人脑微血管内皮细胞
Human Brain Microvascular Endothelial Cells
(HBMEC)
Catalog Number: 1000 Cell Specification
The brain microvascular endothelial cells (MEC) are the major element of the blood-brain barrier and comprise the primary limitation to passage of substances, both soluble and cellular, from the blood into the brain. Brain MEC utilizes unique features that distinguish themselves from those of peripheral endothelial cells. Most prominent among these are the following: 1) intercellular ‘tight junctions’ that display high transendothelial electrical resistance and retard paracellular flux [1], 2) absence of fenestrae and a reduced level of fluid-phase endocytosis [2], and 3) asymmetrically-localized enzymes and carrier-mediated transport systems that engender a truly ‘polarized’ phenotype [3]. Like peripheral endothelial cells, however, brain MEC express, or can be induced to express, cell adhesion molecules on their surface that regulate the extravasation of leukocytes into the brain. In view of the organ specificity of MEC, Brain MEC has been widely used for studying the molecular and cellular basis of blood-brain barrier. HBMEC from ScienCell Research Laboratories are isolated from human brain tissue. HBMEC are cryopreserved at passage one and delivered frozen. Each vial contains >5 x 105 cells in 1 ml volume. HBMEC are characterized by immunofluorescent method with antibodies to vWF/Factor VIII and CD31 (P-CAM) and by uptake of DiI-Ac-LDL. HBMEC are negative for HIV-1, HBV, HCV, mycoplasma, bacteria, yeast and fungi. HBMEC are guaranteed to further culture in the conditions provided by ScienCell Research Laboratories.
Recommended Medium
It is recommended to use Endothelial Cell Medium (ECM, Cat. No. 1001) for the culturing of HBMEC in vitro.
Product Use
HBMEC are for research use only. It is not approved for human or animal use, or for application in in vitro diagnostic procedures.
Storage
Directly and immediately transfer cells from dry ice to liquid nitrogen upon receiving and keep the cells in liquid nitrogen until cell culture needed for experiments.
Shipping
Dry ice.
Reference
[1] Crone, C. and Oleson, S. P. (1992) Electrical resistance of brain microvessel endothelium. Brain Res. 241: 49-
55.
[2] Reese, T. S. and Karnovsky, M. J. (1967) Fine structural localization of blood-brain barrier to exogenous
peroxidase. J. Cell Biol. 34:9-14.
[3] Vorbrodt, A. W. (1988) Ultrastructural cytochemistry of blood-brain barrier endothelia. Prog. Histochem.
Cytochem. 18(3):1-96.
Instruction for culturing cells
Caution: Cryopreserved cells are very delicate. Thaw the vial in a 37o C waterbath
and return them to culture as quickly as possible with minimal handling!
Set up culture after receiving the order:
1.Prepare a fibronectin coated flask (2 μg/cm2, T-75 flask is recommended). Add 10 ml of
sterile Dulbecco’s phosphate buffered saline (DPBS) to a T-75 flask and then add 150 μl of fibronectin stock solution (1 mg/ml, Sigma cat. no. F1141). Leave the flask in incubator overnight.
2.Prepare complete medium: decontaminate the external surfaces of medium and medium
supplements with 70% ethanol and transfer them to sterile field. Aseptically open each supplement tube and add them to the basal medium with a pipette. Rinse each tube with medium to recover the entire volume.
3.Aspirate fibronectin solution and add 20 ml of complete medium to the flask. Leave the
flask in the hood and go to thaw the cells. The fibronectin solution can be used twice.
4.Place the vial in a 37o C waterbath, hold and rotate the vial gently until the contents are
completely thawed. Remove the vial from the waterbath immediately, wipe it dry, rinse the vial with 70% ethanol and transfer it to a sterile field. Remove the cap, being careful not to touch the interior threads with fingers. Using a 1 ml eppendorf pipette gently resuspend the contents of the vial.
5.Dispense the contents of the vial into the equilibrated, fibronectin-coated flask. A
seeding density of 7,500 cells/cm2 is recommended.
Note: Dilution and centrifugation of cells after thawing are not recommended since these actions are more harmful to the cells than the effect of DMSO residue in the culture. It is also important that endothelial cells are plated in fibronectin coated flask that promotes cell attachment.
6.Replace the cap or cover of flask, and gently rock the flask to distribute the cells evenly.
Loosen cap if necessary to permit gas exchange.
7.Return the culture vessels to the incubator.
8.For best results, do not disturb the culture for at least 16 hours after the culture has been
initiated. Change the growth medium the next day to remove the residual DMSO and unattached cells, then every other day thereafter. A healthy culture will display cobblestone or spindle shaped morphology, nongranular cytoplasm and the cell number will be double after two to three days in culture.
Maintenance of Culture:
1.Change the medium to fresh supplemented medium the next morning after establishing a
culture from cryopreserved cells. For subsequent subcultures, change medium 48 hours after establishing the subculture.
2.Change the medium every other day thereafter, until the culture is approximately 50%
confluent.
3.Once the culture reaches 50% confluence, change medium every day until the culture is
approximately 90% confluent.
Subculture:
1.Subculture the cells when they are over 90% confluent.
2.Prepare fibronectin coated flasks (2 μg/cm2) one day before subculture.
3.Warm medium, trypsin/EDTA solution, trypsin neutralization solution, and DPBS to
room temperature. We do not recommend warming the reagents and medium at 37o C waterbath prior to use.
4.Rinse the cells with DPBS.
5.Incubate cells with 10 ml of trypsin/EDTA solution (in the case of T-75 flask) until 80%
of cells are rounded up (monitored with microscope). Add 10 ml of trypsin neutralization solution to the digestion immediately and gently rock the culture vessel.
Note: Use ScienCell Research Laboratories’ trypsin/EDTA solution that is optimized to minimize the killing of the cells by over trypsinization.
6.Harvest and transfer released cells into a 50 ml centrifuge tube. Rinse the flask with
another 10 ml of growth medium to collect the residue cells. Examine the flask under microscope to make sure the harvesting is successful by looking at the number of cells left behind. There should be less than 5%.
7.Centrifuge the harvested cell suspension at 1000 rpm for 5 min and resuspend cells in
growth medium.
8.Count cells and plate them in a new, fibronectin-coated flask with cell density as
recommended.
Caution: Handling human derived products is potentially bioharzadous. Although each cell strain testes negative for HIV, HBV and HCV DNA, diagnostic tests are not necessarily 100% accurate, therefore, proper precautions mush be taken to avoid inadvertent exposure. Always wear gloves and safety glasses when working these materials. Never mouth pipette. We recommend following the universal procedures for handling products of human origin as the minimum precaution against contamination [1].
[1]. Grizzle, W. E., and Polt, S. S. (1988) Guidelines to avoid personal contamination by infective agents in research laboratories that use human tissues. J Tissue Culture Methods. 11(4).
