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凝胶复合体移植治疗椎间盘退变的实验研究

?298?东南大学学报(医学版)2010年6月,29(3)

兰大白兔随机分为正常对照组、移植治疗组和缺损退变组,每组6只。穿刺制作椎间盘退行性变模型:在全麻下,兔右侧卧位,以横突为轴心,沿左侧第12肋末向下至髂嵴上缘作纵切口,在骶棘肌和腰方肌外缘于胸腰筋膜前层间钝性分离。近腰方肌前内缘触及横突,剪开胸腰筋膜,用小指钝性分离腰大肌即可显露椎间盘。用21号针头分别在L4.,、L5一。进行穿刺,抽吸出的髓核组织,每个椎间盘约抽吸出的髓核组织湿重约2—3mg,并立即在显微镜下观察以确定只有髓核组织MJ。移植治疗组用预冷的微量注射器将BMSCs—PlumnicF?127复合物25仙l注入缺损的椎间盘中心;缺损退变组注射磷酸缓冲液(PBS)25仙l;正常对照组仅分离暴露椎间盘,不作任何处理。术后在每个相应椎间盘旁的横突上用黑色缝合线做标记,然后冲洗、止血,依次逐层关闭切口,肌肉注射青霉素40万U,连续3d以预防感染。

1.2.5MIR成像MIR成像水平扫描架内径16cm,使用61咖大鼠体部线圈。扫描采用Turh,RARE他Ⅵ序列。扫描主要参数:FOV

60舢×40I啪,TR/rIE4200ms/36啪,层厚1.0mm,层间距0.5mm,FA1800,Matrix256×256,空间最小分辩率为234u皿×156Ⅳn/像素,总扫描时间约为1rnin20s。

1.2.6疗效观察(1)影像学检查。术后8周耳缘静脉注射空气栓塞处死动物,迅速取出脊柱,进行MIR成像。采用Bruker7.oTmicro—MIR自带的paravision4.O软件测量3组椎间盘的信号强度和邻近椎旁肌肉的信号强度,计算信噪比(sNR,sigllal—noisemtio)以评估各组椎间盘退变水平和治疗效果。信噪比计算公式:sNR=sL/noise旧J,sI定义为椎间盘的信号强度,noise定义为椎旁肌肉信号强度的标准差。(2)病理学检查。MIR扫描完毕,根据定位标记,取出相应椎间盘后置4%中性甲醛固定,石蜡包埋切片,片厚4斗m,行Ⅱ胶原免疫组织化学染色、AB—PAS染色。Ⅱ型胶原免疫组织化学染色结果判断:髓核组织间质呈棕黄色为阳性。应用kicaQ550IW计算机图像分析系统及其软件(kicaQwinPro.2.2)定量评价呈阳性免疫染色的椎间盘细胞间质的灰度值(灰度分级0~255级,0级为最深,255级为最浅),每只椎间盘取4张切片,每张切片随机采集4个高倍视野(×200)进行测定,向同一个方向移动切片,不重叠,不重复。测得结果为视野内棕黄色的平均灰度值。(3)蛋白多糖含量测定。取出椎间盘髓核组织,放人5rIll离心管中。加入3%NaOH1.0IIll,置于恒温振荡器中振荡处理。温度控制在40℃,时间3h。加HCl4rnl调整溶液的pH值至8—9。加入1%的胰蛋白酶100一,置入恒温振荡器中振荡,温度控制在50℃,酶解2h。取酶解液1ml,采用上述间苯三酚分光光度法测定光密度值,转换为量值作蛋白多糖含量的测定。将吸光度(OD值)按标准曲线折算成浓度,测定出椎间盘中硫酸软骨素含量,结果以mg?(10m1)“表示。

1.2.7统计学处理用SPSS16.0软件进行统计学分析,结果用元±s表示。采用单因素方差分析F检验,组间两两比较采用StudentNewmanKeuls(S‘N—K)检验,P<O.05为差异有统计学意义。

2结果

2.1BMSCs形态学观察

BMsCs原代培养24h后大部分细胞贴壁,细胞较小,呈圆形或卵圆形;3~7d细胞逐渐变为多角形或梭形,并有大小不一的集落形成;8~10d集落相互靠近,增殖速度加快;11—13d细胞集落相互融合,相邻集落融合成片达80%~90%,细胞排列成漩涡状或栏栅状。传代后细胞呈长梭形,均匀的分布(图1)。

