实验动物学实验报告
实验动物学课程
实验报告
实验内容：
1. 小鼠的基本实验操作
2. 小鼠皮肤移植试验、睾丸（或卵巢）摘除术
3. 豚鼠和兔的一般操作技术
4. 大鼠实验的基本操作
5. 大鼠性周期观察和大鼠急性肺水肿模型建立
6. 小鼠无菌取胎术
7. Beagle犬的一般操作和沙鼠、金黄地鼠、裸小鼠的特性
实验一小鼠的基本实验操作
一、实验目的:通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓取和固定、性别鉴定、编号、去毛、给药、采血、麻醉、处死，尤其是染色法编号、灌胃、眼球摘除法采血、腹腔注射、脊椎脱臼法处死。
二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）
三、实验步骤
1、抓取和固定
2、性别鉴定
3、编号（染色法）
4、去毛（脱毛剂法）
5、给药：消化道、腹腔注射、尾静脉注射
6、采血：眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法
7、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉
8、处死：脊椎脱臼法、过量麻醉
9、解剖：
9.1 生殖系统：
9.1.1雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺（在膀胱下方，胶质状，透明）
9.1.2雌性：双角子宫、卵巢
9.2 肾上腺、胰腺、胆囊、甲状腺
四、实验结果
1、抓取和固定：
抓取：抓小鼠的尾根部
固定：抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
2、性别鉴定：
观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性：距离长，毛发密（和其
他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。
3、编号：
3.1染色法：
3.1.1用苦味酸（黄色）在小鼠背面染色
3.1.2逆毛发生长方向染色，自毛根开始
3.1.3可编1-10号（10号为不编号）
3.2去毛：脱毛剂：8% Na2S，自毛发根部涂抹
3.3 给药：
3.3.1 灌胃法：左手抓取小鼠固定后，右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，
紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，进针2/3后灌生理盐水0.5ml
3.3.2 注射给药：
3.3.2.1腹腔注射：
3.3.2.1.1从下腹部的两侧进针
3.3.2.1.2进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针，如无粘滞感则可
注射药物
3.3.2.2尾静脉注射：一人固定小鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食
指托住尾部，消毒后右手持带4号针头的注射器在图示A（背面，实为动脉）
位置进针注射0.5ml生理盐水。注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血。尾
动脉细小，且贴近皮肤，未注射成功。
小鼠尾静脉切面图
3.4 采血
3.4.1 ：从眼角内侧0.5cm处
进针。（右图）
3.4.2 眼球摘除法：左手抓取
用固定小鼠，右手持弯头镊在
眼球根部将眼球摘除，头朝下，
眼眶内血迅速流出。
3.5 麻醉：
0.5%氯胺酮腹腔麻醉：本小鼠重25g，按100mg/kg的药量给药，8分钟麻醉成
功
3.6 处死：
3.6.1 脊椎脱臼法：按住头部，将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死
3.6.2 过量麻醉：追加0.5%氯胺酮过量（5ml）腹腔麻醉
3.7 解剖：
3.7.1生殖系统：
3.7.1.1 雄性：寻
找到睾丸、附睾、
输精管、鼠蹊腺
3.7.1.2 雌性：双
角子宫、卵巢
3.7.2 肾上腺：米粒大
小
3.7.3 胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状
3.7.4 胆囊：芝麻大小，浅绿色，半透明
3.7.5 甲状腺：紧贴环状软骨
五、实验讨论
1、小鼠抓取的感受：
小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定，如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作，如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。
2、小鼠尾静脉注射感受：
首先，注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射；其次，先远后尽，不要一开始就从尾根部，那样失败了不好办；再次，进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。
尾静脉就在尾巴的正左右两边，先用酒精用力擦，可以去掉部分角质，然后按住近心端让充血，就很容易看到了。进针大概1～2厘米是最合适的。
尾静脉注射时，可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭，可使血管扩张，同时也可软化表皮角质。以左手拇指和食指夹住鼠尾，使静脉充盈，中指帮助无名指和小指捏住鼠尾末梢，右手持注射器（连5号细针头），针头与静脉夹角一般小于30度，从距尾尖2 - 3厘米处进针，此处皮薄易进入，先抽回血，见到血后再缓慢注入少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。一般推注速度为0.05 - 0.10ml/秒，一次注入量为0.05 -
0.25ml/10g体重。如反复注入，应尽可能从尾末端开始，以后向尾根部方向移动注射。
实验二小鼠皮肤移植试验、睾丸（或卵巢）摘除术
一、实验目的
1.掌握近交系小鼠常用的皮肤移植试验（尾～背植皮法，尾～尾植皮法）。
2.掌握小鼠卵巢摘除术和大鼠睾丸摘除术
二、实验步骤
1、近交系小鼠常用的皮肤移植试验
1.1 尾～背植皮法
1.2尾～尾植皮法
2、小鼠卵巢摘除术
2.1 固定体位、麻醉
2.2 卵巢摘除
三、实验结果
1、近交系小鼠常用的皮肤移植试验
1.1尾～背植皮法：
1.1.1 将近交系小鼠（受体）固定后（已
麻醉），背部剪毛（约1.5cm×1.5cm大小），
75%酒精常规消毒。用眼科剪在此部位剪
开一个0.3cm×0.3cm大小的方形洞备用。
1.1.2将近交系小鼠（供体）固定后（已
麻醉），75%酒精常规消毒鼠尾。用眼科剪
沿尾静脉剪开一条缝，用止血钳将皮肤剥
下，剪成0.5cm×0.5cm大小，刮掉皮片
上的结缔组织。
1.1.3将供体皮片（0.5cm×0.5cm大小）覆盖在受体背部的方形洞（0.3cm×0.3cm
大小）内，铺平，用棉球吸去渗出的血液，使植皮紧贴受体的创面，并与宿主的
边缘密切吻合。
1.1.4无菌纱布覆盖植皮区，胶布包扎（此步骤本实验中省略）。
1.1.5 1～3周后观察结果
1.2 尾～尾植皮法（本实验中为自体尾～尾移植）：
1.2.1 将近交系小鼠固定后（已麻醉），75%酒精常规消毒尾部皮肤。
1.2.2 固定鼠尾的根部，用4号手术刀在鼠尾背部切开一0.5cm×0.5cm大小的皮
片，尽量不损伤局部血管，用止血钳将皮肤剥下。
1.2.3 将皮片旋转180°，镶嵌在创面上，棉球吸去局部渗出的血液和组织液，使
其尽可能紧贴，可以不包扎。
1.2.4 1～3周后观察结果（100天）
2、小鼠卵巢摘除术
2.1 固定体位、麻醉：
选雌性小鼠，取左侧卧位，以左腹外侧区（左肋弓下缘）为手术区，局部剪毛，75%酒精消毒两遍后，用0.5%氯胺酮以100mg/kg的剂量（本实验：0.5ml）进行腹腔麻醉，5分钟后小鼠静卧于手术台上，呼吸深大而有节律，频率略快，四肢肌肉松弛，麻醉成功。
2.2 卵巢摘除：
用手术刀在左肋缘下，取腹正中线平行方向切开皮肤1cm，暴露腹腔内容物。拨开肠管，找到右肾。在右肾下方找到右侧卵巢和右侧子宫角。游离右侧卵巢并摘除。局部消毒，缝合腹膜、腹壁肌肉和皮肤。
按上述方法摘除左侧卵巢（另一位同学操作）。
四、实验讨论
1、近交系小鼠常用的皮肤移植试验
1.1 皮肤移植实验是用于鉴定近交系动物组织相容性基因是否一致的简单而可靠的方
法。
1.2 尾～背植皮法：将小鼠尾部皮肤移植到同品系的异体小鼠的背部，通过观察移植皮