第九章 内皮祖细胞
第九章内皮祖细胞 内皮祖细胞（EPC）是一类能循环、增值并分化为血管内皮细胞，但尚未表达成熟血管内皮细胞表型，也未形成血管的前体细胞。广义上认为EPC包括从血液血管干细胞分化为成熟内皮细胞的过程中所有一系列细胞。 第一节内皮祖细胞的分类与来源 一分类 从外周血中分离单细胞进行体外培养，3--5天后出现纺锤体形细胞，在2---3周生长达到高峰，在第4周死亡，称为早期EPC； 另一种细胞在第2---4周出现，成鹅卵石形，在4---8周呈指数生长，可存活12周，称为晚期EPC。 早期EPC主要存在于骨髓中，主要表面标记是CD133（AC133）、CD34、VEGFR-2 晚期EPC强表达所有内皮系标记VE-cadherin、FL T-1内皮一氧化氮合酶、CD31等。 二来源 EPC的来源主要有一下几种 1.血液血管干细胞 根据 （1）
造血干细胞（HSC）血细胞成分 血岛（卵黄囊的腹侧） 血管内皮前体细胞血管内皮细胞（原始毛细血管网） (2)原始的HSC和EPC享有共同的细胞表面标志CD34、AC133、血管内皮细胞生长因子受体-2（VEGFR-2） (3)HSC存在的部位如骨髓、外周血、新生儿脐带血、胎儿肝、胎儿脾均已证实含有EPC。 2.髓系祖细胞 髓系祖细胞是单核细胞和巨噬细胞定向分化的前体细胞。然而，许多实验表明，在血管生成的培养条件下，髓系CD34-/CD14+单核细胞能够表达许多内皮细胞的特异标志，并可在体外形成网状结构。 成熟的CD34-/CD14+外周血单核细胞在VEGF诱导下也能分化为内皮细胞样细胞，这些细胞同时表达内皮细胞标记。把这些细胞和CD34+细胞一起注入体内时，发现他们能够结合到新生血管的管壁中去。这一实验表明不仅CD34+细胞能分化成内皮细胞，CD34-/CD14+单核细胞能够分化为有生理功能的血管内皮细胞，并可作为EPC的来源。 3.多潜能成体祖细胞 许多成体组织存在少许MAPC。在细胞因子的诱导下，MAPC可在体外分化为内、中、外各胚层，在特定组织中定向分化为相应的干细胞。目前，成体造血组织骨髓中已被证实存在MAPC，体内外研究证实MAPC细胞可以分化为心肌细胞和血管内皮细胞。心脏组织残留的MAPC也成功分离，研究显示
小鼠肺微血管内皮细胞使用说明
小鼠肺微血管内皮细胞 小鼠肺微血管内皮细胞产品说明： 为使客户能尽快开展实验，派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期，且每次发货为汇合率达到70%的细胞，收到细胞后即可开展实验。 派瑞金提供的小鼠肺微血管内皮细胞取自新鲜的组织，按照标准操作流程分离培养。研发的小鼠肺微血管内皮细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件，降低杂细胞污染，保证不同批次间细胞质量的稳定。 同时，派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程，所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测，保证细胞纯度在90%以上；同时也需经过微生物检测，保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。 小鼠肺微血管内皮细胞注意事项： 1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好，培养液是否有漏液、浑浊等现象，若有上述现象发生请及时和我们联系。 2. 仔细阅读细胞说明书，了解细胞相关信息，如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。 3. 请客户用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用，细胞传代时可以一定比例和客户自备的培养基混合，使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。 4. 建议客户收到细胞后前3天各拍几张细胞照片，记录细胞状态。 5. 该细胞只能用于科研，不得用于临床应用。 小鼠肺微血管内皮细胞其他相关小鼠原代细胞： 小鼠小肠粘膜上皮细胞小鼠大隐静脉平滑肌细胞 小鼠肺微血管内皮细胞小鼠冠状动脉平滑肌细胞 小鼠肺血管平滑肌细胞小鼠大隐静脉内皮细胞 小鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞小鼠冠状动脉内皮细胞 小鼠气管上皮细胞小鼠骨细胞 小鼠气管平滑肌细胞小鼠滑膜细胞 小鼠肺成纤维细胞小鼠骨骼肌细胞 小鼠支气管上皮细胞小鼠表皮细胞 小鼠支气管成纤维细胞小鼠真皮成纤维细胞 小鼠肺大静脉平滑肌细胞小鼠破骨细胞 小鼠肺大动脉平滑肌细胞小鼠皮肤肥大细胞
实验动物大鼠原代脑微血管内皮细胞
实验动物（大鼠）原代脑微血管内皮细胞 产品编号：RAT-iCELL-n001 产品规格：>5×105细胞数 产品价格：3750 包装规格：T-25培养瓶 细胞详述： 脑微血管内皮细胞是血脑屏障的主要组成成分，能够限制可溶性物质和细胞等从血液进入大脑。大脑微血管内皮细胞与外周内皮细胞相比具有一些相同特性。 脑微血管内皮细胞存在许多细胞间紧密连接，产生很高的跨内皮阻抗，延迟细胞旁的通量；脑微血管的内皮细胞间衔接得十分紧密，不象其他组织的血管内皮细胞那样有较大的缝隙脑微血管内皮细胞缺乏内皮细胞的窗孔结构，其液相物质胞饮水平较低；脑微血管内皮细胞具有不对称定位酶和载体介导转运系统，从而产生“两极分化”的表现型。与外周内皮细胞相同，大脑微血管内皮细胞表面表达细胞粘附分子，调控白细胞进入大脑。由于微血管内皮细胞的器官特异性，内皮细胞通常取源于疾病研究的相关组织。 细胞特性: 1)组织来源于实验动物的脑动脉组织。 2)细胞鉴定：血管假性血友病因子（vWF）免疫荧光染色为阳性。 3)经鉴定细胞纯度高于90%。 4)不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌。 5)细胞生长方式：铺路石状细胞，不规则细胞，贴壁培养。 产品的运输和保存：
视天气状况和运输距离远近，公司与客户协商后选择下述方式中的一种进行。 1)1mL冻存细胞悬液装于1.8ml的冻存管中，置于装满干冰的泡沫保温盒中进 行运输；收到细胞后请尽快解冻复苏细胞进行培养，如无法立刻进行复苏操作，冻存细胞可在-80℃的条件下保存1个月。 2)T-25培养瓶充满完全培养基后进行常温运输；收到细胞后请镜下观察细胞生 长状态，如铺瓶率超过85%请立即进行传代操作，如悬浮的细胞较多，请将培养瓶至于培养箱中静置过夜以帮助未死亡的悬浮细胞能够再次贴壁。 推荐培养基： 我们推荐使用iCell原代内皮细胞培养体系（产品编号：PriMed-iCELL-002）作为体外培养原代脑动脉血管内皮细胞的培养基。 产品使用： 1)本产品仅能用于科研 2)本产品未通过直接用于活体动物和人的审核 3)本产品未通过用于活体诊断的审核
血管内皮祖细胞治疗缺血性心脏病的研究进展