构建的BMSCs—PlumnicF?127复合物室温下肉眼观察呈凝胶状,环境扫描电镜显示细胞呈圆形或椭圆形,在支架中均匀分布(图2)。

图l兔BMSCs培养至3代,细胞成较单一的梭形

ng13rd萨耻礴6佃ofspinmymb酗tBMSCs跏l,i咖×l∞

图2兔BMSCs呈椭圆形在numnicF-127支架中分布均匀Fig2MorphoIogic砒cha翰cterofmbMt

BMSCs

李果,等.BMscs—PluronicF一127水凝胶复合体移植治疗椎间盘退变的实验研究?299?

2.2影像学观察

8周末MRI检查显示移植治疗组(图3a)与缺损退变组椎间盘(图3b)都有不同程度的退变,与正常对照组(图3c)相比在12像上信号减弱,椎间隙高度变低。缺损退变组较移植治疗组信号更低,椎间隙也更

a.移植治疗组椎间盘

a.transpl卸tation掣Dup加狭窄。3组的信噪比(sNR)值(n=12)分别如下:正常对照组为18.152±3.45l,移植治疗组为12.615±2.29l,缺损退变组为7.525±1.027,经两两比较差异均有统计学意义(P<0.05)。

b.缺损退变组椎间盘

b.degene枷ongmup图33组椎间盘M砌亿图像

Fig3

亿’WIiIlIa寥ofthe3groupsdisc

2.3Ⅱ胶原免疫组织化学染色

8周后移植治疗组与正常对照组髓核组织Ⅱ胶原

免疫组织化学染色均呈阳性反应,缺损退变组呈阴性

反应(图4)。正常对照组Ⅱ胶原免疫组织化学染色切c.正常对照组椎间盘c.controlgroup

片灰度值测为143.782±2.175,与移植治疗组

(142.528±3.326)比较差异无统计学意义(P>

0.05),但这两组与缺损退变组(159.782±4.241)比

较差异均有统计学意义(JP<0.05)。

a.正常对照组×200b.移植治疗组×200c.缺损退变组×200

a.contmlgroup×200b.transplantation丹∞upx200c.degenerati∞group×200

图48周时髓核组织Ⅱ胶原免疫组织化学染色

Fig4Eightw∞kslaterhistoIogy

ob靶rV拍蚰ofnudeuspulp惦I玛ininterVertebr叫m辩

2.4蛋白多糖的测定

分光光度法测定8周后各组椎间盘髓核蛋白多糖的含量,结果移植治疗组为(4.628±0.164)mg?(100mg)~,与正常对照组[4.737±o.068)mg?(100mg)叫]比较差异无统计学意义(p>0.05),但这两组与缺损退变组[(3.363±0.321)mg?(100mg)一]比较差异均有统计学意义(P<0.05)。2.5阿尔辛蓝过碘雪夫(AB?PAS)染色

石蜡切片阿尔辛蓝过碘雪夫染色结果显示:3组切片中的髓核组织均为蓝色,说明8周后髓核中依然存在大量的酸性蛋白黏多糖。正常对照组椎间盘由中央完整的髓核和外周规则同心圆状排列的纤维环组成(图5a);移植治疗组椎间盘髓核腔相对完整,髓核组

织呈类圆形,边界清晰,可见部分髓核与外周纤维环组

?300?东南大学学报(医学版)2010年6月,29(3)

