结扎远心 端,近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后,插入颈总动脉,并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压:将压力传感器连接于主机前面板的1通道,打开BL-410生物机能实验 系统,将1通道设置成血压和心电,点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min,记录正常血压和心率。 7. 给药:按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药:按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药:按下列顺序静脉给药 普萘洛尔 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 四、实验结果: 1.正常心率和血压:260次/分,115mmHg。

家兔动脉血压的神经体液调节(动静脉)

家兔动脉血压的神经体液调节 【实验目的】 1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法 2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响 【实验材料】 家兔 器材:手术台,止血钳,眼科剪,BL420E+生物机能分析系统,气管插管,动脉套管,动脉夹,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器 试剂:生理盐水,肝素,乌来糖(麻醉剂),肾上腺素,乙酰胆碱 【实验步骤】 1.手术 (1)麻醉取家兔一只,称重,耳缘静脉注射麻醉剂(1g/kg)进行麻醉。麻醉过程要缓慢,当动物角膜反应迟钝,掐其大腿无反应,即可停止注射,避免过度麻醉致死。 (2)将动物背位交叉固定,将颈部喉结下部毛剪掉。 (3)仅靠喉结下缘,沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口,将皮下结缔组织钝性分离,至露出气管,穿线,用手术刀在气管上做一横切口,插入气管插管,结扎。 (4)分离颈部神经血管:分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织,在接近气管外侧,有一条较细,壁厚的血管,即为主动脉血管(可看出里面血流规律性搏动)。与主动脉伴行的有两条较粗的神经,最粗的为迷走神经,其次为交感神经,两者之间有一条很细的神经,减压神经。但减压神经的位置不固定,两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经,可以进行刺激试探。确定迷走神经和减压神经后,分离出减压神经,迷走神经,主动脉血管,分别穿线备用。 (5)动脉套管插入:动脉套管插入前,需准备好压力换能器记录血压的装置。用注射器将肝素生理盐水注入套管,至将其中所有空气由插孔处排出,用肝素生理盐水代替。注入处用止血钳将胶管夹住。保证其中不能有空气。准备好动脉套管装置后,用动脉夹夹住近心端,远心端动脉结扎,在两者之间剪一小口,迅速插入动脉套管(动作迅速,否则动脉管腔急剧收缩,难以插入套管),用线将动脉插管固定于动脉内,并挂在套管(缠一圈胶布)上,以免滑脱。 (6)松开动脉夹,即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。此时即可开始进行试验,记录曲线。 2.曲线描记 (1)描记一段正常曲线,识别一级波(心波),二级波(呼吸波)。 (2)提起另一侧颈总动脉的备用线,动脉夹夹闭5-10s,观察记录血压变化,分析原因。(3)中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经,观察血压变化。双结扎后切断,再刺激减压神经神经的中枢端和外周端,观察记录血压变化。 (4)对另一侧迷走神经进行同样处理,分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。(5)耳缘静脉注射肾上腺素,观察血压变化。 (6)耳缘静脉注射乙酰胆碱,观察血压变化。

临检--尿量

尿量 (一)参考值 成人:1000~2000ml/24h。 儿童:按儿童每公斤体重计排尿量,约为成年人3~4倍。 正常人尿量昼夜之比为(3~4):1 (二)临床意义 1.多尿指24h尿总量超过2500ml者,儿童超过3L。 (1)生理性多尿 1)饮水过多或食用含水分高的食物。 2)服用有利尿作用的食品,如咖啡等。 3)使用某些药物,如咖啡因、噻嗪类、脱水剂等。 4)静脉输注液体过多,如输用生理盐水、糖盐水或其他液体等。 5)精神紧张、癔病等,可引起暂时性、精神性多尿。 (2)病理性多尿 1)内分泌疾病:如尿崩症,指抗利尿激素(ADH)严重分泌不足或缺乏(中枢性尿崩症),或肾脏对ADH不敏感或灵敏度减低(肾源性尿崩症),患者24h尿量可多达5~15L;尿比密常为1.005以下,尿渗透压在50~200mmol/L之间。多尿还见于甲状腺功能亢进、原发性醛固酮增多症等。 2)代谢性疾病:如糖尿病(DM)引起的多尿,主要机制是渗透性利尿所致,患者尿比密、尿渗透压均增高。 3)肾脏性疾病:如慢性肾炎、慢性肾盂肾炎、慢性肾功能衰竭早期、肾小管酸中毒Ⅰ型、急性肾功能衰竭多尿期、失钾性肾病等。肾小管破坏致肾浓缩功能逐渐减退均可引起多尿。肾性多尿常具有昼夜尿量的比例失常、夜尿量增多的特点,即昼夜间尿量比<2:1。 2.少尿指24h尿量少于400ml,或每小时尿量持续小于17ml(儿童<0.8ml/kg)者为少尿。 生理性少尿:多见于机体缺水或出汗过多,少尿可能在机体出现脱水的临床症状和体征之前。 病理性少尿:如急性肾衰、慢性肾病。 (1)肾前性少尿:由于各种原因造成肾血流量不足,肾小球滤过率减低所致。 1)肾缺血:各种原因引起的休克、过敏、失血过多、心力衰竭、肾动脉栓塞、肿瘤压迫等。 2)血液浓缩:严重腹泻、呕吐、大面积烧伤、高热等。 3)血容量减低:重症肝病、低蛋白血症引起全身水肿。 4)应激状态:严重创伤、感染(如败血症)等。 (2)肾后性少尿:多是由于各种原因所致的尿路梗阻引起。 1)肾或输尿管结石、损伤、肿瘤、凝块或药物结晶(如磺胺类药)、尿路先天性畸形等。 2)膀胱功能障碍、前列腺肥大症、前列腺癌等。 (3)肾性少尿:因肾实质的病变导致肾小球和肾小管功能损害所致。在排除肾前和肾后性少尿后,可考虑肾性少尿。 1)急性肾小球肾炎、急性肾盂肾炎、慢性肾炎急性发作、急性间质性肾炎以及急性肾小管坏死等。此种尿具有高渗量的特性。 2)慢性疾病所致肾功能衰竭时,也可出现少尿,但特征为低尿比密、低尿渗量性少尿,

兔血压实验报告

实验题目:传出神经系统药物对家兔心血管系统 的影响 班级:12级临七3班姓名:廖梦宇学号: 2012021320 一、实验原理: 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受 体而产生心血管效应,导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化,分析肾上腺素受体 激动剂与拮抗剂之间的相互作用。 二、实验目的: 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率 的影响 三、实验步骤: 1.麻醉:取家兔,称重,用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉 注射; 2. 备皮:麻醉后,将家兔仰位固定于手术台上,剪去颈部的毛,

正中切开颈部皮肤; 3. 气管插管:分离气管,在气管上作一倒“T”型切口,插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管:自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm,动脉下穿两根丝线。结扎远心端,近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后,插入颈总动脉,并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压:将压力传感器连接于主机前面板的1通道,打开BL-410生物机能实验系统,将1通道设置成血压和心电,点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min,记录正常血压和心率。 7. 给药:按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药:按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药:按下列顺序静脉给药

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