匡堂绽述；Ｑ堕生！旦筮！！鲞箜！！翅丛型垫尘曼塑塑ｉ坐丛！：墅Ｐ！Ｑ塑：！生：！！：盟！：！！ ［１１］［１２］［１３］［１４］［１５］ＶａｎＩｔａｌｉｉｅＣＭ，ＡｎｄｅｒｓｏｎＪＭ．Ｔｈｅｍｏｌｅｃｕｌａｇｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙｏｆｔｉｇｈｔ ｊｕｎｃｔｉｏｎｐｏｒｅｓ［Ｊ］．Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ（Ｂｅｔｈｅｓｄａ），２００４，１９（６）：３３１－３３８． ＡｎｇｅｌｏｗＳ，ＡｈｌｓｔｒｏｍＲ，ＹｕＡＳ．ＢｉｏｌｏｇｙｏｆｅｌａｕｄｉｎｓＪＩ．ＡｍＪ ＰｈｙｓｉｏｌＲｅｎａｌＰｈｙｓｉｏｌ，２００８，２９５（４）：８６７－８７６． ＡｒｒｉｅｔａＭＣ．ＢｉｓｔｒｉｔｚＬ．ＭｅｄｄｉｎｇｓＪＢ．Ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓｉｎｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｐｏｒ－ ｍｅａｂｉｌｉｔｙｌＪ１．Ｇｕｔ，２００６，５５（１０）：１５１２．１５２０． ＶａｌｌＩｔａｌｌｉｅＣＭ．ＡｎｄｅｒｓｏｎＪＭ．Ｃｌａｕｄｉｎｓａｎｄｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｐａｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｔｒａｉｌｓ．Ⅳ，ｒｔｌＪＩ．ＡｎｎｕＲｅｖＰｈｙｓｉｏｌ，２００６，６８（３）：４０３－４２９． ＢａｌｋｏｖｅｔｚＤＦ．Ｔｉｇｈｔｉｕｎｃｔｉｏｎｃｌａｕｄｉｎｓａｎｄｔｈｅｋｉｄｎｅｙｉｎｓｉｅｋｎｅｓ６ ａｎｄｉｎｈｅａｌｔｈ【Ｊ】．ＢｉⅢ?ｈｉｍＢｉｏｐｈｙｓＡｃｔａ，２００８．７（４）：１０１６． ＷｉｌｌＣ。Ｆｎｍ，ｌｍＭ，Ｍｔｉｌｌｅｌ＂Ｄ．Ｃｌａｎｄｉｎｔｉｇｈｔｉｕ／Ｒｍｏｎｐｒｏｔｅｉｎｓ：ｎｏｖｅｌａ８． ｐｅａｓ ｉｎｐａｒａｅｅｌｈｌａｒｔｒａｎｓｐｏｒｔ［Ｊ］．ＰｅｔｉｔＤｉａｌＩｎｌ，２００８，２８（６）：５７７－５８４． ＮｉｔｔａＴ。ＨａｔｓＭ，ＧｏｔｏｈＳ。ｅｔａ１．Ｓｉｚｅ．ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｌｏｏｓｅｎｉｎｇｏｆｔｈｅ ｂｋｘＭ—ｂｒａｉｎｂａｒｒｉｅｒｉｎｃｌａｕｄｉｎ－５．ｄｅｆｉｃｉｅｎｔｍｉｃｅＪｆ．ＪＣｅｌｌＢｉｏｌ， ２００３．１６ｌ（３）：６５３－６６０． ＨｏｕＪ，ＧｏｍｅｓＡＳ，ＰａｕｌＤＬ。ｅｔａ／．Ｓｔｕｄｙｏｆｃｌａｎｄｉｎｆｕｎｃｔｉｏｎ ｂｙ眦～ ｉｎｔｅｒｆｅｒｅｎｃｅ｛Ｊ１．ＪＢｉｏｌＣｈｅｍ，２００６，２８ｌ（４７）：３６１１７．３６１２３． ＶａｎＩｔａｌｌｉｅＣＭ，ＨｏｌｍｅｓＪ，ＢｒｉｄｇｅｓＡ．ｅｔ ａ１．ＴｈｅｄｅｎｓｉｔｙｏｆｓｎｌｕＵ ｔｉｇｈｔｉｕｎｃｔｉｏｎｐｏｒｅｓｖａｒｉｅｓａｍｏｎｇｃｅｌｌｔｙｐｅｓａｎｄｉｓｉｎｃｒｅａｓｅｄｂｙｅｘ． ｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆｃｌａｕｄｉｎ－２［Ｊ］．ＪＣｅｌｌＳｃｉ，２００８。１２１（Ｐｔ３）：２９８－３０５． ＳｉｍｏｎＤＢ，ＬｕＹ，ＣｈｏａｔｅＫＡ，ｅｔａ１．Ｐａｒａｃｅｌｌｉｎ—１．ａｒｅｎａｌｔｉｇｈｔｉｕｎｅ． ｔｉｏｎｐｒｏｔｅｉｎｒｅｑｕｉｒｅｄｆｏｒｐａｒａｅｅｌｌｕｌａｒＭ９２＋ｒｅｓｏｒｐｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｓｃｉｅｎｃｅ， １９９９。２８５（５４“）：１０３一１０６． ＳｏｎＳ，ＫｏｊｉｍａＴ，ＤｅｃａｅｎｓＣ，ｅｔａ１．Ｋｎｏｃｋｄｏｗｎｏｆｔｉｓｈｔｉｕｎｃｔｉｏｎ ｐｒｏｔｅｉｎ ｃｌａｕｄｉｎ－２ ｐｒｅｖｅｎｔｓ ｂｉｌｅｃａｎａｌｉｃｕｌａｒｆｏｒｍａｔｉｏｎｉｎＷＩＦ—Ｂ９ ｃｅｌｌｓ［Ｊ］．ＨｉｓｔｅｃｈｅｍＣｅｌｌＢｉｏｌ，２００９，１３ｌ（３）：４１１４２４． ＤｅｃａｅｎｓＣ，ＲｏｄｒｉｇｕｅｚＰ，Ｂｏ血ｈａｕｄＣ．ｅｔａ１．Ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔｏｆｈｅ． ｐａｔｉｏｃｅｌｌｐｏｌａｒｉｔｙｉｎｔｈｅｒａｔｈｅｐａｔｏｎｍ—ｈｕｍａｎｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｈｙｂｒｉｄ ＷＩＦ—Ｂ９．Ａｂｉｐｈａｓｉｃｐｈｅｎｏｍｅｎｏｎ ｇｏｉｎｇ ｆｒｏｍａ ｓｉｍｐｌｅｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｐｏ． １ａｒｉｚｅｄｐｈｅｎｏｔｙｐｅｔｏａｎｈｅｐａｔｉｃｐｏｌａｒｉｚｅｄｏｎｅ［Ｊ］．ＪＣｅｌｌＳＣｉ，１９９６， ［１６］ ［１７］ ［１８］ ［１９］ ［２０］ ［２１］ ［２２］ ［２３］ ［２４］ ［２５］ ?２７５３? １０９（Ｐｔ６）：１６２３－１６３５． ＤｅｃａｅｎｓＣ。ＤｕｒａｎｄＭ。Ｇｌ＇ＯＳｓｅＢ，ｅｔ ａ／．骶ｉｃｈｉｌｔｉｖｉｔｒｏｍｏｄｅＩｓｃｏｕｌｄ ｂｅｂｅｓｔｕｓｅｄｔｏｓｔｕｄｙｈｅｐａｔｏｃｙｔｅｐｏｌａｒｉｔｙ？［Ｊ］．ＢｉｏｌＣｅｌｌ，２００８， １００（７）：３８７－３９８． Ｈａｄｊ．ＲａｂｉａＳ，ＢａｈｉａＬ，Ｖａｂ№Ｐ，ｅｆａ／．Ｃｌａｕｄｉｎ．Ｉｇｅｎｅｍｕｔａｔｉｏｎｓ ｉｎｎｅｏｎａｔａｌｓｃｌｅｍｓｉｎｇｅｈｏｌａｎｇｉｔｉｓａｓｓｏｃｉａｔｅｄｗｉｔｈｉｃｈｔｈｙｏｓｉｓ：ａｔｉｇｈｔ ｊｕｎｃｔｉｏｎｄｉｓｅａｓｅ【Ｊ］．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ。２００４，１２７（５）；１３８６一１３９０． ＴａｍｏｒａＡ。ＫｉｔａｎｏＹ．ＨａｔａＭ．ｅｔ ａ１．Ｍｅｇａｉｎｔｅｓｔｉｎｅ ｉｎｃｌａｕｄｉａ—１５一 ｄｅｆｉｃｉｅｎｔｍｉｃｅ［Ｊ］．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ，２００８，１３４（２）：５２３－５３４． ＺｈａｏＪ，ｄｅＶｅｒａＪ。ＮａｒａｓｈｉｍａＳ，ｅｔａ１．Ｒ—ｓｐｏｎｄｉｎｌ．ａｎｏｖｅｌｉｎｔｅｓｔ／． ｎｏｔｒｏｐｈｉｅｍｉｔｏｇｅｎ，ａｍｅｌｉｏｒａｔｅｓｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ｃｏｌｉｔｉｓｉｎｍｉｃｅ［Ｊ］． Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ。２００７，１３２（４）：１３３１．１３４３． ＪｏＶＯＶＢ，ＶａｎＩｔｌｌｉｅＣＭ，ＳｈａｈｅｅｎＮＪ，一ａ１．Ｃｌａｎｄｉｎ—ｌ８：ａｄｏｍｉｎａｎｔ ｔｉｇｈｔｊｕｎｃｔｉｏｎｐｒｏｔｅｉｎｉｎＢａｒｒｅｔｔ’ｓｅｓｏｐｈａｇｕｓａｎｄｌｉｋｅｌｙｃｏｎｔｒｉｂｕｔｏｒ ｔｏｉｔｓａｃｉｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ［Ｊ］．ＡｍＪＰｈ【ｙｓｉｏｌＧａｓｔｍｉｎｔｅｓｔＬｉｖｅｒＰｈｓｉｏｌ。 ２００７．２９３（６）：１１０６．１１１３． ＦａｓａｎｏＡ．Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ，ｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ，ａｎｄｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆｚｏｎｕｌｉｎ—ｍｅｄｉａｔｅｄｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｂａｒｒｉｅｒｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ：ｌｉｖｉｎｇｌｉｆｅｏｎｔｈｅ ｅｄｇｅｏｆｔｈｅｗａｌｌ［Ｊ］．