片和背部其他区域的毛发稀疏和皮肤光泽异同来鉴定二者的组织相容性。如果组织相容性好，植皮色泽与周围一致，没有充血或炎症，移植皮片毛少而光泽。若组织相容性基因不纯合，尾皮在术后1～3周内被排斥，，植皮脱落，背部留下一块伤痕。另外，供体皮片应略大于受体创面以充分吻合，以免因皮片边缘缺血坏死而导致愈合后创面周边皮肤不连续。
1.3 自体尾～尾植皮法：可以鉴定植皮的脱落是否是手术失败而造成。移植时应将皮片
旋转180°，以利于术后通过毛发生长的方向观察植皮是否存活。
2、小鼠卵巢摘除术、大鼠睾丸摘除术
2.1 小鼠卵巢摘除术：进入腹腔后，可以先找到肾脏。然后在肾脏下方查找卵巢并摘除。
2.2 行卵巢或睾丸摘除术时应将两侧的卵巢或睾丸均摘除。
实验三豚鼠和兔的一般操作技术
1.实验目的
通过实际操作，掌握豚鼠和兔的一般操作方法和尸体解剖及病理取材方法，包括豚鼠和兔的抓取和固定、编号、性别鉴定、灌胃、给药途径、麻醉、采血和处死等方法。
2.实验动物：新西兰兔，豚鼠（各1只）
3.实验步骤
3.1豚鼠的抓取和固定
抓取豚鼠应先用手掌抓住背部，将手张开，用拇指和食指握住颈部，再拿起来。
3.2豚鼠的性别鉴定
将豚鼠抓取后，观察肛门与生殖器之间的距离，距离近者为雌性，距离远者为雄性。
3.3豚鼠的给药
腹腔注射：自下腹部两侧进针，可避免刺伤肝、脾或膀胱。
3.4豚鼠的采血
心脏采血法：由助手抓取豚鼠，左手固定头部和两前肢，右手固定两后肢和尾部，
使胸部突出。操作者用酒精消毒皮肤，在左侧第3~4肋间用左手食指触摸心脏搏动。
右手持连有4~5号针头的注射器，选择心脏搏动最强处穿刺。当针头刺入心脏内时，血液回流进注射器，即可进行采血。
3.5豚鼠的解剖
观察器官：脾脏、小肠和大肠、肝脏、胆囊、胃、十二指肠和胰腺、肾上腺、肾脏、膀胱、睾丸、附睾或子宫、卵巢、肝脏、心脏、甲状腺、脑、垂体。
3.6兔的抓取和固定
右手抓住颈部的被毛与皮肤，提起兔，然后用左手托住它的臀部。
3.7兔的性别鉴定
左手抓去兔子的背部皮肤，右手拇指和食指把生殖器附近的皮肤扒开，雄兔可见有
一圆孔，里面露出阴茎；雌兔此处为一条朝向尾巴的长缝，呈椭圆形间歇，下端有
阴道开口处。雌兔有8~12个乳头。
3.8兔的给药
3.8.1经口灌胃法：灌胃时用一木制张口器横放于上下腭之间，用绳固定。这时
可用左手抓住动物的嘴，右手将一适当粗细的导尿管由张口器中央小孔插
入，进入食管和胃。将装有药液的注射器接上导尿管，即可慢慢灌入胃内。
3.8.2注射给药：耳缘静脉注射法：将兔固定好。把去耳缘部被毛，用二甲苯擦
拭耳缘，促使静脉充盈。用左手拇指和食指压住耳根部，右手持连有4号
针头的注射器，顺血管平行方向刺入静脉，进针约1cm，如有血液回流，
即可进行注射。注射完毕，拔出针头，用棉球压迫止血。
3.9兔的采血：耳缘静脉采血法：采血方法同兔耳缘静脉注射法。
3.10兔的处死：
空气栓塞法：从兔的静脉内注入一定量的空气，使之发生空气栓塞。
3.11兔的解剖：观察器官：脾脏、小肠和大肠、肝脏、胆囊、胃、十二指肠和胰
腺、肾上腺、肾脏、膀胱、睾丸、附睾或子宫、卵巢、肝脏、心脏、甲状腺、脑、
垂体。
4.实验讨论
4.1豚鼠生性胆小，不咬人，抓时不能太粗野，更不能用力抓腰腹，否则容易造成肝破
裂而引起死亡。
4.2家兔比较驯服，不咬人，但爪尖利，不正确的抓取容易被其抓伤。抓取时不要抓其
两耳，也不要托拉四肢或提握腰部。根据实验需要进行固定，如需耳静脉采血、注
射时，可用兔盒固定；如要测量血压、呼吸等实验和手术时，可将兔固定在兔手术
固定台上。
4.3室温较高时，雄性豚鼠的睾丸会从腹腔降到阴囊内，此时易于区别。
4.4兔耳缘静脉采血法，每次采血量为1.0~
5.0mL。由于兔的体型较大，心脏采血较豚
鼠容易，一次采取全血量的1/6~1/5，一周后可重复采血。如采血致死，可采
50~100mL。
4.5使用空气栓塞法，兔需要20~40mL空气。本法方法简单、迅速，但由于动物死于急
性循环衰竭，各脏器凝血十分明显。
4.6解剖时可发现，豚鼠的肠道长度为体长的10倍，盲肠特别发达，占腹腔容积的1/3。
兔的盲肠比例亦大，回肠和盲肠相接处膨大形成一个厚壁的圆囊，称为圆小囊，实
质为淋巴球囊，为兔所特有。雌兔有2个完全分离的子宫。兔颈部有减压神经独力
分支。
左图为豚鼠翻开肠道后暴露腹膜后器官，可见双条形的子宫。
右图为兔圆小囊结构，位于回结肠交界处。
5.实验感受：
实验动物的基本操作是科研操作的基本技术，熟练掌握各种动物手术对于完成科研任务有重要的作用。
实验四大鼠实验的基本操作
一、实验目的
通过实际操作，掌握大鼠的一般操作方法，包括大鼠的抓取和固定、性别鉴定、编号、去毛、给药、采血、麻醉、处死。
二、实验步骤
1、抓取和固定
2、性别鉴定
3、编号（染色法）
4、去毛（剪毛）
5、给药：消化道、腹腔注射、尾静脉注射
6、采血：眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法
7、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉
8、处死：脊椎脱臼法、过量麻醉
9、解剖：
9.1生殖系统：
9.1.1雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺（在膀胱下方，胶质状，透明）
9.1.2雌性：双角子宫、卵巢
9.2肾上腺、胰腺、胆囊、甲状腺
三、实验结果
1、抓取和固定：左手抓住大鼠的尾根部，右手的食指和无名指卡住大鼠头部两侧，右手的拇指和食指同时捏住大鼠的左上肢。或一手一把抓住头部两侧及双上肢根部
2、性别鉴定（同小鼠）：观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发：
2.1雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）
2.2雌性：距离短，毛发稀疏
3、编号：
3.1染色法（最常用）：
3.1.1用苦味酸（黄色）在大鼠背面染色
3.1.2逆毛发生长方向染色，自毛根开始
3.1.3因为大鼠体形大，一般一笼内养1～5只，1～5号编号同小鼠（实验一所示），
3.2 同时结合笼子的编号加以区别
4、去毛：
4.1剃毛：可用电动剃须刀剔除大鼠毛发
4.2剪毛：剪毛之前先用酒精湿润
5、给药：
采用灌胃法：左手抓取小鼠固定后，双下肢及尾部另请一人协助。右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，顺利进针后灌生理盐水0.5ml
6、注射：
6.1腹腔注射：
6.1.1妥善固定大鼠后，从下腹部的两侧进针
6.1.2进针时针与腹部成45°，进针后稍微晃动针并回抽，如无粘滞感且没有回血
则可注射药物
6.2肌肉注射：大鼠下肢肌肉发达，可在大腿外侧进行肌肉注射
6.3尾静脉注射：一人固定大鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食指托住尾部，
消毒后右手持带4号针头的注射器在图示A（背面，实为动脉）位置进针注射0.5ml生理盐水。注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血。尾动脉细小，且贴近皮肤，注射难度较大。
大鼠尾静脉切面图
7、采血：
7.1眼眶后静脉丛：从眼角外下方或前下方进针，然后立即拔针，用自制毛细管取血。
7.2眼球摘除法：未尝试
7.3尾静脉采血：按摩大鼠尾部使静脉充盈，用注射针头刺破血管后，挤压尾部取血，
血量较少，仅采集到一滴。
8、麻醉：
0.5%氯胺酮腹腔麻醉：本雌性大鼠重350g，按100mg/kg的药量给药，10分钟麻醉成功9、处死：
9.1脊椎脱臼法：按住头部，将尾根部向后上方以短促的较大的力量拉即可致死
9.2过量麻醉：追加0.5%氯胺酮过量（2ml）腹腔麻醉
10、解剖：
10.1颅部：
10.1.1视交叉：将大鼠过量麻醉致死后，剪开颅顶部皮肤，暴露颅骨，用镊子咬
除颅顶部骨，充分暴露大脑半球。用镊子从额部将脑组织翻至枕后，可见位于颅底
的视交叉、视神经和视束（白色纤维）
10.1.2垂体：夹断视神经，充分暴露颅底，可见位于垂体窝中的垂体，色白，米
粒大小。
10.2颈部：
甲状腺：紧贴环状软骨，较小鼠明显。
10.3腹部：
10.3.1肾上腺：米粒大小
10.3.2胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状
10.3.3胆囊：缺如
10.3.4睾丸：大鼠睾丸体积较大
10.3.5子宫：子宫为双角型，双侧卵巢被大量脂肪组织所包裹
11、称重：
四、实验讨论
1、 抓取和固定：
（1） 大鼠牙齿和爪子锐利，个头大，抓取时要小心，不要被其抓伤或咬伤。 （2） 初学者为确保安全，可佩戴棉纱手套。 （3） 提尾部时应靠近尾根部提取，以防大鼠身体摇晃，或扭头过来咬人。 （4） 一手不容易固定时，可另请另一人协助操作。
2、 性别鉴定：同小鼠。另外健康雄性大鼠的体重明显超过同龄雌性大鼠 4、编号：
（1）常用苦味酸染色法，也可用专门打孔器进行耳部打孔编号。