织融合,部分纤维环组织破碎(图5b);缺损退变组椎

间盘无完整髓核腔,整个中央髓核区域消失,分割为几

a.正常对照组a.contml伊oupAB—PAS×40

AB?PAS×40

个不规则髓核区,外周正常纤维环被纤维样组织代替

(图5c)。

b.移植治疗组AB—PAS×40

b.t瑚Illspl铷1t砒ion殍DupAB‘PAS×40

c.缺损退变组AB—PAS×40

c.degenerationgmupAB—PAS×40

图5椎问盘纤维环及髓核阿尔辛蓝过碘雪夫(AB-队S)染色组织学观察

Fig5

A蛐lIl吣右bros啦柚dn眦le璐pllIp憾吣ininterverkbrmm辩ob辨nredbyAB-队Sst;Iini呜×柏

3讨论

本实验所用的细胞载体PluronicF-127是系由聚氧乙烯(PEO)与聚氧丙稀(PPO)组成的一种非离子表面活性共聚物(PEO-PPO-PEO),又名泊洛沙姆(polox锄er)。它最大特点是浓度大于1009?L一的水溶液都有一个凝胶化温度,当温度低于凝胶化温度时,粘度急剧增高,变为凝胶,这种温度依赖性变化的物理性状可重复发生【6J。同时,PlumnicF—127具有黏附于接触界面的特性,体内8周左右可完全降解吸收,无明显的免疫排斥反应,降解吸收速度可通过配制溶液的浓度来调节。正是基于PluronicF-127水溶液具有温度敏感原位凝胶的性质,目前已被广泛作为组织工程的细胞支架应用于软骨【『7|、皮肤【81的构建,还作为药物的分散剂【91和缓释载体【l训用于制药工业,但是用在修复椎间盘退行性变的动物实验中还未见报道。我们通过模拟人体椎间盘镜下髓核摘除的方式将髓核取出,将30%PlumnicF—127与BMSCs在冰浴下混合均匀后,通过注射植入缺损的椎间盘内,植入后8周组织学观察未见到明显的炎症反应,PlumnicF?127水凝胶全部降解。

椎间盘内部的髓核组织被内外层纤维环与上下软骨终板紧密包绕,与周围循环毫无接触,其营养主要来自软骨终板的弥散作用。随着年龄的增长,细胞弥散作用减退,细胞过度凋亡增加,生物合成平衡被打破。在生化上表现为Ⅱ型胶原和蛋白多糖的减少、水分的丢失、分解代谢的酶类及炎性介质表达的增加,最终导致了椎间盘的退变【11|。这些变化变现在MRI上,可以表现为椎间隙变的狭窄,椎间盘髓核的他信号强度减弱。本实验缺损退变组在8周后发生了明显的退行性变,与移植治疗组和正常对照组比较有显著性差异,与文献报道相同¨引。

移植治疗组注入复合一PlumnicF—127后8周,髓核组织Ⅱ胶原免疫组织化学染色结果显示,移植治疗组Ⅱ型胶原含量与缺损退变组比较有明显差异。我们认为其机制是PluronicF一127植入体内后利用体温形成不流动的凝胶,避免了椎间盘内压力过大将复合物挤出和因液体渗出而造成种子细胞数量减少,随着PluronicF。127在体内的降解,PluronicF一127逐渐被BMSCs分泌多种生物活性的细胞基质取代,对残存的退变髓核产生营养的作用,从而增加残存髓核细胞合成细胞外基质的能力。

综上所述,本实验采用温控性水凝胶PluronicF-127作为细胞支架,制备BMscs—PlumnicF-127复合物,通过微创注射移植到退变椎间盘,结果发现可以缓解椎间盘退变,证明温控性水凝胶PlumnicF?127可以作为修复椎间盘退变的实验研究材料。与传统的预塑椎间盘组织工程支架材料相比,温控性水凝胶PluronicF—127水凝胶材料其有明显的优越性。通过注射的方法植入缺损的椎间盘内,很容易充满整个具有不规则形状的缺损部位,可减小手术的创伤。故P1uronicF—127作为生长因子控制释放载体和药物的缓释细胞支架,通过注射的方法植入退变缺损的椎间盘内是微创治疗椎间盘退变的一个研究新方向。

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fbr

BMSCs-Pluronic F-127水凝胶复合体移植治疗椎间盘退变的

实验研究

作者:李果, 吴小涛, 王运涛, 樊守刚, 王锋, LI Guo, WU Xiao-tao, WANG Yun-tao,FAN Shou-gang, WANG Feng

作者单位:东南大学附属中大医院,骨科,江苏,南京,210009

刊名:

东南大学学报(医学版)

英文刊名:JOURNAL OF SOUTHEAST UNIVERSITY(MEDICAL SCIENCE EDITION)

年,卷(期):2010,29(3)

参考文献(13条)

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本文链接:https://www.wendangku.net/doc/e22994728.html,/Periodical_njtdyxyxb201003014.aspx

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