ＡｍＪＰａｔｈｏｌ。２００８。１７３（５）：１２４３?１２５２． ＶａｌｌＩｔａｌｌｉｅＣＭ．ＢｔｔｓＬ．ＳｍｅｄｌｅｙＪＧ．村ａ１．Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｏｆｔｈｅｃｌａｕｄｉｎ． ｂｉｎｄｉｎｇｄｏｍａｉｎｏｆＣｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍｐｅｆｆｒｉｎｇｅｎｓｅｎｔｅｒｏｔｏｘｉｎ［Ｊ］．ＪＢｉｏｌ Ｃｈｅｍ．２００８，２８３（１）：２６８－２７４． ＴｓｕｋｉｔａＳ．ＦｕｒｕｓｅＭ．Ｃｌａｕｄｉｎ．ｂａｓｅｄｂａｒｒｉｅｒｉｎｓｉｍｐｌｅａｎｄｓｔｒａ！ｉｆｉｅｄ ｃｅｌｌｕｌａｒｓｈｅｅｔｓ【Ｊ］．ＣｕｒｒＯｐｉｎＣｅｌｌＢｉ０１．２００２．１４（５）：５３ｌ－５３６． Ｆｕ兀ｌｓｅＭ，ＨａｔａＭ，ＦｕｍｓｅＫ，ｅｔａ／．Ｃｌａｎｄｉｎ—ｈａｓｅｄｔｉｇｈｔｊｔｉｌｌ（－ｔｉｏｎｓ瓣 ｃｒｏｃｉａｌｆｏｒｔｈｅｍａｍｍａｌｉａｎｅｐｉｄｅｒｍａｌｔｍｒｔｉｅｒ：ａＩｅｔＫｓｏｎｆｒｍｎｃｌａｕｄｉｎ．１．ｄｅ－ ｆｉｃｉｅｎｔｎｆｉｃｅＩＪ】．ＪＣｅｌｌＢｉｏｌ，２０１１２，１５６（６）：１０９９一１１１１． ＮｌｅｓｓｅｎＣＭ．Ｔｉｇｈｔｊｕｎｃｔｉｏｎｓ／ａ，ｔｈｅｒｅｎｓｉｕｎｃｔｉｏｎｓ：ｂａｓｉｃｓｌｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄｆｕｎｏｔｉｏｎ【ＪＩ．ＪＩｎｖｅｓｔＤｅｒｍａｔｏｌ，２００７．１２７（１１）：２５２５．２５３２． 收稿Ｕ期：２００９旬３－２３修同日期：２００９－０７－０２血管内皮祖细胞治疗缺血性心脏病的研究进展 陈闽荔’，张金莲△（综述），吕建国（审校） （天津市胸科医院心内科，天津３０００５１） 中圈分类号：Ｒ５４１文献标识码：Ａ文章编号：１００６－２０８４（２００９）１８－２７５３－０４ 摘要：内皮祖细胞是内皮细胞的前体细胞，是一类能够迁移、增殖，并分化为成熟血管内皮细胞 的前体细胞，属于干细胞群体，参与人胚胎血管生成及出生后血管新生和内皮损伤后的修复过程，还可在一定条件下分化为心肌细胞。近年来的研究表明其与冠心病发生、发展及治疗的关系密切，为冠心病治疗提供了新思路。本文就内皮祖细胞的生物学特性及其在缺血性心脏病中的临床研究现状予以综述。 关键词：内皮祖细胞；缺血性心脏病；治疗；细胞移植 Ｐｒｏｇｒｅｓｓ ａｂｏｕｔＥｎｄｏｔｈｅｌｌａｌＰｒｏｇｅｎｉｔｏｒＣｅｌｉｓｉｎＴｒｅａｔｉｎｇｌｓｃｈｅｍｉｃＨｅａｒｔＤｉｓｅａｓｅＣＨＥＮＭｉｎ．１ｉ．ＺＨＡＮＧＪｉｎ?ｌｉａｎ，ＬＶＪｉａｎ－ｇｕＤ．（ＤｅｐａｒｔｍｅｎｔｏｆＣａｒｄｉｏｌｏｇｙ，ＣｈｅｓｔＨｏｓｐｉｔａｌｏｆＴ／ａ彬ｎ，‰ｎｊｉｎ３０００５１，Ｃｈｉｎａ）Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌｉｓｔｈｅｐｍｃｅｌｌｏｆｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓ．ｗｈｉｃｈＣａｌｌｍｉｇｒａｔｅ，ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｅ ａｎｄｄｉｆｉｅｒｅｎｔｉａｔｅｔｈｅｐｒｏｃｅｌｌｏｆｍａｔｕｒｅｔＩｒｅｓｓｅｌｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｅｅｌＩｓ．Ｔｈｅｙｂｅｌｏｎｇｔｏｓｔｅｍｃｅｌｌｓ．ｗｈｉｃｈｐａｒｔｉｃｉｐａｔｅｎｏｔｏｎｌｙｔｈｅｅｍｂｒｙｏｎｉｃｖａｓｅｕｌａｒｉｚａｔｉｏｎ。ｂｕｔａｌｓｏｔｈｅｖａｓｃｕｌａｒｎｅｏｇｅｎｅｓｉｓａｆｔｅｒｂｅｍａｎｄｒｅｐａｉｒｐｒｏｃｅｓｓａｆｔｅｒｅｎｄｏ．ｔｈｅｌｉａｌｉｎｊｕｒｙ．Ｔｈｅｒｅｃｅｎｔｒｅｓｅａｒｃｈｅｓｓｕｇｇｅｓｔｅｄｔｈａｔｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌｓｓｈｏｕｌ‘ＪｂｅｒｅｌａｔｅｄｔｏＣｏｍｎａｒｙ ｈｅａｒｔｄｉｓｅａｓｅｃｌｏｓｅｌｙａｂｏｕｔｉｔｓｇｅｎｅｓｉｓ．ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｔｈｅｒａｐｙ．ＥＰＣｐｒｅｏｖｉｄｅｓ ａ ｎｅｗｉｄｅａｓｆｏｒｔｈｅｔｒｅａｔｍｅｎｔｏｆｃｏｒｏｎａｒｙｈｅａｒｔｄｉｓｅａｓｅ．Ｔｈｉｓａｒｔｉｃｌｅｒｅｖｉｅｗｅｄｔｈｅｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓａｎｄｃｌｉｎｉｃａｌｓｔｕｄｉｅｓｏｆｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌｓｉｎｉｓｃｈｅｍｉｃｈｅａｒｔｄｉｓｅａｓｅ． Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌｓ；Ｉｓｅｈｅｍｉｅｈｅａｒｔｄｉｓｅａｓｅ；Ｔｈｅｒａｐｙ：Ｃｅｌｌｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ 缺血性心脏病（ｉｓｅｈｅｍｉｃｈｅａｒｔｄｉｓｅａｓｅ，ＩＨＤ）是由 于冠状动脉循环改变引起冠状动脉血流和心肌需求 之间不平衡而导致的心肌损害，在急性缺血时，心肌 细胞在短时间内大量凝固性坏死；慢性长期血供不 足使心肌组织发生营养障碍和萎缩，残余的心肌细 胞无法莺建坏死的组织，心脏功能随着时间进行性 恶化，其中最常见的原因是冠心病，约占９０％。ＩＨＤ 是严重危害居民健康的多发病和常见病，是慢性心 力衰竭的主要原因，传统的治疗手段主要是重建血供，而不能修复损伤和坏死心肌。近几年兴起的干细胞移植治疗ＩＨＤ不仅可以再生血管，而且可以再生心肌，使人们看到了新的希望。血管内皮前体细胞或血管内皮祖细胞（ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｐｒｏｇｅｎｉ－ｔｏｒｃｅｌｌ。ＥＰＣ）是成熟血管内皮细胞的前体细胞，能够特异性归巢于血管新生组织并分化为血管内皮细胞，属于干细胞群体，既可自我更新 又能定向分化为成熟的血管内皮细胞，参与血管再 生和损伤血管的再内皮化，还可在一定条件下分化 为心肌细胞，具有重要的生理和病理意义，也为缺血 性心脏疾病的治疗提供了新策略…。 １ＥＰＣ概述 １．１ＥＰＣ的来源胚胎期第１３～１５天，胚外造血 启动，卵黄囊的胚外中胚层的一些间充质细胞逐渐 聚集成条索或团块状，形成血岛。这些细胞团结构 进一步出现腔隙化改变，聚集在细胞群中央的细胞…㈨㈨………州 万方数据
血管内皮祖细胞与血管新生的研究进展(一)