（2）大鼠体形大，笼养数量有限，可结合染色和笼子编号以区别，方便实验。 5、给药：采用灌胃法：
（1）为最常用的给药方法。 （2）待固定稳当后再进针。
（2）如进针不顺，须暂停操作，以免激若大鼠，妨碍实验顺利进行。 6、注射：
6.1腹腔注射：注意妥善固定，最好一人固定头部和上肢，另请一人固定双下肢和尾部，以免进针时大鼠挣扎妨碍操作 6.2肌肉注射：要选择肌肉丰满耳无大血管通过的大腿外侧进针
6.3尾静脉注射：尾静脉鳞片厚，虽然肉眼可见血管，但成功率低，一般少用。
胃 脾脏 肾脏 肺
肝脏 睾丸 心脏
双角子宫
7、采血
尾静脉采血：对动物损伤小，采血后感染率低，适用于大鼠的血糖监测。
8、麻醉：对于不同个体，由于对麻醉药的耐受性不同，在麻醉过程中应随时检查动物的呼
吸和外周血液循环、心跳等反应，剂量不够时可适当加量
9、处死方法选择原则：
（1）尽量避免因处死方法不当而造成病理损害，影响实验结果
（2）尽量使动物快速、安静、无痛苦死亡
10、解剖：
（1）颅部：大鼠视神经发达，很容易找到视交叉。
（2）胆囊：缺如，这是与小鼠的不同之处。
实验五大鼠性周期观察和大鼠急性肺水肿模型建立
实验动物：SD大鼠1只（雌）
【实验目的】
1．通过实际操作掌握大鼠阴道涂片的制作方法和性周期观察。
2．通过实验掌握大鼠急性肺水肿模型的建立，了解诱发型动物模型的制作方法。
【实验步骤】
一、大鼠性周期观察
1、固定大鼠：左手抓取大鼠，食指和中指卡紧大鼠颈部，拇指和无名指握住胸部，小指固
定腹部，右手拉住尾部和双下肢，稍用力后拉，充分暴露雌鼠的阴部。
2、采集阴道分泌液、涂片：另一人用滴管吸生理盐水2滴，插入大鼠阴道深部，冲洗3次，
吸出冲洗液，分别滴1滴在两个载玻片上，用第3块玻片推片，自然晾干（10分钟）。
3、染色和镜检：用姬姆萨染液染色30分钟，细流水小心冲洗，然后在显微镜下观察。
二、大鼠急性肺水肿模型的建立
1、氯化铵腹腔注射：按上述方法固定大鼠后，抽取6%氯化铵3.5ml（本大鼠重量360g，按
1ml/100g药量），从左侧下腹部进针，无粘滞感后注射氯化铵。8分钟后仅见大鼠活动减少无其他异常改变，又追加6%氯化铵0.5ml
2、尸体解剖：大鼠出现兴奋、肌肉震颤，继而死亡后立即尸体解剖，直接打开胸腔，结扎
气管交叉稍上方，自结扎处上方剪断气管，游离周围组织和心脏，取出肺脏，观察形态学改变，并在台式称上称重。
3、计算肺重量系数=肺脏重量（g）/ 大鼠体重（g）×100%。
【实验结果】
一、大鼠性周期观察
阴道脱落细胞涂片、染色、镜检：
显微镜下看到大鼠发情间期的部分改变：有核细胞和少量上
皮细胞，也看到少量白细胞。右图所示为20×显微镜下观察到的
情况。
二、大鼠急性肺水肿模型的建立
1.腹腔注射6%氯化铵3.5ml后大鼠的活动明显减少，呼吸急促，出现肌无力，静俯于桌上。
20分钟后首先出现张口呼吸，点头样呼吸，口唇紫绀，鼻翼煽动，约15秒钟后出现肌肉震颤，持续约30s，然后发生抽搐、昏迷，最后死于呼吸衰竭。如下图所示。
2.尸体解剖：肺肿胀，包膜紧张，大部分肺表面出现暗红色斑块，切开有少量红色泡沫样
液体流出;胸腔内有液体积聚，如下图。
3.将气管结扎后，称取全肺质量，为
4.3g，实验前称取大鼠质量为385g
则本实验中，
肺重量系数=肺脏重量（g）/ 大鼠体重（g）×100%=4.3g/385g×100%=1.11%＞1% 【实验讨论】
1．大鼠性周期观察
a)大鼠性周期为4～5天，由于大鼠有昼伏夜行的习性，一般在下午不能看到大鼠的
发情期。本大鼠处于发情间期
b)大鼠的阴栓一般在24小时后脱落。所以观察期间笼具必须保持整洁，不能放置刨
木花。看到阴栓说明交配成功，受孕率为70～80%。
c)大鼠春秋两季的受孕率较夏冬两季高。
d)大鼠性周期阴道脱落细胞变化情况如下表所示
表1 大鼠性周期阴道脱落细胞变化情况
2.大鼠急性肺水肿模型的建立
2.1 按提供的氯化铵剂量（8ml/kg体重，即3ml）腹腔注射后，大鼠未及时出现呼吸
运动改变，可能原因：
2.1.1称重欠准确；
2.1.2药品浓度未达到标准浓度；
2.1.3个体对药物的反应有差异。
可结合具体情况适量追加，实验中追加了0.5mlNH4Cl，很快就观察到了呼吸急促、抽搐等现象。
2.2注射氯化铵前大鼠呼吸、运动均正常。注射足量氯化铵20分钟后大鼠出现典型的
呼吸、运动改变。尸体解剖后肺脏也出现典型的肺水肿表现，肺重量系数也达到肺水肿的标准，实验成功，对比其它小组的实验结果，总结几点经验：
2.2.1本组大鼠出现呼吸改变反应的时间相对其它小组长，可能是引起肺水肿较显著的原
因，因其呼吸、循环衰竭时间较长，病理改变较为明显；
2.2.2解剖时，本组在气管位置即结扎，减少了一部分如气管的泡沫状液体的丢失；
2.2.3解剖较为及时，在其死亡后第一时间即开胸去肺；另外操作时也未将肺损坏，标本
较为完整。
2.3氯化铵导致大鼠急性肺水肿的机制可能为
2.3.1氯化铵进入体内破坏了体液平衡，使得肺泡比毛细血管通透性增加，致肺泡壁气-
血、气-液屏障破坏，大量浆液渗向肺间质及肺泡
2.3.2氨是神经毒性物质，高浓度的氨与三羧酸循环中间产物结合，导致其无法正常运转，
ATP生成收到严重阻碍，脑功能受损，从而引起大脑皮层功能抑制，皮层中枢兴
奋性增高，引起机体抽搐，同时心肌收缩力加强、心率加快、心肌耗氧量增加，
使得皮肤、黏膜及内脏小血管收缩，导致体循环血管和肺血管剧烈收缩使得心脏
后负荷明显增加，打破Starling定律平衡引起动力性水肿。
实验六 小鼠无菌取胎术、
实验动物：KM 小鼠1只（怀孕15天后） 一、实验目的：
通过示教了解无菌取胎术培育无菌小鼠的基本原理和操作步骤。 二、实验步骤：
1. 无菌待乳鼠准备（省略）
2. 剖腹鼠的准备：清洁级小鼠，预产期前1天（本实验估计在预产期前1周内）进行手术
3. 无菌取胎术
3.1 用颈椎脱臼法将孕鼠处死。
3.2 将孕鼠仰卧位固定，用剪刀沿腹中线剪开腹部皮肤、腹肌和腹膜，用丝线分别结扎子宫颈部和和两侧子宫和卵巢韧带，剪断后取出子宫，浸泡冲洗（本实验省略），剪开子宫，尽快将胎鼠连同胎盘一同取出，棉球擦净口鼻部黏液，按摩胸腔和腹腔促使新生鼠开始呼吸。
然后剪断脐带。检测体长、尾长、体重。 三、实验结果：
1 按照实验步骤剖开小鼠（图1），可见子宫与胎鼠（→）及子宫和卵巢韧带（■）。
2 暴露并结扎子宫颈部和两侧韧带后，取出子宫，剪开子宫，将胎鼠和胎盘取出，逐一用棉球擦拭，并进行按摩，12只胎鼠中10只为活胎，2只为死胎。剪断脐带后于手中保温。
3 存活胎鼠形态如图2，可见呼吸爬动，肝脏特别大，占据大部分腹腔，透过腹壁可清楚看到，为暗红色。 四、实验讨论：
1 由于胎盘屏障的作用，在一般情况下，体内的正常微生物和病原微生物（个别除外）不能通过胎盘屏障，所以胎鼠处于无菌状态。通过无菌剖腹取胎术，并由无菌母鼠代乳、维持在隔离器中可以获得无菌动物。
2 尽量在接近预产期时进行手术，以保证胎鼠的存活。
图1 受孕小鼠子宫形态
图2 胎鼠
3 操作过程严格要求无菌，包括无菌代乳鼠的准备。
4 剪开子宫后应尽快将胎鼠连同胎盘一同取出，以保证胎鼠的存活
5 代乳前应将剖腹产的新生鼠放入原代乳鼠笼中染味，再放入无菌代乳鼠哺乳，以免代乳鼠拒哺。
实验七 Beagle犬的一般操作
沙鼠、金黄地鼠、裸小鼠的特性
实验动物：Beagle犬，沙鼠、金黄地鼠、裸小鼠
一、实验目的：
1 观看和了解Beagle犬的一般操作，掌握抓取和固定、静脉采血、心电图检查。
2 了解沙鼠和金黄地鼠的特性。
二、实验步骤：
1 Beagle犬的一般操作方法：（1）抓取与固定；（2）静脉采血法。
2 听讲和观看金黄地鼠的部分特性。
3 听讲和观看裸鼠的部分特性。
三、实验结果：
1 Beagle犬的一般操作方法
1.1 抓取和固定
1.1.1 套、钳法（听讲）：用套钳套住犬的头部，然后收紧套钳，将犬的头部按在地上。1.1.2 网罩法（听讲）：将网罩口对向运动中的犬，然后把网罩扔向犬，将犬套住。然后再用套钳固定犬。
1.1.3 固定：先将绷带固定犬的上颌，在上颌的上方打结，然后将绷带从两侧绕到下颌的下方，在此打结，最后将绷带从犬的头部两侧绕到枕部后方，再打结固定绷带。
1.2 静脉采血法：将犬固定后，用压脉带绑在采血部位（前肢的头静脉或后肢的小隐静脉）的稍上方，可扪及充盈的静脉。用一次性5ml的针筒进针，采到静脉血1ml。
2 金黄地鼠的特性：皮肤松弛，外貌憨厚，两侧有硕大的颊囊，可储存食物。
3 裸小鼠的特性：无毛、裸体和无胸腺。
实验动物学试题及答案