血管内皮祖细胞与血管新生的研究进展(一) 【关键词】血管内皮祖细胞；血管新生 血管内皮祖细胞(endothelialprogenitorcells，EPCs)是一类能分化为成熟血管内皮细胞的前体细胞，不仅参与人胚胎血管生成，同时也参与出生后血管新生和内皮损伤后的修复过程。大量的研究显示，动员和移植的EPCs可提高缺血组织的血管新生能力，促进损伤血管的修复和再内皮化，这为治疗以坏死性血管炎为主要病理改变的一类疾病带来了新的希望。因此EPCs已成为目前的研究热点之一，本文就血管内皮祖细胞与血管新生的关系及其在治疗性血管新生中应用的研究进展作一综述。 1内皮祖细胞的来源 内皮祖细胞（EPCs）是近年来研究较多的一类细胞。1997年Asahara等〔1〕首次从成人外周血单个核细胞中分离得至CD34+细胞，因其在体外可向内皮表型细胞分化，表达内皮细胞标志物并且参与血管形成，故将此命名为EPCs。EPCs也叫成血管细胞，是一种多能干细胞，能循环、增殖并分化为成熟血管内皮细胞的前体细胞，缺乏成熟内皮细胞的特征性表型，不能形成管腔样结构。EPCs起源于胚外中胚层卵黄囊血岛，由位于血岛外层的造血/成血管细胞（又称原血干细胞，是造血干细胞和内皮祖细胞的共同起源）分化发育而来。目前，许多研究证明，EPCs在成人外周血，人脐带静脉血和骨髓中均有分布，且人外周血、脐带血的EPCs均来自于骨髓。EPCS的来源还有多潜能成体祖细胞(multipotentadultprogenitorcells，MAPCs)、骨骼肌〔2〕。Lin等〔3〕发现骨髓来源的EPCs增殖能力明显高于成熟循环内皮细胞，两者体外扩增能力之比为50:1。在骨髓内EPCs与造血干细胞和骨髓基质细胞之间存在着密切联系，造血干细胞和骨髓基质细胞可影响EPCs的发育、增殖、动员和迁移。Murahara 等〔4〕用免疫磁珠分离法从脐血中成功地分离出EPCs，这些细胞经培养可以摄取as-LDL，释放NO，表达VE-cadherin、CD31和vWF。在体外扩增后回输到裸鼠肢体缺血模型，发现EPCs参与了缺血局部新生毛细血管的形成，因此脐血可成为EPCs研究的细胞来源。Gehling 等〔5〕从G-CSF动员的外周血中分离到CDl33+细胞，在VEGF和干细胞生长因子的诱导下形成了内皮细胞。 Zengin等〔6〕研究发现在成人几乎各个脏器的大中血管的平滑肌和外膜之间存在一个“血管发生区域”，该区域中也存在着CD34+、VEGFR-2+的EPC，并且有少部分细胞为CD45+。该区域可能是出生后血管发生的源泉，且与肿瘤的血管生成有关。 2EPCs的表面标记 由于EPCs与造血细胞(hematopoieticstemcells，HSCs)有着共同的起源，所以它们具有许多共同的表面标记，如CD34、CD133、VEGFR-2、Eph等；EPCs进一步分化为成熟内皮细胞，两者都表达内皮细胞特异性的表面标志，包括VEGFR-2、Tie-1、Tie-2和VE-cadherin〔7〕。这些相同的表面标记使EPCs的分选变得非常困难，其中有3个最重要的表面标志：CD34、CD133、VEGFR-2。一般将CD34+／CD133+／KDR(VEGFR-2+或Flk-l+)的细胞定义为EPCs。有研究表明，同时表达CD133、VEGFR-2和CD34的细胞具有迁移并分化为成熟内皮细胞的能力，能够促进出生后的血管形成。 CD34是一种白细胞分化抗原，它选择性地表达在造血前体细胞、血管内皮细胞、间质前体细胞和各种问质肿瘤细胞中，是骨髓、外周血和脐血中HSCs的主要标志，可同时识别出包括HSCs、EPCs和成熟内皮细胞的混合细胞群。从外周血中分离出的CD34细胞在体外能够向内皮细胞分化，在体内能够促进新生血管形成，因此，这些细胞可能大多数为EPCs。但是，近来研究发现，CD34-细胞群体中也含有EPCs〔8〕，这使得用CD34来富集EPCs的方法受到挑战。 CD133(又称AC133)是存在于人细胞表面的糖蛋白，相对分子质量为120000的糖基化多肽，含有5个跨膜结构域，包括膜外的N端及胞浆内C残端，选择性地在人类胎肝、骨髓和血
小鼠心肌微血管内皮细胞使用说明
小鼠心肌微血管内皮细胞 小鼠心肌微血管内皮细胞产品说明: 为使能尽快开展实验，派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期，且每次发货为汇合率达到70%的细胞，收到细胞后即可开展实验。 派瑞金提供的小鼠心肌微血管内皮细胞取自新鲜的组织，按照标准操作流程分离培养。研发的小鼠心肌微血管内皮细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件，降低杂细胞污染，保证不同批次间细胞质量的稳定。 同时，派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程，所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测，保证细胞纯度在90%以上；同时也需经过微生物检测，保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。 注意事项： 1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好，培养液是否有漏液、浑浊等现象，若有上述现象发生请及时和我们联系。 2. 仔细阅读细胞说明书，了解细胞相关信息，如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。 3. 请用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用，细胞传代时可以一定比例和自备的培养基混合，使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。 4. 建议收到细胞后前3天各拍几张细胞照片，记录细胞状态。 5. 该细胞只能用于科研，不得用于临床应用。 小鼠心肌微血管内皮细胞产品简介: 1、产品名称：小鼠心肌微血管内皮细胞 2、组织来源：小鼠心肌血管组织 3、产品规格：5×105cells / 25cm2培养瓶 小鼠心肌微血管内皮细胞简介： 小鼠心肌微血管内皮细胞分离自正常小鼠心肌血管组织，血管内皮细胞密切参与包括再生、发育、伤口愈合等一系列生理及炎症反应。 本公司生产的小鼠心肌微血管内皮细胞，细胞总量约为5×105cells/瓶，细胞纯度可达80%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。 小鼠心肌微血管内皮细胞培养基信息：
脑微血管内皮细胞与体外培养神经干细胞共培养后Th1Th2相关细胞因子的表达
脑微血管内皮细胞与体外培养神经干细胞共培养后Th1/Th2相关细胞因子的表达 罗文芳 1 唐涛黎杏群林源罗杰坤钟鹏程刘清娥 （中南大学湘雅医院中西医结合研究所，湖南 长沙410008） 〔摘 要〕目的 体外观察脑微血管内皮细胞（MVECs ）对来自大鼠海马神经干细胞（NSCs ）免疫相关细胞因子表达的影响。方法 采用Tran- swell 建立神经干细胞与脑微血管内皮细胞共培养模型（NSCs +MVECs ），用荧光免疫化学和RT-PCR 测定NSCs 中与Th1相关的IFN-γ、IL-2及与Th2相关的IL-4、IL-10的表达。结果两种细胞共培养后，神经干细胞呈INF-γ，IL-2，IL-4，IL-10阳性；同时INF-γ、IL-2mRNA 的表达上调，而IL-4、IL-10mRNA 的表达下调，与空白对照组比较明显差异（P ＜0.01）。结论 脑微血管内皮细胞（MVECs ）有可能使神经干细胞的INF-γ、 IL-2表达上调，IL-4、IL-10的表达下调。 〔关键词〕脑微血管内皮细胞；神经干细胞；Th1细胞因子；Th2细胞因子〔中图分类号〕R743.34 〔文献标识码〕A 〔文章编号〕1005-9202（2012）03-0512-05；doi ：10.3969/j.issn.1005-9202.2012.03.034 The expressions of Th1/Th2related cytokines after co-cultured microvascular endothelial cells with neural stem cells in vitro LUO Wen-Fang ，TANG Tao ，LI Xing-Qun ，et al . TCM Research Insitute of Xiangya Hospital Central-South University ，Changsha 410008，Hunan ，China 【Abstract 】Objective To investigate microvascular endothelial cells （MVECs ）on the expressions of IFN-γ，IL-2，IL-4，IL-10of NSCs in vitro.Methods Rat neural stem cells （NSCs ）aged 3 5day were adopted for amplification in vitro ，and co-cultured microvascular endothelial cells with neural stem cells.After 48h ，the expressions of IFN-γ，IL-2，IL-4，IL-10were assayed by immunohistochemistry and RT-PCR.Results After 48h of co-cultured ，the NSCs was positive of expressions in cytokines INF-γ，IL-2，IL-4，IL-10；and the expres-sions of INF-γ，IL-2were increased ，the expressions of IL-4，IL-10were deceased （P ＜0.01）.Conclusions MVECs maybe up-regulate the expressions of IFN-γ，IL-2and down-regulate the expressions of IL-4，IL-10of NSCs.【Key words 】Microvascular endothelial cells （MVECs ）；Neural stem cells ；Th1cytokines ；Th2cytokines 基金项目：国家自然科学基金资助项目（30472264）1 南华大学附属第一医院中医科 通讯作者：黎杏群（1933-），女，教授，主要从事中西医结合脑血管病及 肿瘤病研究。 第一作者：罗文芳（1980-），男，硕士，主要从事中西医结合脑血管病及 肿瘤病研究。 Th 细胞是决定移植免疫排斥的关键成分，Th1细胞产生IFN-γ和IL-2介导细胞免疫；Th2细胞则产生IL-4、IL-10等，介导体液免疫。针对同种异体抗原的移植免疫应答主要是由Th1细胞介导。研究发现，在移植器官功能发生障碍之前，常检测到IFN-γ、 IL-2基因表达增高〔1〕 。侧脑室的脑室下带（Svz ）和海 马的颗粒下带（SGz ）集中于血管周围，而且和内皮细胞间仅隔一层基板，这种解剖上的毗邻关系暗示了NScs 和内皮细胞间存在密切的联系。本实验模拟内皮细胞与神经干细胞的体内环境建立共培养模型，观察Th1/Th2细胞相关细胞因子的变化，探讨同种异体内皮细胞与神经干细胞的免疫反应关系。1材料与方法1.1材料1.1.1 实验动物 新生3d 的Sprague-Dawley 乳鼠6只，新生 7 10d Sprague-Dawley 乳鼠20只，雌雄不拘，由中南大学湘雅医学院实验动物学部提供。 1.1.2主要试剂及药物M199干粉培养基、D-Hank's 液干粉 （Hyclone ），谷氨酰胺（上海伯奥），肝素钠、明胶、台盼蓝、胰蛋白酶、Ⅱ型胶原酶（Sigma ），胎牛血清（杭州四季青），DNase Ⅰ（Roche ），多聚赖氨酸（武汉博士德），bFGF 、EGF （Pepro Tech EC ），抗Ⅷ因子相关抗原多克隆抗体（美国PharMingen ），Trizo1试剂盒、DNA Marker 、逆转录（RT ）试剂盒、Pre Mix Taq （宝生物大连），β-actin 引物（上海生工），一抗（Abcam ），辣根过氧化物酶标记的羊抗兔IgG 、辣根酶标记链霉亲和素、浓缩DAB 试剂盒（北京中山），其他常用试剂为国产分析纯产品。1.1.3 主要仪器 OLYMPUS IXTO 倒置显微镜（日本OLYM-PUS ），QWJ300TVBB 型CO 2培养箱（美国产），Sanyo 超低温冰箱（日本三洋），ELX800酶标仪（美国产），超净工作台（苏州净化）， E260电子天平（梅特勒），Beckman J2-21型低温离心机（美国产），Beckman DU-640紫外分光光度计（美国产），Nikon 倒置荧光相差显微镜（日本尼康）， PCR 仪（美国ABI ），DDY 多导电泳仪（北京六一）， UPW-5超纯水仪（美国产），DHW-60恒温水浴箱、DHP-81恒温箱（上海医用仪器厂），50ml 培养瓶、培养板、滤器等耗材（Costar 、Millipore 等公司）。1.2方法 1.2.1 血管内皮细胞培养液的配制 用超纯水溶解M199干 粉培养基，配制成体积比为1?1的M199无血清培养基（每1000ml 培基中另加2.2g 碳酸氢钠、1g 葡萄糖、0.9g 谷氨酰
毛细血管(二)
毛细血管（二） 毛细血管（capillary）是管径最细，分布最广的血管。它们分支并互相吻合成网（图8－8）。各器官和组织内毛细血管网的疏密程度差别很大，代谢旺盛的组织和器官如骨骼肌、心肌、肺、肾和许多腺体，毛细血管网很密；代高血压较低的组织如骨、肌腱和韧带等，毛细血管网则较稀疏。 图8-8 人胃粘膜血管铸型扫描电镜像示毛细血管网 （一）毛细血管的结构 毛细血管管径一般为6～8μm，血窦较大，直径右达40μm。毛细血管管壁主要由一层内皮细胞和基膜组成。细的毛细血管横切面由一个内皮细胞围成，较粗的毛细血管由2～3个内皮细胞围成。内皮细胞基膜外有少许结缔组织。在内皮细胞与基膜之间散在有一种扁而有突起的细胞，细胞突起紧贴在内皮细胞基底面，称为周细胞（pericyte）（图8－9，8－10）。周细胞的功能尚不清楚，有人认为它们主要起机械性支持作用；也有人认为它们是未分化的细胞，在血管生长或再生时可分化为平滑肌纤维和成纤维细胞。 图8-9 毛细血管扫描电镜像示周细胞 P 周细胞胞体 1、2周细胞突起
图8-10 毛细血管电镜像 左图连续毛细血管，中图有孔毛细血管，右图毛细血管扫描电镜像示内皮孔 E 内皮细胞，P周细胞，↑内皮细胞孔 (二)毛细血管的分类 光镜下观察，各种组织和器官中的毛细血管结构相似，但在电镜下，根据内皮细胞等的结构特点，可以将毛细血管分为三型。 1．连续毛细血管连续毛细血管（continuous capillary）的特点为内皮细胞相互连续，细胞间有紧密连接等连接结构，基膜完整，细胞质中有许多吞饮小泡。连续毛细血管分布于结缔组织、肌组织、肺和中枢神经系统等处。肺和中枢神经系统内的毛细血管内皮细胞甚薄，含吞饮小泡较少（图8－10）。 2．有孔毛细血管有孔毛细血管（fenestrated capillary）的特点是，内皮细胞不含核的部分很薄，有许多贯穿细胞的孔，孔的直径一般为60～80nm（图8－10）。许多器官的毛细血管的孔有隔膜封闭，隔膜厚4～6nm，较一般的细胞膜薄。内皮细胞基底面有连续的基板。此型血管主要存在于胃肠粘膜、某些内分泌腺和肾血管球等处。肾血管球的内皮细胞的孔没有隔膜。 3．血窦血窦（sinusoid）或称窦状毛细血管（sinusoid capillary），管腔较大，形状不规则，主要分布于肝、脾、骨髓和一些内分泌腺中。血窦内皮细胞之间常有较大的间隙，故又称不连续毛细血管（discontinuous capillary）。不同器官内的血窦结构常有较大差别，某些内分泌腺的血窦，内皮细胞有孔，有连续的基板；有些器官如肝的血窦，内皮细胞有孔，细胞间隙较宽，基板不连续或不存在。脾血窦又不同于一般血窦，其内皮细胞呈杆状，细胞间的间隙也较大。 （三）毛细血管与物质交换 毛细管是血液与周围组织进行物质交换的主要部位。人体毛细血管的总面积很大，体重60kg的人，毛细血管的总面积可达6000m2。毛细血管管壁很薄，并与周围的细胞相距很近，这些特点是进行物质交换的有利条件。 物质透过毛细血管壁的能力称毛细血管通透性（capillary permeability）。毛细血管结构与通透性关系的研究表明，内皮细胞的孔能透过液体和大分子物质，吞饮小泡能输送液体，细胞间隙则因间隙宽度和细胞连接紧密程度的差别，其通透性有所不同。基板能透过较小的分子，但能阻挡一些大分子物质。另外一些物质，如O2、CO2和脂溶性物质等，可直接透过内皮细胞的胞膜和胞质。