《实验动物学》复习题及答案 1、小鼠的给药途径有那些？请演示一下 答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45 度角刺入腹腔，进针约3～5mm。 肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉，如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药 尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针 2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药 答：（1）小鼠的捉持：捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。 （2）大鼠的捉持：大鼠的捉拿时，可戴上手套。实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。 （3）灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 3、大鼠的给药方法有那些？请演示一下常用的给药方法 答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45 度角刺入腹腔，进针约3～5mm。
实验动物学重点题库
复习题 1、简述动物实验中3R原则内容及其意义。 Replacement 替代1.尽量使动物一体多用2、用低等动物代替高等动物3、尽量使用高质量动物4、使用恰当的试验设计和统计学方法 Reduction 减少1、用有生命的物体代替动物进行研究2、用数理化方法模拟动物进行研究Refinement 优化1、改善实验设施条件，提高动物实验质量2、改善控制技术，减少对机体的干扰 3R研究的意义 1、作为提升突破技术壁垒能力的载体和具体体现“标尺”，在经济发展和国际贸易中发挥不可替代的重要作用。 2、为科学发展提供了新思路和新方法。 3、体现时代发展、社会进步 2、简述免疫缺陷动物的概念以及生物学特性（主要是裸鼠和联合免疫缺陷鼠）。 指由于先天性遗传突变或用人工方法造成一种或多种免疫系统组成成分缺陷的动物。 一、T淋巴细胞功能缺陷动物：1、裸小鼠（nude mice）：1）被毛生长异常，呈裸体外表。2）无胸腺，仅有胸腺残迹或异常胸腺上皮，不能使T-cell正常分化，导致细胞免疫力低下。幼龄鼠有残存的未分化的上皮细胞。3）B细胞功能正常，NK细胞活力增强。4）繁育能力差，乳腺发育缺损，以雄性纯合子与雌性杂合子繁育。5）T细胞缺陷可通过移植成熟T细胞、胸腺细胞或正常胸腺上皮得到校正。2、裸大鼠(nude rat)：基因符号为rnu，一般特征似裸小鼠。1）发育迟缓，体重为正常大鼠的70%。2）裸大鼠较裸小鼠对多种传染病更敏感。3）比裸小鼠更强壮、寿命更长。4）体型较大，对大范围的外科手术方法较有利。二、联合免疫缺陷动物1、严重联合免疫缺陷小鼠(SCID mice)：突变基因scid位于16号染色体。1）该突变基因造成编码Ig重链和TCR的基因重排异常，抑制B-cell和T-cell前体的正常分化。2）C.B-17Icr为携带来自C57BL/ka小鼠的免疫球蛋白重链Igh-1b等位基因的 BALB/cAnIcr的同源近交系。3）纯合子血清中无免疫球蛋白，淋巴结、胸腺变小，缺乏体液、细胞免疫功能。饲养于SPF环境中。4）通过移植人免疫组织或免疫细胞，可使SCID 小鼠具有人类部分免疫系统，称为SCID-hu小鼠。
实验动物学习题及答案
实验动物学试题及答案 一、填空题 1、实验动物学研究的对象实验动物、动物实验。 2、根据我国实际，实验动物被分为四级，分别是一级为普通动物、二级为清洁动物、三级为SPF动物、四级为无菌动物（包括悉生动物）。国际上公认的标准实验动物是SPF动物，我国公认的标准实验动物是清洁动物。 3、通常称近交系动物为品系，称封闭群动物为品种。 4、实验动物的年龄通常根据体重来判断。 5、裸鼠除全身无毛外，还有裸体和无胸腺，并随年龄增加皮肤变薄，头颈部皮肤皱褶，发育迟缓等特征。 6、药物筛选实验首选动物为小鼠；过敏实验首选动物为豚鼠；发热研究首选动物为家兔；实验外科学首选动物为犬；人类脊髓灰质炎等病的研究最理想的实验动物是非人灵长类动物；做反射弧分析实验常用实验动物是青蛙。 7、实验动物常用给药途径有经口给药、注射给药等。 二、名词解释 1.实验动物：是指经人工饲养、对其携带的微生物、寄生虫实行控制，遗传背景明确或来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、鉴定、及其他科学研究的动物。 2.近交系动物：是指至少经过20以上连续全同胞或亲子交配，品系内所有个体都可追溯到其源于第20代或以后代鼠的一对共同祖先的动物群。 3.杂交优势：杂种一代具有较强的生命力，对疾病的抵抗力强，寿命较长，容易饲养，在很大程度上克服了近交衰退现象的优越性。 4.封闭群动物：不以近交形式进行交配，也不引入任何外来血缘，在封闭条件下交配繁殖，从而保持群体的一般遗传特性，又具有杂合性的一个实验动物种群。我国制定的标准作如下定义：以非近亲交配方式进行繁殖生产的一个实验动物种群，在不从其外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖4代以上，称为一个封闭群，或叫远交群。 5.诱发性动物模型：是指使用物理、化学、生物等致病因素作用于动物，造成动物组织、器官或全身一定的损害，出现某些类似人类疾病的功能、代谢或形态性结构方面的病变，即人为地诱发动物产生类似人类疾病的动物模型。 三、问答题
医学实验动物学考试重点总结
名词解释：实验动物（laboratory animal）：指经人工培育，对其携带的微生物、寄生虫进行严格控制，遗传背景明确，可用于科学实验、药品、生物制品的生产和检定及其它科学研究的动物。 实验用动物：是指一切用于实验的动物，除了符合严格要求的实验动物外，还包括家畜和野生动物等。 实验动物与实验用动物：遗传控制不同,微生物控制等级不同,培育的形质和目标不同。 人类疾病的动物模型：是指医学研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物实验对象和相关材料。 实验动物标准化：遗传质量标准化微生物质量标准化环境标准化营养标准化 按遗传控制标准，实验动物分为：近交系（CH3），突变系（裸鼠），杂交系（F1），封闭群（远交系）（KM小鼠，wister大鼠） 按基因型分：1、同基因型动物（如近交系、F1代） 2、不同基因型动物（如封闭群） 按微生物控制程度分级：普通级，清洁级，SPF级，无菌级（2001年版的国家标准中，大小鼠取消普通级动物，犬、猴只分普通级和SPF级，豚鼠、地鼠和兔仍然分4级） SPF动物定义：除清洁动物应排除的病原外，不携带主要潜在感染或条件致病和对科学实验干扰大的病原。（屏障环境中饲养，种子群来源于无菌动物或剖腹产动物。饲养管理同清洁动物） 无菌动物的特点：形态学及生理学特点： ①形态学：盲肠肥大（增大5～6倍），肠壁薄，易发肠扭转。心脏、肝脏、脾脏相对较小。 ②生理学: 血中无抗体，巨噬细胞吞噬能力弱。体不能合成维生素B和K。无菌鸡生长较快、无菌豚鼠和无菌兔生长较慢。无菌大小鼠与普通大小鼠生长速度相同。 （3)饲养要求：隔离环境中饲养，种子群来源于剖腹产动物或无菌卵的孵化。由于肠道无菌，饲养困难，应注意添加各种维生素。每2～4周检查一次动物的生活环境和粪便标本。 悉生动物：概念：悉生动物是指在无菌动物体植入已知微生物的动物。又称已知菌动物。植入一种细菌的动物叫单菌动物；植入两种细菌的动物叫双菌动物；植入三种细菌的动物叫三菌动物；植入多种细菌的动物叫多菌动物。（由于肠道接种有利于消化吸收的细菌，故饲养较无菌动物容易，形态学和生理学方面与普通动物无异。） 近交系：经至少连续20代的全同胞兄妹交配培育而成，品系所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先。 特点： 1、其基因纯合度达到98.6%，个体差异小，似同卵双生反应一致重复性好，用少量动物即可获得精确度很高的实验结果，个体相互之间可以接受皮肤、器官移植。 2、隐性基因纯合使许多病态性状得以暴露，可获得大量先天性畸形及先天性疾病的动物模型.如高血压、白障、糖尿病.动物模型。 缺点：出现近交衰退。近交衰退是近交过程中动物群体由于基因分离与纯合发生一系列不利于个体或群体发育的变化和现象。
实验动物学实验论文
实验动物学实验论文 实验名称：切断大鼠迷走神经的肺水肿模型制备设计班级：2013级生物技术班 设计人员：陈建文罗晓明叶东芹卿晓玲 设计日期：2015年11月 切断大鼠迷走神经的肺水肿模型制备（陈建文罗晓明叶东芹卿晓玲）
【摘要】[目的]：肺水肿是一种常见的疾病，通过切断大鼠迷走神经，模拟人类肺水肿探究制备大鼠肺水肿模型的方法，提供一种较好符合临床肺水肿病理生理特征的实验性肺水肿动物模型。[方法]：将实验大鼠随机分为对照组（假手术），夹闭一侧迷走神经组和双侧夹闭组，夹闭迷走神经，观察动物的体征变化，确定大鼠肺水肿动物模型。[结论]：三组大鼠肺系数之间并无明显差异。 【Abstract】Objective]: pulmonary edema is a common disease, cut through the vagus nerve in rats, simulation human pulmonary edema inquiry system for preparation of the rat model of pulmonary edema, providing a consistent clinical pulmonary edema pathophysiological characteristics of experimental animal model of pulmonary edema. Methods: rats were randomly divided into control group (sham operation). The rats were divided into control group and bilateral occlusion group. [Conclusion] there is no significant difference between the three groups in the lung coefficient. 【关键词】肺水肿切断迷走神经术大鼠动物模型 肺水肿是指由于某种原因引起肺内组织液的生成和回流平衡失调，使大量组织液在很短时间内不能被肺淋巴和肺静脉系统吸收，从肺毛细血管内外渗，积聚在肺泡、肺间质和细小支气管内，从而造成肺通气与换气功能严重障碍。在临床上表现为极度的呼吸困难，端坐呼吸，发绀，大汗淋漓，阵发性咳嗽伴大量白色或粉红色泡沫痰，双肺布满对称性湿啰音。肺水肿为内科危急重症，临床症状凶险，病情发展急剧，易并发呼吸、循环衰竭，病死率极高，如果不及时诊治，会引发严重的后果。目前，国内外复制实验性肺水肿的模型很多，如油酸诱导，注射生理盐水，吸入光气等方法，都有很明显的现象。我们采用切断迷走神经的方法，对大鼠肺系数等指标进行观察，观察肺水肿模型是否建立。 1 材料与方法 1.1实验动物：SD大鼠24只，体重 200-290g，雌雄随意，由成都医学院实 验动物中心提供。 1.2实验药品与试剂：3.6%水合氯酸。 1.3实验仪器与器械：电子天平，注射器，烧杯，手术器械（解剖刀，解剖盘，解剖剪刀，手术线眼科镊等）、滤纸，计时器等。 2 方法 将实验动物随机分为3个组，A组B组C 组各8只大鼠。A组为假手术组，将大鼠称重，麻醉（用 3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1mL的量）后，仅找出迷走神经，不做任何处理；B组为实验组，将大鼠称重麻醉（用3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1mL的量）后，找出一侧迷走神经，用手术剪剪断；C组也为实验组，将大鼠称重麻醉（用3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1mL的量）后，找出两侧的迷走神经剪断。手术处理后，观察大鼠有无呼吸频率改变、湿啰音、咳血、身体抽搐等体征变化，0.5小时后处死所有大鼠。在解剖时，先结扎气管以免液体外溢，然后将肺和心脏一同取出，剪去心脏和表面的脂肪组织，并用滤纸吸干表面的液体，最后分别将各组大鼠肺称重，计算肺系数（肺系数=肺重量（g）/大鼠体重（kg））。
动物论文
实验动物学期末作业 班级：20111641 姓名：肖海琼 学号：2011164102
药物对动物血压的作用 摘要目的观察肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素及乙酰胆碱等药物对家兔血压的作用，并以阻断药为工具分析各药对于受体的作用。方法采用动脉血压的直接测量法，用血压换能器测定不同药物作用后的血压变化情况结果静脉注射0.02g/L肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.93mmHg上升到102.06mmHg；静脉注射0.02g/L 去甲肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.83mmHg上升到109.77mmHg；静脉注射0.02g/L异丙肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.83mmHg下降到54.08mmHg；静脉注射10g/L酚妥拉明1mg/kg后：静脉注射0.02g/L肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由67.08mmHg下降到54.40mmHg；静脉注射0.02g/L去甲肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由67.06mmHg上升到76.90mmHg；静脉注射0.02g/L异丙肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由67.04mmHg 下降到55.37mmHg；静脉注射2.5g/L普萘洛尔0.5mg/kg后：静脉注射0.02g/L盐酸肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.61mmHg 上升到98.42mmHg；静脉注射0.02g/L去甲肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.43mmHg上升到99.09mmHg；静脉注射0.02g/L异丙肾上腺素0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.33mmHg变为78.93mmHg；静脉注射0.01g/乙酰胆碱0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.63mmHg下降到59.32mmHg；静脉注射1g/L阿托品后：静脉注射0.01g/乙酰胆碱0.1ml/kg后家兔平均动脉压由84.43mmHg下降到75.84mmHg；静脉注射10g/乙酰胆碱0.1ml/kg后家兔平均动脉压由
实验动物学思考题
一、医学实验动物学20160913 1. laboratory animal，LA：实验动物，经人工培育，来源清楚遗传背景明确，对其携带的微生物和寄生虫和健康状态进行监控，用于生命科学研究、药品与生物制品生产和检定以及其他科学研究的动物。 2. animals for research：实验用动物，一切可用于实验的动物，包括野生动物、经济动物、警卫动物、观赏动物和实验动物。 3. laboratory animalization：实验动物化，将野生动物或经济、观赏动物驯化、培育成实验动物的过程。 4. animal experiment：动物实验，为了可接受的目的而使用实验动物进行的实验，实验过程可能造成动物的疼痛、痛苦、苦恼、持久性损伤、受孕、生育等，包括实验的前、中、后过程。 5. Euthanasia：安死术，以迅速造成动物意识丧失而至身体、心理最小伤害的处死动物的方法。 6. humane endpoint：人道终止点，考虑到对待动物的要求和实验要求，合理终止动物用于实验的时间。 7. 3R：替代replacement原则，要求尽可能采用低等实验动物或非实验动物，以替代高等实验动物进行实验；减少reduction原则：要求尽可能减少实验动物的用量，甚至可以降低统计学要求；优化refinement原则：要求优化实验设计和操作，避免或减轻与实验目的无关的疼痛和紧张。 8. 实验动物生物安全：对实验动物可能产生的潜在风险或现实危害的防范和控制。 9. 国家标准规定的实验动物品种是哪些？ 大鼠、小鼠、豚鼠、地鼠、兔、犬、猴、鸡 10. 实验动物福利（lab welfare）的五大自由 生理福利：免于饥渴；环境福利：免于不适，适当居所；卫生福利：免于痛苦伤病；行为福利：表达正常行为；心理福利：免于恐惧与焦虑。 11. 实验动物福利与动物实验伦理审查的关系 实验动物福利并不意味着就绝对的保护实验动物不受到任何伤害，而是在兼顾科学问题探索和在可能的基础上最大限度地满足实验动物维持生命、维持健康和提高舒适程度的需要； 实验动物福利贯穿实验动物整个生命过程，应考虑到实验动物的需要，尤其心理需要； 动物实验伦理审查局限于涉及实验动物的课题，在课题执行过程善待动物。 12. 动物实验伦理审查中涉及的三证；不予通过的情况；与医学伦理审查的区别(?) 动物质量合格证；设施许可证复印件及使用证明；从业人员考核合格证书。 1、抵触、逃避，迫不得已； 2、描述不清、证据不足、材料不全； 3、无道理的动物实验，不必要的动物伤害； 4、人员未经专业培训或明显违反动物伦理原则； 5、实验动物生产、运输、实验环境不符合要求； 6、无福利操作规程或不按规程办理，虐待动物； 7、动物实验设计不合理； 8、实施时不能体现善待动物、关注生命； 9、活体解剖不麻醉等极端操作。 动物实验伦理审查：参照国际上通行的伦理基本原则，对医学科学研究项目中涉及动物的课题进行审查，并做出结论性意见。 13. 动物实验生物危害的三大重要因素 动物性气溶胶；人兽共患病；实验室相关疾病感染。 14. 实验动物废弃物类别；处理原则 分类：感染性废弃物，病理性废弃物，损伤性废弃物，药物性废弃物，化学性废弃物。原则：无害化、分类处理、专用包装。 15. 我国对实验动物实施许可证制度，包括管理环节 年检，质量抽检，现场检查等环节。 16. AAALAC的含义及认证目的 国际实验动物评估和认可委员会Association for Asscssment and Accreditation of Laboratory Animal Care。