血管内皮祖细胞与冠心病的研究进展
?１１４? ?综述? ！随废匡堂！Ｑ塑生！！旦箜垫鲞笙１２期￡！型型丛型丝些：旦竺：２Ｑ塑：！！！：垫：盥垒！兰血管内皮祖细胞与冠心病的研究进展 严卓综述李结华审校 （安徽医科大学第一附属医院干部心内科，合肥２３００２２） 冠心病（ＣＨＤ）是现代社会严莺威胁人类健康的主要疾病之一，其病死率极高。内皮细胞的损伤与ＣＨＤ的发生发展关系密切。血管内皮祖细胞（ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌｓ，ＥＰＣｓ）作为内皮细胞的前体细胞，在组织缺血及血管损伤时动员入血，参与微血管的生成及血管内皮的修复，在冠心病发生及发展过程中起着非常莺要的作用。现就｜ＩＩＬ管内皮祖细胞的生物学特性、与冠心病相互关系的研究进展及目前存在的问题综述如下。 ｌＥＰＣｓ的定义及其生物学特性 １．１ＥＰＣｓ的起源与分化：血管祖细胞是指能产生成熟的、有功能的血管壁细胞和前体细胞群，主要包括内皮祖细胞（ＥＰＣｓ）、平滑肌祖细胞（ｓｍｏｏｔｈｍｕｓｃｌｅｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｃｅｌｌｓ，ＳＭＰＣ）、造血干细胞（ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｅｓｔｅｍｃｅｌｌｓ，ＨＳＣ）、间充质干细胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓ，ＭＳＣ）和其他来源的前体细胞‘“。ＥＰＣｓ是一群在胚胎发育过程中，发源于中胚层、发源部位邻近并具有发育和分化为外周血细胞和血管壁细胞功能的细胞群‘“。１９９７年，Ａｓａｈａｒａ等报道ｆ自成人体内分离纯化的ＣＤ３４＋的造血祖细胞可在体外培养分化成内皮细胞表型．表达内皮细胞标记并整合进缺血部位的新生皿管中，这些细胞即为ＥＰＣｓ。在体外，ＥＰＣｓ能吸收乙酰化低密度脂蛋白，结合荆豆凝集素（ｕｌｅｘｅｕｒｏｐｅａｓｌｅｃｔｉｎ）形成毛细血管管腔样结构；在体内，ＥＰＣｓ能募集、归巢到血管损伤区，分化为内皮细胞，促进血管再生。 １．２ＥＰＣｓ的分离、表面标记和体外诱导分化：ＥＰＣｓ主要集中在骨髓，同时在外周血及胎肝、脐带血中亦有存在。日前，用于ＥＰＣｓ的体外分离纯化的方法有两种。包括密度梯度离心法和免疫磁珠分选法。对于ＥＰＣｓ的表型特征尚存在诸多争议：最初内皮祖细胞被定义为既有造血细胞的标记如ＣＤ３４，又有内皮细胞的标记如血管内皮生长因子受体一２（ｖａｓｃｕｌａｒｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｇｒｏｗｔｈｆａｃｔｏｒｒｅｃｅｐｔｏｒ一２，ＶＥＧＦＲ一２）的一群幼稚细胞，随着细胞的分化，幼稚细胞的特征（ＣＤ３４）会逐渐消失。取而代之的是内皮细胞的表型特征。骨髓中的ＥＰＣｓ进入外周血后会逐渐丧失ＣＤｌ３３抗原而ＣＤ３４和ＶＥＧＦＲ一２表犁仍可呈阳性，而且还表现出血管内皮细胞钙粘素、ＣＤ３１、血管性血友病因子（ｖＷＦ）、内皮一氧化氮合酶（ｅＮＯＳ）及Ｅ选择素以及结合乙酰化低密度脂蛋白胆固醇的阳性特征。随后进一步的研究发现，ＣＤｌ３３在成熟内皮细胞以及单核细胞不表达，由此可见，ＣＤｌ３３＋／ＶＥＧＦＲ＋的细胞町能更能反映内皮祖细胞，但至今的研究尚未发现ＥＰＣｓ失去ＣＤｌ３３标志的准确时间和机制。，同时有研究证明．造血千细胞以外的其他细胞群也有分化为内皮细胞，并形成内皮样结构的能力，如脂肪组织来源的于细胞，以及神经干细胞在特定环境下能分化为内皮细胞，并拥有促进血管新，圭的潜能…。所以，目前尚难定义一种“真正”的内皮祖细胞。 有研究发现｜４１，ＥＰＣｓ有迟发性高增殖能力，体外培养时ＥＰＣｓ的扩增能力是１０００倍，而成熟的内皮细胞仅为２０倍。成熟微血管内皮细胞在体外能很快进入增殖期。但４～６周后增殖活力即逐渐下降。与此相反，外周血、胎肝、骨髓来源的ＥＰＣｓ细胞在１５—２０ｄ后形成迅速生长的鹅卵石样内皮细胞层，并能稳定传代３０次以上，其增殖潜能是脐静脉内皮细胞的ｌｏ倍。ＥＰＣｓ在ＶＥＧＦ、粒细胞集落刺激因子（Ｇ—ＣＳＦ）等趋化因子的作用下能归巢到缺血组织参与新生血管形成。ＥＰＣｓ作为血管内皮的前体细胞。也具有与成熟血管内皮细胞相似的特性，如能表达内皮系特异性抗原，能摄入乙酰化低密度脂蛋白并能与荆豆凝集素反应，在体外培养７～１０ｄ的内皮祖细胞成纺锤形内皮细胞样并町成典型的铺路石样形态特征，能分泌维持正常血管功能的活性物质，作为组织工程再生内皮化的种子细胞具有良好的血液相容性．能分泌抗血栓形成的生物活性物质。 １．３ＥＰＣｓ的动员、迁移、归巢：ＥＰＣｓ在骨髓分化完成后，经过动员经血液循环到达损伤部位并分化为成熟的内皮细胞，参与损伤部位内皮的修复和新生血管的生成，这一过程被称为ＥＰＣｓ的动员，确切机制尚不清楚。研究表明，如ＶＥＧＦ、Ｇ—ＣＳＦ、粒一巨噬细胞集落刺激因子（ＧＭ—ＣＳＦ）、干细胞因子（ＳＣＦ）和基质细胞衍牛因子一ｌ（ＳＤＦ一１）等细胞因子在ＥＰＣｓ的动员、归巢和分化中发挥重要的作用Ｈ１。ＥＰＣｓ的分化与粘附分子、粘附后细胞间的相互作用及微环境有密切关系。有研究指出，Ｃ一反庇蛋白可抑制ＥＰＣｓ的分化。用Ｃ一反应蛋白处理ＥＰＣｓ，可通过抑制ｅＮＯＳｍＲＮＡ的表达，显著抑制ＥＰＣｓ的分化，并加速其凋亡冲Ｊ。基质细胞衍生因子ＳＤＦ—ＩＯａ与ＥＰＣＳ表面的趋化子受体ＣＸＣＲ一４结合，在ＥＰＣｓ的归巢中也发挥重要作用“。血管紧张素Ⅱ受体阻断剂能增加２型糖尿病患者循环中再生ＥＰＣｓ数目，可能有助于保护心血管系统。“，另外，体内缺血、血管损伤可动员骨髓中的ＥＰＣｓ，使其向外周循环迁移，并分化为成熟内皮细胞，促进形成新牛血管，缓解组织缺血和修复血管损伤。Ｓｈｉｎｔａｎｉ等的研究也支持这个结论。 １．４ＥＰＣｓ的功能和病理生理意义：胚胎血管有丽个过程发育，即血管发生和血管生成。血管发生是指中胚层衍生的血管母细胞在发育胚胎中形成原始血管网，血管生成是指从已存在的血管中生长出新的毛细血管。最初的学者认为成人血管仅由血管新生来维持和修复，但ＥＰＣｓ的发现提示在成人也存在血管发生。有研究证实，在新生血管中有约２５％的内皮细胞有ＥＰＣｓ增殖分化而来一ｊ。同时有研究指出，ＥＰＣｓ不仅参与生理性血管形成，而且在多种病理状态下也能被动员入外周循环，增强代偿性血管重建并参与肿瘤血管的生成，如在非小细胞肺癌中发现（＇Ｄ１３３（＋）ＥＰＣｓ参与其血管生成，促进肿瘤生长。 ２ＥＰｃｓ与冠心病 ２．１冠心病患者内皮细胞的变化：研究证实¨…，冠心病发生 万方数据
小鼠视网膜微血管内皮细胞使用说明