实验动物论文
学校代码编号 上海农林职业技术学院 《实验动物》论文 题目：实验动物饲养管理 学院上海农林职业技术学院 专业（方向）环境监测与治理技术 班级 学号 姓名 指导教师 2012年12月26日
摘要 (1) 关键词 (1) 1 常用实验动物饲料 (2) 1.1啮齿类实验动物的营养需要 (2) 1.2饲料的种类 (2) 1.3饲料的质量要求 (2) 1.4饲料营养素对动物实验结果的影响 (3) 2 常用实验动物管理 (3) 2.1实验小鼠的饲养管理要点 (3) 2.2实验大鼠的饲养管理要点 (3) 2.3实验豚鼠的饲养管理要点 (4) 2.4实验兔的饲养管理要点 (4) 2.5实验犬的饲养管理要点 (4) 参考文献……………………………………………………………4、5
本文从常用实验动物饲料与管理两个方面讨论了实验动物的饲养与管理方法。饲料营养与动物生活环境因素影响着动物的健康与生活。本文说明了部分实验动物的饲养与管理办法，并结合学习实际,加深了对问题的理解。 关键词：饲料管理实验动物
实验动物饲养管理 1 常用实验动物饲料 1.1啮齿类实验动物的营养需要 大鼠、小鼠饲料蛋白质占18%-20%左右，粗纤维5%，粗脂肪4%。维生素A需求量为每公斤饲料含7000-14000IU，通常以加入1%的清鱼肝油来满足。应适当补充维生素E，每公斤饲料含60-120IU，以提高受孕率。 金黄地鼠饲料蛋白质占21%~24%，动物性蛋白尚应含相当比例，主要来源于鱼粉和鸡蛋。植物性蛋白主要来源于黄豆和豆粉。此外, 应喂饲一些白菜、萝卜、黄瓜等青饲料。 豚鼠饲料蛋白质占17%-20%左右，尤其对精氨酸的需要量较高。由于它的盲肠较发达，因而对纤维素亦有较高需要，应占饲料总量的10%-15%左右。豚鼠体内不能合成维生素C，因此要在饲料中添加。一般每公斤饲料含维生素C 1500mg，妊娠豚鼠每公斤饲料含维生素C 1800mg。实际喂养时，主要可喂饲苜蓿草粉、干草粉和(或)绿色蔬菜等。 兔,新生家兔一般要哺乳一个月左右才能开始吃饲料。家兔饲料中蛋白质应占14%-17%，粗脂肪占3%，粗纤维占10%-15%以上。饲料中应含大量干草,以补足其对粗纤维的基本需要量，从而可防止家兔因粗纤维摄入不足而导致腹泻。 犬，为肉食性动物，其饲料中应含20~24%蛋白质，4.5%-6.5%粗脂肪，3%
实验动物学重点整理
实验动物学重点整理 1大小鼠年龄、体重、寿命的比较数据？ 成年动物的年龄、体重和寿命比较 小鼠大鼠 成年日龄（天）65-90 85-110 成年体重（克）20-28 200-280 平均寿命（年）1-2 2-3 2动物实验的对照类型？ （一）空白对照： 不给任何措施的情况下观察动物自发变化的规律。家兔白细胞数每天上下午有周期性的生物钟变化。 （二）实验对照： 采用与实验组相同操作条件下对照，如给药实验中的溶媒（Nacl），手术，注射以及观察时的抚摩等都可以对动物发生影响。有人报告，针刺犬的人中穴对休克、心脏血液动力学有改变，但采用空白对照（不针刺）不够，应该设有针刺其它部位或穴部的实验对照。 （三）有效（标准）对照： 常用于药物研究。对一新药疗效可用一已知有效药或能引起标准反应药物做对照，可考核实验方法可靠性，又可通过比较，了解新药疗效和特点（普鲁卡因---对皮肤黏膜穿透力弱，用纳塞卡因---穿透力强，作用快、持久）。（四）配对对照： 同一个体不同眼睛比较对照期和实验期差异（左眼试验，右眼对照）；同一种动物后代分成左右两部分进行对照和实验以比较差异，此法可大大减少抽样误差。实验中可用同卵双胎或同窝动物。 （五）组间对照： 将实验对象分成两组或几组比较其差异。这种对照个体差异和抽样误差比较大，可用交叉对照方法以减少误差。观察某药物疗效可用两组犬先分别做一次实验和对照，再相互交换，以原实验组做对照组，原对照组做实验组重复第一次实验，观察疗效或影响，切记检查指标和条件要等同。 （六）历史对照与正常值对照： 此种对照要慎重，similar background ---条件、背景、指标和技术方法相同才进行对比，否则得出不恰当的甚至错误结论。 3转基因动物的概念、制备过程? 转基因动物： 用物理、化学、生物手段将确定外源基因通过生殖细胞或早期胚胎导入动物染色体，其基因组内稳定整合导入外源基因，能遗传给后代的一类动物,使其获得人类需要新功能。 技术程序：
实验动物学习题与参考答案
实验动物学习题与参考答案 中南大学生命科学学院 2014 一、判断题（正确者划“√”，错误者划“×”。） 1.凡用于科学实验的动物称实验动物。( X) 2.实验动物都是哺乳动物。 ( X) 3.实验动物学是动物学的一门分支学科。(×) 4.实验动物学是20世纪50年代形成的一门综合性应用性学科。(√ ) 5.近交系动物、免疫缺陷动物和悉生动物的培育成功为实验动物学独立于其他学科奠定了基础。(√) 6.1907年Little首次成功地培育出了世界上第一个近交系小鼠DBA。 ( X ) 7.动物在没有肠道菌参与条件下不能生存。 ( X ) 8.全国第一次实验动物工作会议于1982年在云南西双版纳召开。(√ ) 9.中国实验动物学会成立于1987年。 ( X ) 10.1988年，我国第一部实验动物管理法规《实验动物管理条例》，经国务院批准，由国家科委颁布实施。(√) 11．无胸腺裸鼠属近交系动物。（X ） 12．悉生动物的内脏器官都比普通动物小。（） 13．只有豚鼠体内不能合成维生素C，故豚鼠成为目前唯一用于实验性坏血栓病的动物。（X ） 14．封闭群动物不属于同基因型动物，故其群体内个体之间杂得不一样。（X ） 15．大鼠比小鼠更容易攻击人，同类之间的斗殴倾象也比小鼠严重，故不可将多只雄鼠同笼饲养。（X ） 16．家兔属于刺激性排卵动物，即雌免只有在交配后25～27小时才排卵。（X ） 17．使用人类疾病的动物模型是将实验动物应用动物实验中去的最主要的方式。（）18．下列实验动物中，妊娠期最长的是家兔：大鼠、小鼠、豚鼠、家兔。（X ） 19．同一杂交群内动物个体之间也可以进行细胞、组织、器官和肿瘤的移植。（√ ）20．在实验动物的微生态模式中，无菌动物代表正常的健康无病模式。（） 21．在多基因性问题的研究中，杂交群动物比封闭群动物更能较好地代表自然群体的实际情况。（X ） 22．近交系，杂交群和突变系动物都属于同基因型动物。（） 23．杂交群属于同基因型动物。（√ ） 24．豚鼠是实验动物中血清补体含量最多的动物。（√ ） 25．小鼠骨髓为红髓，可终生造血。（√ ） 26．大鼠、家兔、豚鼠和小鼠中，妊娠期最长的动物是家兔。（X ） 27．清洁级动物是目前国际上通用的动物。（X ） 28．选择基因型一致或相似的实验动物做实验是保证实验结果具有较好的再现性的重要措施。（√ ）
实验动物学论文
实验动物在生物医学等各领域的应用 摘要：实验动物是指用于科研、教学、生产、检测、鉴定及其他科学实验的动物，其人工饲育的遗传背景明确、来源清楚，并严格控制其所携带的微生物。实验动物是生命科学的基础和重要的条件，它的重要性在于一方面它是生物医学研究的重要手段，直接影响着许多领域研究课题成果的确立和水平的高低。另一方面，它的提高和发展又会把许多领域课题的研究引入新的境地，推动生物医学的发展。 关键词：实验动物重要应用地位前景 正文： 1.实验动物在生物医学发展中的重要作用 回顾生物医学发展的历史不难发现，许多具有里程碑式的划时代研究成果，往往与实验动物及动物实验密切相关。 1628 年，英国科学家哈维通过对蛙、狗、蛇、鱼、等动物的解剖与生理研究，发现了血液循环是一个闭锁的系统，阐明了心脏在动物体内血液循环中的作用。1878 年，德国科学家科赫通过对牛、羊疾病的研究，发现了结核杆菌，指出了细菌与疾病的关系等科学突破。生物医学家巴甫洛夫指出，“没有对活动物进行实验和观察，人们就无法认识有机世界的各种规律，这是无可争辩的”。[1] 2.简述实验动物种类及其在现代生物医学研究领域的重要性 实验动物按传统的动物学分类：即啮齿类动物、畜类哺乳动物、禽类、鱼类、非人灵长类。按微生物等级分类：即无菌动物(BM)、无抗原动物、已知菌动物、无特定病原体动物(SPF)、普通动物(K)。我国将实验动按微生物等级分四级，即普通动物、清洁动物、无特定病原体动物(SPF)、无菌动物(BM)。按遗传学特性分类：将实验动物分为近交系动物、突变系动物、远交系动物、系统杂交动物和普通杂种动物五种类别。在生物医学研究领域里，进行实验研究的条件可概括为A EIR 四个基本要素。所谓A是指Animal（动物），E 是指Equipment（设备），I 是指Information（信息），R 代表Reagent（试剂）。[2]实验动物是实验研究中不可缺少的条件，由此可以看出实验动物是现代生物医学研究的重要支撑条件。 3.实验动物在相关领域广泛应用 3.1制药工业方面 实验动物在制药工业方面的应用非常广泛，新药的研制，必须通过安全性试验，其中包括动物的急性、亚急性及慢性毒性试验，三致试验（致癌、致畸、致突变），有的还要利用实验动物模型进行效果试验，证明对机体无毒性或安全可靠、有效后方能申请报批，否则可能会给人类造成不可挽回的恶果。如1962年西德某药厂生产一种反应停药物给孕妇使用，结果造成畸胎儿发生率增高，给子孙后代带来灾难。药品出厂前，每批都要用实验动物进行检测，以确保绝对安全。化工产品的毒副作用对生命的影响，都是从动物实验中获得的结果。因此，实验动物在医药、化工领域里被称为“有生命的试剂”，是各种药理、毒理实验工作的重要条件，成为衡量医药、化工科学技术水平的重要标准。[3] 3.2畜牧科学方面 疫苗的制备和鉴定、生理试验、胚胎学研究、营养饮料的分析、保持健康群体以及淘汰污染动物等工作，都要使用实验动物。特别是在畜禽传染病的研究工作中，常急需要有合格的实验动物进行实验。目前在兽医科学研究上，由于所用试验动物或鸡卵不合乎标准，质量很差，严重影响科研效果，甚至在某些疫病
实验动物学重点
实验动物学重点
1.实验动物学绪论 2.实验动物质量控制 3.常用实验动物 4.实验动物营养与饲料 5.实验动物环境和设施 6.基因工程动物 7.“3Rs”理论及其研究进展 8.怎样才能作好动物实验 实验动物学绪论 实验动物学：以生物学、动物科学、动物医学、医学,药理学、毒理学等学科为基础，综合发展而形成的一门覆盖 面极广的边缘学科。 实验动物学包括：实验动物，实验动物医学，比较医学，动物实验 实验动物：是指经人工培育的、遗传背景清楚、对其携带微生物和寄生虫实行控制、用于科学实验、教学、检定及 药品、生物制品生产的动物。 实验用动物：实验动物、家畜、野生动物、伴侣动物 概况：实验动物科学内容：实验动物、实验动物医学、比较医学、动物实验 1988年，国家科委发布《实验动物管理条例》 1996年10月，《北京市实验动物管理条例》出台，于2005年1月1日实施 实验动物伦理：是人与实验动物关系的伦理信念、道德态度和行为规范。主要体现在尊重实验动物的价值和权利。 实验动物福利：实验动物的一种康乐状态。在此状态下，其基本需求得到满足，而痛苦被减至最小。 五项基本福利：一，提供适当的清洁饮水和保持健康和精力所需要的食物，使动物不受饥渴之苦 二，提供适当的栖息场所，能够舒适地休息
和睡眠，使动物不受困顿不适之苦 三，做好防疫，预防疾病和给患病动物及时诊治，使动物不受疼痛、伤病之苦 四，保证拥有良好的条件和处置（包括安乐死），使动物不受恐惧和精神上的痛苦 五，提供足够的空间、适当的设施以及与同类动物伙伴在一起，使动物能够自由表达正常的习性 动物实验需要考虑实验动物伦理的几个环节：实验目的确定和必要性评估、实验设计遵循3Rs原则、实验操作过程避免或减轻动物疼痛及恐惧、日常饲养及护理、安乐死 CRO：Contract Research Organization Include: Clinical trial、Preclinical research AAALAC认证（国际实验动物管理评估和认证协会）实验动物学发展趋势：基因修饰技术运用； 实验动物福利与“3Rs”原则； 实验动物商品化及SPF动物广泛应用； 人源化小鼠模型的建立。 实验动物科学发展简史：1909年，Prof. Little 采用近交方法 培育出首个近交系小鼠DBA 1943年，美国Dr. Reynier研制出第一台金属隔离器，饲养无菌 大鼠 1948年，美国成立实验动物管理小组，后又成立实验动物科 学学会（AALAS） 1966年，美国国会批准《实验动物福利法案》 1982年，第一例转基因小鼠问世 实验动物学、比较医学等专业的设立及建立相应培训制度 我国实验动物科学发展概况：1918年，原北平中央防疫处开 3
实验动物学考试题总结[1]
1.实验动物: 实验动物（Laboratory Animals）特指的是人工饲养，对其携带的微生物实行控制，遗传背景明确或者来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定及其它科学实验的动物。 2.实验动物三大特点: 人为遗传限定、携带的微生物和寄生虫得到控制、应用于科学实验 5实验动物的标准化包括哪些内容它有什么意义 实验动物学的核心内容：是实验动物的标准化，它包括实验动物的遗传学控制标准、微生物学和寄生虫学控制标准、设施环境控制标准、饲料营养控制标准。 意义: 在符合标准化的实验动物及其环境条件下，所做的动物实验无论在时间的先后上，还是在世界的不同实验室里，其实验结果应该具有可重复性和可对比性。 8、动物福利: 动物福利是指动物在整个生命过程中应得到人类的保护，其基本原则是要善待动物，保证动物的健康和快乐。 9.针对动物保护主义，科技界的对策是: 1.为动物福利立法，号召“善待动物”。 2.坚持原则、坚持科学、坚持动物实验。 3.进行动物实验伦理审查 提倡动物实验的“3R”原则。Replacement 替代Reduction 减少Refinement 优化10.国际上对动物实验伦理有哪些要求 1.动物居住空间应符合标准，注意日常饲养管理，不使动物陷入饥饿、缺水和患病。 2.尽可能的采用替代法最少地使用和牺牲动物。 3.在必须使用犬、猫和猴时，在实验前应进行训练，尽可能地减少动物的恐惧和不安。 4.实验结束和动物不可能恢复时，应采取安乐死。 5.要爱护动物和对由于试验死亡的动物应持有怜悯和感激之情。 动物实验的“3R原则”: 1替代（Replacement）替代是指用其它实验方法替代用哺乳类动物进行实验研究。 2. 减少（Reduction）减少是指某一研究必须要使用实验动物，而又没有可靠的替代方法时，应考虑把使用动物的数量减少到实验研究目的所必需的最少数量。 3 优化（Refinement）优化是指通过改进和完善实验程序、利用先进仪器设备，减轻或避免给动物造成痛苦和不安，提高动物福利的同时，获得可靠的实验结果。 第二章实验动物的遗传控制 1. 请说出实验动物种、品种、品系的概念。 种（Species）：是生物分类学上的基本单位，由自然选择形成。 品种（stock）：是种以下的非自然分类单位，由人工选择和定向培育出来的，具有某些生物学特性，能稳定遗传。
交大医学院 实验动物学练习题
绪论实验动物科学管理练习题 1.我国第一部实验动物法规名称是《实验动物管理条例》；（P4） 2.动物福利法的核心可以概括为让动物在康乐的状态下生存（善待活着的动物）、在无痛苦的状态下死亡（减少死亡的痛苦）；（P6/百度） 3.普通动物只能用于教学实验、某些科研工作的预实验，不适用于科学研究和研究生毕业论文等实验；（P27） 4.实验动物环境因素包括物理因素、化学因素、生物因素和居住因素；（P47） 5.实验动物是指：其携带的微生物、遗传及营养环境因子实行控制，来源清楚，遗传背景明确；为满足科学研究，教学，药品，生物制品的生产和检定，及其他科学实验的需要而驯养，繁殖，育成的动物；（P2） 6.野生动物演变为实验动物的过程为：野生动物家畜化，家畜动物实验动物化和实验动物标准化；（P3） 7.《实验动物学》包含的内容可简述为：实验动物和动物实验两部分。（P1） 8.“3R”原则是指减少（Reduction）、优化（Refinement）、替代（Replacement）；（P152） 9.实验用动物包括：实验动物、经济动物、野生动物和观赏动物；（P2） 第二章实验动物遗传质量及其对动物实验的影响练习题 1.下列近交系小鼠命名书写不正确的是（B）。(P9-P10) A. 615 BALB/C C. C57BL/6 D. A 2.某小鼠毛色基因型为：A_BBC_,该小鼠毛色是（C）。（P18) A.白色 B. 黑色 C.野生色 D.棕色 3.在遗传检测中，观察皮肤移植成功与否，需要：（B）。(P17) A.60天 B.100天 C.10天 D.1年 4.下列正确书写的封闭群实验小鼠应为（B）。(P12) A．SHJTU：KM B. Shjtu:KM C.SHJTU/KM D. Shjtu/KM 5.下列不属于封闭群实验动物的遗传特性是（B）。(P12-P13) A.基因库大 B.多基因之间丧失平衡 C.个体间差异程度主要取决于其祖代起源 D.群体基因频率基本保持稳定 6.实验动物遗传质量的控制，包括和。 7.近交系动物每代近交系数上升率为19%。封闭群动物每代近交系数上升率应控制在1%以下。(PPT2/46) 8.下列不属于近交系小鼠遗传特性的是（C）。(P10-P11) A. 基因纯合性高 B.个体间均一性好 C.基因库大 D.背景资料多 9.简述“近交系动物”。 答：经至少连续20代的全同胞兄妹交配培育而成，同品系内所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先，该品系称为近交系。经连续20代以上亲代与子代的交配，与全同胞兄妹的交配有同等效果。近交系的近交系数应大于99%。（P9） 10.简述“封闭群动物”。 答：以非近交交配方式进行繁殖生产的一个实验动物种群，在不从其外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖4代以上，称为一个封闭群，或叫远交群。（P12) 11.用复隐性有色小鼠DBA（雄性，毛色基因型为：aabbCC)对某白化小鼠（雌性）进行毛色基因交配试验，它们的F1代全都是野生色小鼠： 1）用简图叙述测定过程。 2）该白化小鼠毛色基因是否纯合？