小鼠视网膜微血管内皮细胞 小鼠视网膜微血管内皮细胞产品说明： 为使能尽快开展实验，派瑞金发货的原代细胞均处于对数生长期，且每次发货为汇合率达到70%的细胞，收到细胞后即可开展实验。 派瑞金提供的小鼠视网膜微血管内皮细胞取自新鲜的组织，按照标准操作流程分离培养。研发的小鼠视网膜微血管内皮细胞完全培养基能提供细胞最佳的生长条件，降低杂细胞污染，保证不同批次间细胞质量的稳定。 同时，派瑞金还建立了严格的细胞鉴定流程，所提供的原代细胞均需经过细胞类型特异性标记物、细胞形态学等检测，保证细胞纯度在90%以上；同时也需经过微生物检测，保证不含有HIV、HBV、HCV、支原体、真菌及其他类型的细菌。 注意事项： 1. 收到细胞后首先观察细胞瓶是否完好，培养液是否有漏液、浑浊等现象，若有上述现象发生请及时和我们联系。 2. 仔细阅读细胞说明书，了解细胞相关信息，如细胞形态、所用培养基、血清比例、所需细胞因子等。 3. 请用相同条件的培养基用于细胞培养。培养瓶内多余的培养基可收集备用，细胞传代时可以一定比例和自备的培养基混合，使细胞逐渐适应培养条件;建议使用派瑞金的完全培养基。 4. 建议收到细胞后前3天各拍几张细胞照片，记录细胞状态。 5. 该细胞只能用于科研，不得用于临床应用。 小鼠视网膜微血管内皮细胞产品简介： 1、产品名称：小鼠视网膜微血管内皮细胞（Mouse Retinal Microvascular EndothelialCells） 2、组织来源：小鼠视网膜组织 3、产品规格：5×105cells / 25cm2培养瓶 小鼠视网膜微血管内皮细胞简介： 小鼠视网膜微血管内皮细胞（Rat Retinal Microvascular Endothelial Cells）来源于成年小鼠视网膜组织，其是组成血管腔面单层扁平上皮样细胞，它所产生和分泌的生物活性物质对维持血管张力，调节血压，抗血栓形成等有重要作用，在视网膜血管疾病的发病机制中有重要病理生理学意义。 本公司生产的小鼠视网膜微血管内皮细胞采用胶原酶消化和密度梯度离心制备而来，细胞总量约为5×105cells/瓶，细胞纯度可达85%以上，且不含有
大鼠脑微血管内皮细胞的培养与鉴定
相类似。 本研究提示SARS 病毒并非来源于人工驯养的野生动物,而是来源于野生动物,其中蛇、鹰、蛤蚧、鳖最为可能。广西原发病例接触病死猫后发病,因而老鼠仍很可能是SARS 病毒的最原始宿主,但其极低携带率和极低病毒量不但难于直接传给人类,而且也难检测到阳性老鼠。SARS 抗体阳性的鹰,蛇、龟、蛤蚧均为食肉动物,而且高空飞翔的鹰和冬眠的蛇均有利于病毒繁殖和携带的低氧分压状态。这些野生动物通过对鼠等动物的猎食而感染、富集。然后在其体内繁殖和携带。当被人类猎捕后,在冬末早春气温较暖湿度大的南方,长途运输严重缺氧使病毒发生变异,形成毒力和侵袭力强的SARS 病毒,在贩运人员和厨师近距离接触和捕杀过程中受伤感染而发病,然后通过家人护理或就医的医院医护人员诊疗中密切接触造成人间传播和暴发流行。2003年我国成功扑灭SARS 的疫情,其中严格禁止捕猎贩运和宰杀野生动物是最主要的措施之一,与本研究结果相吻合。因此,应禁止捕猎贩运和宰杀野生动物、每年冬春季节加强对发热肺炎病人监测,尤其是捕猎贩运和宰杀野生动物史或实验室病源研究史的发热肺炎病人监测排查、同时大搞爱国卫生运动、降低甚至消除鼠类等传播疾病的病原媒介是防范SARS 的发生和控制扑灭SARS 疫情的首要措施。至于疑为SARS 病毒最原始宿主鼠类和蝙蝠及其通过食物链进入二级宿主野生动物的过程和机理仍有待以进一步的研究。(参加本文工作的还有杨庆利、钟革、蓝光华、冯向阳、熊绮梦、陈岳波、韦东禄、刘志高、石友盟、李建民、蒙世安,在此一并致谢) 参 考 文 献 1 王汉章,王茂武,王建伟,等主编1传染性非典型肺炎防 治培训教材(修订版).北京:中国协和医科大学出版社, 2003.3210. 2 廖祯华主编.广西壮族自治区地图集.北京.星球地图出 版社.2003.42247. 广西医科大学学报 2006Feb ;23(1) 3广西区卫生厅资助课题(Z2002098)收稿日期:2005202201 大鼠脑微血管内皮细胞的培养与鉴定3 滕晓茗 周微雅 黄 燕 周祥祯 (广西壮族自治区人民医院 南宁 530021) 摘要 目的:探讨大鼠脑微血管内皮细胞体外培养方法,为血管内皮细胞的研究打下基础。方法:用胶原酶消化大鼠脑皮质制成细胞悬液再进行培养;用光镜、电镜及免疫组化检测进行鉴定。结果:分离的大鼠脑微血管内皮细胞体外培养一周左右可长成单层,光镜下为多角形或扁平梭形,呈“铺路石样”排列,透射电镜可见Weibel 2Palade 小体。第Ⅷ因子相关抗原免疫组化测定阳性。结论:该分离细胞培养法可培养出大鼠的脑微血管内皮细胞。关键词 脑微血管;内皮细胞;体外培养 中国图书资料分类法分类号 R331;R322113 THE METH ODS OF CU LTURING AN D IDENTIFYING CEREBRAL MICR OVASCU LAR EN 2DOTHE L IAL CE LL IN RATS Teng Xiaoming ,Zhou Weiya ,Huang Yan ,et al.(The People ’s Hospital of Guangxi Zhuang Autonomous Region ,Nanning 530021China )Abstract Objective :To explore t he met hods of cult uring rat cerebral microvascular endot helial cells (RC 2M ECs ),so as to build up t he basis for t he st udies of vascular endot helial cells.Methods :After t he RCM EC were digested wit h collagenase Πto make suspension which are cultivated ,t he RCM EC were identified by immunohistochemical met hods and observed wit h light micro scope and elect ron microscope.R esult :Isolated RCM ECs grow to mo nolayer after one week of external cultivation.They present polygonal and arrange like pavement stones under light micro scope.Weibel 2Palade (W 2P )body can be seen under transmission e 2lect ron micro scope.Correlation antigens of Ⅷfactor are positive by fluorescent stain.Conclusion :The met hods for t he cultivation and identification of RCM ECs could cultivate cerebral microvascular endot helial cells. K ey w ords cerebral microvascular ;endot helial cell ;cultivation in external ? 05?广西医科大学学报 2006Feb ;23(1)