实验动物学复习重点
实验动物学复习重点 第一章绪论 1、实验动物学：是以实验动物为主要研究对象，并将培育的实验动物应用于生命科学等研 究的一门综合性学科。 简而言之：研究实验动物和动物实验的一门综合性学科。 2、【实验动物】指由人工培育，来源清楚，遗传背景明确，对其携带的微生物和寄生虫实行 监控，用于生命科学研究、药品与生物制品生产和检定以及其他科学研究的 动物。 3、【动物实验】应用标准的实验动物进行科学研究，观察实验过程中实验动物有关器官的组 织形态改变、机能反应变化及其发生、发展规律。 4、【中医实验动物学】以中医药理论为基础，运用实验动物学的理论和方法，进行中医药研 究的实验学科。 5、【实验动物的特点】 （1）遗传学要求——人工培育，来源清楚，遗传背景明确的动物。 按照遗传特点分近交系、封闭群或远交群、杂交群。 （2）微生物和寄生虫监控要求——根据控制程度分普通级动物（CV）、清洁动物（CL）、 无特定病原体动物（SPF）、无菌动物（GF） （3）应用要求——实验动物对试验因素的敏感性强、反应一致，从而使研究结果具有可靠性、精确性、可比性、可重复性和科学性。 6、【AEIR】进行生命科学实验研究所必需的4个基本条件： A——animal(实验动物) E——equipment(设备) I——information（信息）R——reagent(试剂) 7、【“3R”原则】 替代replacement原则——尽可能采用低等实验动物或非实验动物，以替代高等实验动物进 行实验。 减少reduction 原则——要求尽可能减少实验动物的用量，甚至可以降低统计学要求。 优化refinement原则——要求优化实验设计和操作，以减轻动物的痛苦。 8、1956年，联合国科教文卫协会建立了“国际实验动物科学委员会”，是实验动物学真正 形成的时期。 1988年，原国家科学技术委员会颁布了《实验动物管理条例》标志我国实验动物工作走上行政法规管理的轨道。 20XX年，国家科技部在全国推行实验动物生产和使用许可证制度，大大提高实验动物的质量和动物实验的技术。
动物实验论文
田螺的解剖 姓名陈旭 中北学院生物技术 摘要：田螺属于软体动物门腹足纲，为淡水习见螺类，生活于湖泊，河流，水库，池塘及稻田内，以宽大的肌肉质足在水底爬行，尤其喜栖息在水草茂盛的水域，在我国分布甚广，为世界性分布。 关键词：齿、心室、闭管式循环、神经索、脑神经节、组神经节、侧神经节、脾神经节 正文：该螺壳大，薄而坚，黄褐色到深褐色，表面较光滑，壳高40-60mm，宽25-40mm，螺层6-7层。最小的螺层位于顶部，最大的螺层位于底部，螺层与螺层之间的界限为缝合线。圆田螺缝合线较深，螺层明显。壳口近卵圆形，厣角质，薄片状，梨形，具有同心圆花纹。它的头，足，内脏团等均可藏于壳内，以厣封住壳口。活动时，仅头，足可自壳内伸出。 解剖时，取一活体圆田螺，可通过其生殖腺的颜色来辨别螺的性别。田螺的头部较发达，头前端有一突出的吻，吻腹侧中央为口。吻基部两侧就是一对较长的触角。雄性的右触角粗短，为交配器官，雄性生
殖孔位于顶端，据此可区分雌雄。用镊子自体螺层开始，依次轻轻敲破螺壳，用镊子将虽壳片移去，将软体部剥离并分离各器官。 将解剖剪沿出水管插入，沿膜下淡黄色的鳃和暗褐色的肠管剪开外套膜，进行观察。在外套腔的左侧紧贴着外套膜，可见一栉状鳃，由一排三角形的小片组成，表面具纤毛，内有血管。当水流经入水管进入外套腔，鳃从水中摄取氧，将二氧化碳排于水中，气体交换后，水从出水管排出。用镊子可大致推出出水管很长，这可以保证将带有排遗物和排泄物的水远离入水管的地方。 头部最前端有口，口后为膨大的咽，内有齿舌。齿舌为软体动物特有的器官，它是由许多角质齿有规则的排列而成，似锉刀，每一排角质齿有中央齿一个，侧齿一到数对，缘齿一对或多对，齿舌之下有支撑齿舌的软骨为齿担，田螺以水生植物和藻类为食，摄取食物即靠齿舌和齿担在多束肌肉的控制下，作前后伸缩运动，以刮取食物。其齿式为2.1.1.1.2。 咽后是细长的食道，食道后为膨大的胃，胃后为管状的肠和直肠，肠扭转180度，折向前行，最后以肛门开口于外套腔内，出水孔附近。唾液腺有一对，位于食道与胃之间，有管入咽。肝为褐色，位于胃的周围，扭曲盘旋于内脏团的顶端。肝很发达，由分支的管状腺组成，有肝管通入胃，能分泌糖酶和蛋白酶，是圆田螺的主要消化腺。 在鳃的末端，胃的前方有一薄膜状的围心腔，用剪刀小心地剪开，可以看到里面的肌肉质心室与一壁薄的心耳，心室向前端发出一主动脉，然后分为两支。一支为前大动脉，分支后分别通入头，足，外套
实验动物学 重点
实验动物学Laboratory Animal Science 是研究有关实验动物和动物实验、融合了生物学、医学与畜牧兽医学的一门新兴、交叉学科。 特点：A.综合性学科B.应用性强C. 发展迅速 实验动物Laboratory Animals经人工培育或人工改造，对其携带的微生物实行控制、遗传学背景明确或来源清楚，用于科学研究、教学、生物制品或药品鉴定以及其它科学实验的动物。 特点：人工饲育、微生物控制、遗传背景清楚、应用要求、质量标准 实验用动物Animals for Research指所有用于动物实验的动物，包括实验动物。 实验动物和实验用动物的区别：实验用动物是指所有用于动物实验的动物，包括实验动物、野生动物、甚至观赏动物等。而实验动物是为研究的需要而培育的标准化的动物。确定是否是实验动物，要经过一系列检测，如微生物和遗传基因等，并要求达到一定的质量标准. 实验动物遗传控制程度分类 远交（封闭）群动物(Outbreed stock, Close colony) 基因突变动物(mutant stock) 近交系动物(Inbred strain): 嵌合体(Chimera) 重组近交系(Recombinant inbred strains) 同源近交系(Cogenic inbred strains) 分离近交系(Segregating inbred strain) 杂交群动物(Hybrids) 实验动物微生物控制程度分类 无菌动物(Germ-free animal) 悉生动物(Gnotophoric animal) SPF动物(Specific pathogen-free) 清洁动物(Clean animal) 普通动物(Conventional animal) 根据对饲养环境控制分类 Isolation system（隔离系统）animal; Barrier system（屏障系统）animal; Semi-barrier system （半屏障系统）animal; Open system（开放系统）animal. AEIR 动物(Animal)设备(Equipment)信息(Information)试剂(Reagent) 近代实验动物学发展特点 1实验动物生产技术逐步完善 2实验动物品种增加 3有关实验动物的法规日趋完善 4充分利用现有动物资源 5开展实验动物附属设施及动物实验技术的研究 6转基因（遗传工程）技术的应用 7遗传学和微生物学监测方法的研究 实验动物研究内容 实验动物遗传学(Laboratory Animal Genetics)是应用遗传调控原理, 控制实验动物的遗传特征,培育新的实验动物品系和多种实验动物模型, 以实现实验动物标准化的目的. 实验动物微生物学(Laboratory Animal Microbiology)是研究实验动物的细菌、病毒、寄生虫的种类、特性及其与宿主的相互关系，并进一步研究其对实验动物与动物实验的影响 实验动物生态学(Laboratory Animal Ecology)是研究实验动物与环境相互关系，研究对实验动物与动物实验有利的环境条件; 实际上主要研究气候因素, 理化因素, 生物因素, 栖居环境对实验动物的影响. 实验动物营养学(Laboratory Animal Nutrition)是研究饲料与实验动物机体生长、发育、繁殖、健康及实验结果关系的分支学科. 实验动物医学(Laboratory Animal Medicine)是专门研究实验动物疾病的诊断、治疗、预防及其在生物医学领域中应用的分支学科.